Диагностика туберкулеза животных

Министерство сельского хозяйства РФ

Новосибирский государственный аграрный университет

Институт экспериментальной ветеринарии Сибири 

и Дальнего Востока Россельхозакадемии

Омский государственный аграрный университет

ДИАГНОСТИКА ТУБЕРКУЛЕЗА 

ЖИВОТНЫХ

Монография

Новосибирск  2011

УДК 619:616.002.5:636
ББК  48.731.216
Д 44

А в т о р ы: А.С. Донченко,  В.Н. Кисленко,  Н.А. Донченко, 
Н.Л. Тупота, Н.М. Колычев, Л.М. Каримова 

Р е ц е н з е н т ы: д-р вет.  наук, проф. Н.А. Шкиль;
                                д-р вет. наук, проф. С.К. Димов;
                                д-р биол. наук, проф. В.А. Чхенкели

Утверждена и рекомендована к изданию научно методическим 

советом ветеринарного факультета НГАУ (протокол №34 от 7 февраля 
2011 г.) 

Д 44
Диагностика туберкулеза животных /А.С. Донченко,   

 
В.Н. Кисленко,  Н.А. Донченко, Н.Л. Тупота, Н.М.  Ко
 
лычев, Л.М. Каримова; Новосиб. гос. аграр. ун-т. – 

 
Новосибирск,  2011. – 247 с.

ISBN

Монография состоит из трёх частей: методы диагностики тубер
кулёза; культурально-морфологические, биохимические и биологические методы дифференциации и идентификации микобактерий туберкулёза; молекулярные методы идентификации микобактерий туберкулёза. 
В ней представлены собственные материалы авторов и данные отечественной и зарубежной литературы, касающиеся как патогенных, так 
и атипичных микобактерий. Показана частота выделения микобатериальных культур из биологического материала, полученного от крупного 
рогатого скота, реагирующего на туберкулин для млекопитающих, из 
объектов внешней среды в хозяйствах Западной Сибири с различной 
эпизоотической ситуацией по туберкулёзу. Описаны лабораторные тесты и биологические признаки микобактерий, изолированных из биоматериала. Особое внимание уделено биохимическим и молекулярным 
методам дифференциации и идентификации микобактерий.

УДК 619:616.002.5:636
ББК  48.731.216

ISBN                                                        © Новосибирский государственный 
                                                                 аграрный университет, 2011

ВВЕДЕНИЕ

В работе представлены накопленные авторами  соб
ственные материалы и данные отечественной и зарубежной 
литературы, касающиеся представителей как патогенных, 
так и атипичных микобактерий рода Mycobacterium. Авторами показана частота выделения микобактериальных культур из биологического материала, полученного от крупного 
рогатого скота, реагирующего на туберкулин для млекопитающих, с объектов внешней среды в хозяйствах Западной 
Сибири с различной эпизоотической ситуацией по туберкулезу. Описаны лабораторные тесты и биологические признаки микобактерий, изолированных из биоматериала. Особое 
внимание уделено методам дифференциации и идентификации, позволяющим определить родовую и видовую принадлежность выделенных культур с использованием различных 
питательных сред, биохимических тестов и при разных методах заражения лабораторных животных. 

Проблема классификации и идентификации микобак
терий занимает умы исследователей более ста лет, но до сих 
пор остается актуальной. В эпидемиологии и эпизоотологии 
туберкулеза проблема видов микобактерий имеет не только теоретическое, но и большое практическое значение, так 
как создает основу для успешного проведения комплекса 
противотуберкулезных мероприятий. Определение видовой 
принадлежности изолированных культур микобактерий позволяет более точно определить источники инфицирования 
здоровых животных, птиц или зверей. Предмет нашей работы – изучение микобактерий, изолированных из организма 
животных, реагирующих на туберкулин, и объектов внешней среды.

ЧАСТЬ 1. МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ 

ТУБЕРКУЛЕЗА

1. ПРИЖИЗНЕННАЯ ДИАГНОСТИКА 

ТУБЕРКУЛЕЗА

(аллергический метод)

Обнаружение у животного повышенной чувствитель
ности замедленного типа к микобактериям и продуктам их 
распада является признаком, свидетельствующим о контакте с микобактериями и происходящих в нем иммунобиологических изменениях. Это явление используют как 
диагностический тест и определяют туберкулиновой пробой. Следует отметить, что туберкулин впервые получил не 
Р. Кох, как это указывается во многих руководствах, а латыш 
Х.И.  Гельман, изготовивший аллерген в 1888 г. и только в 
1892 г. опубликовавший в журнале «Архив биологических 
наук» технику изготовления препарата и результаты его испытания для диагностики туберкулеза у крупного рогатого 
скота. Он же совместно с В.Г. Гутманом впервые разработал 
и внедрил в ветеринарную практику подкожный метод туберкулинизации крупного рогатого скота. Р. Кох изготовил 
туберкулин и сообщил об этом в 1890 г., этом же году независимо от Х.И. Гельмана и Р. Коха препарат изготовил в 
Варшаве О.Ф. Буйвид, давший ему название туберкулин, а 
материалы о нем опубликовал в 1891 г.

Основным методом аллергической диагностики ту
беркулеза является внутрикожная туберкулиновая проба, 
предложенная в 1907 г. Манту. По простоте выполнения и 
эффективности исследования она до настоящего времени 
не имеет себе равных. Возможность выявления животных 
в ранней стадии заражения, до образования у них патологических изменений в органах и тканях, являющихся источником возбудителя инфекции, делает его незаменимым при 
ликвидации болезни в стаде, особенно в новых случаях ее 
возникновения. 

В нормальных условиях содержания и кормления за
раженные животные, как правило, интенсивно реагируют 
на введение туберкулина. Эффективность исследования 
достигает 100%, что дает возможность при своевременном 
обнаружении заболевания выявить и удалить из стада всех 
инфицированных особей. 

Имеются сообщения о том, что в начальный период по
сле заражения возбудителем туберкулеза чувствительность 
организма животных к туберкулину выражена слабо и степень сенсибилизации повышается по мере прогрессирования туберкулезного процесса. Установлено на искусственно 
зараженных телятах и овцах, что наибольшая интенсивность реакции на туберкулин при ежемесячно проводимом 
исследовании наблюдалась через месяц после заражения и в 
дальнейшем постепенно снижалась, достигая через 4-6 мес 
75-50% первоначального показателя. Безусловно, интенсивность реакции увеличивается в период от начала до полного развития повышенной чувствительности замедленного 
типа, но этот период короткий и заканчивается через 2-3 недели после заражения. 

Эффективность туберкулиновой пробы в продолжи
тельно неблагополучных стадах при значительном распространении болезни ниже, чем в свежеинфицированных. Это 
связано с наличием в таких стадах животных, находящихся 
в состоянии анергии вследствие прогрессирования туберкулезного процесса. Количество таких животных может 
достигать 25 и даже 60%. Одной из причин отсутствия реакции на туберкулин у некоторых больных туберкулезом 
животных является высокое содержание противотуберкулезных антител в их крови как признак высокой активности 
В-системы иммунитета. Известно, что кроме кооперации 
клеток Т- и В-систем иммунитета возможна их конкуренция. При этом в крайних позициях таких отношений можно 
наблюдать полное отсутствие реакции на туберкулин при 
наличии в крови специфических антител в высоких титрах, 
и, наоборот, отсутствие антител и проявление ярко выра

женной чувствительности к туберкулину. Между этими позициями возможно множество промежуточных состояний, 
когда проявляются оба фактора (гуморальный и клеточный) 
с разной степенью интенсивности аллергических и серологических реакций. Такое положение характерно для хронических болезней с внутриклеточным развитием возбудителя 
и свидетельствует о необходимости использования и аллергического, и серологического методов исследования на 
туберкулез. Примером успешного их применения являются 
бруцеллез, паратуберкулез, сап. С этой целью при туберкулезе использовали различные серологические пробы (РСК, 
РНГА, РП и др.), но в силу малой чувствительности они не 
нашли широкого применения в ветеринарной практической 
работе.

До 60-х годов результаты туберкулиновой пробы были 

решающими при определении состояния стада по туберкулезу. На фоне значительного распространения болезни 
ошибки были редкими, у реагирующих животных, как правило, обнаруживали туберкулез. 

Однако проявление неспецифических реакций на ту
беркулин привело к потере решающего значения этой пробы 
при определении состояния стада по туберкулезу и сделало 
ее ориентировочной при первичной постановке диагноза.

Современная эпизоотология различает две группы не
специфических реакций на туберкулин: парааллергические 
и псевдоаллергические.

Парааллергические реакции на туберкулин – это реак
ции, вызванные атипичными сапрофитными микобактериями, микобактериями паратуберкулеза и птичьим видом возбудителя туберкулеза. 

Псевдоаллергические реакции на туберкулин – реак
ции, вызванные факторами немикобактериальной природы. 
Сенсибилизация организма к туберкулину проявляется при 
актиномикозных поражениях, гельминтозных заболеваниях, септических явлениях.

Имеющиеся данные показывают, что проявление ре

акции на туберкулин у скота благополучных хозяйств является глобальной проблемой, обусловленной изменением 
системы ведения животноводства, его интенсификацией, 
ведущей к высокой концентрации животных на ограниченных площадях, снижению резистентности организма, воздействию стрессовых факторов и др. Обследование скота 
благополучных хозяйств разных районов страны с применением видовых микобактериальных аллергенов показало 
практически повсеместное распространение сенсибилизации, которая в отдельных случаях достигает 98% обследованных животных. В то же время количество животных, 
реагирующих на туберкулин для млекопитающих, различно 
и зависит от зоогигиенического уровня содержания и кормления скота: при его снижении количество таких животных 
достоверно увеличивается. 

Многочисленные данные отечественных и зарубеж
ных исследователей показывают, что основной, а возможно, 
и единственной причиной проявления реакции на туберкулин у скота благополучных хозяйств является сенсибилизация животных атипичными микобактериями. О распространении атипичных микобактерий и их видовом составе в той 
или иной зоне судят по данным бактериологических исследований. В регионе Западной Сибири, в частности Новосибирской области, причиной парааллергических реакций на 
туберкулин являются атипичные микобактерии М. fortuitum 
и М. smegmatis.

Другим методом является сравнительное изучение 

специфических кожных аллергических реакций со стандартным туберкулином для млекопитающих и сенситинами 
из атипичных микобактерий. Определение степени распространения сенсибилизации скота атипичными микобактериями с помощью бактериологического исследования материала от животных и объектов окружающей среды или обследованием животных с применением одного туберкулина не 
отражают истинной картины, так как атипичные микобактерии распространены повсеместно. Однако не все их виды 

обладают сенсибилизирующими свойствами, а проявление 
реакции на туберкулин для млекопитающих зависит от 
уровня сенсибилизации организма животного. Установлено, что у животных, сенсибилизированных атипичными микобактериями, реакции на туберкулин проявляются только 
при высокой степени сенсибилизации, характеризующейся 
значительной интенсивностью реакций на аллерген из атипичных микобактерий.

Определение степени сенсибилизации скота атипич
ными микобактериями с помощью аллергических исследований является ориентировочным методом по сравнению с 
бактериологической диагностикой. Как указывалось выше, 
проявление реакции на туберкулин у животных благополучных по туберкулезу хозяйств сделало туберкулиновую пробу 
ориентировочной при определении состояния стада по этой 
болезни и вызвало необходимость применения дополнительных методов диагностики. Решающими в диагностике 
туберкулеза стали патолого-анатомический и бактериологический методы исследований, и положительные результаты 
туберкулиновой пробы при плановом обследовании скота в 
благополучных хозяйствах требуют подтверждения или исключения заболевания этими методами диагностики. Туберкулез считают установленным при обнаружении у животных на вскрытии характерных изменений или выделении 
возбудителя туберкулеза.

Выделение из материала атипичных микобактерий 

не может свидетельствовать о благополучии животных по 
туберкулезу в связи с возможностью одновременного нахождения в нем возбудителя туберкулеза и указанных микобактерий. Нам приходилось наблюдать случаи смешанной 
инфекции, когда в посевах материала с туберкулезными 
изменениями на питательной среде наблюдался вначале 
обильный рост атипичных микобактерий, а затем на оставшихся свободных участках среды образовались колонии 
возбудителя туберкулеза. 

Диагностическое значение имеет только наличие или 

отсутствие в исследуемом материале возбудителя туберкулеза. В то же время отрицательные результаты бактериоскопического исследования не всегда подтверждают отсутствие туберкулеза. Следовательно, диагностический убой и 
бактериологическое исследование в некоторых случаях не 
подтверждают туберкулез даже при его наличии, вследствие 
чего происходит распространение болезни в стаде.

Общепринятым методом аллергического исследова
ния крупного рогатого скота на туберкулез считается внутрикожное введение туберкулина для млекопитающих в 
дозе 0,2 мл (10000 МЕ), учет реакции проводится через 72 ч, 
аллерген вводят в среднюю треть шеи безыгольным инъектором БИ-7М. Быкам-производителям туберкулин вводят в 
подхвостовую складку. Реагирующими животные считаются при увеличении кожной складки на 3 мм и более.

Свиньям применяют два аллергена – в кожу основания 

одного уха вводят ППД-туберкулин для млекопитающих, в 
другое – ППД-уберкулин для птиц в дозе 10000 МЕ в 0,2 мл 
объема. Учет проводят через 48 ч. У основания ушной раковины реакция проявляется в виде плотной или тестообразной припухлости кожи размером 20-40 мм и более.

Козам, овцам, собакам туберкулин вводит в области 

внутренней поверхности бедра, учет реакции проводят через 48 ч.

Курам туберкулин вводят в бородку, учет реакции про
водят через 36 ч.

Кроме внутрикожной туберкулиновой пробы, в прак
тике используют офтальмо- и внутривенную пробы. Эти 
методы исследований на туберкулез сравнительно широко 
применяли ранее, в период отработки аллергической диагностики болезни. Широкое испытание в практических условиях каждого метода определило его место в общей системе диагностики туберкулеза. В дальнейшем, с переводом 
животноводства на промышленную основу и увеличением 
концентрации скота в хозяйствах, эти методы потеряли свое 
первоначальное значение вследствие недостаточной эффек

тивности и трудности массового использования. Однако в 
ряде случаев, особенно при затруднениях в определении 
состояния стада или отдельных животных по туберкулезу, 
они находят применение. Офтальмопроба, предложенная 
Валле для исследования крупного рогатого скота (1907 г.), 
является достаточно эффективной в диагностике туберкулеза. По этому показателю она уступает внутрикожной пробе, 
но дополнительно к последней выявляет 5-7% зараженных 
животных. Реакция конъюнктивы у зараженных животных 
на воздействие туберкулина возникает и протекает быстро 
– в течение нескольких часов, однако в основе ее лежит тот 
же клеточный механизм, а скорость возникновения реакции 
следует объяснить наличием очень развитой сосудистой 
сети глаза, обеспечивающей концентрацию и быстрый выход сенсибилизированных лимфоцитов в зону воздействия 
аллергена. В то же время на возникновение этой реакции 
влияют гуморальные факторы, что подтверждается быстро 
развивающимся отеком конъюнктивы и таким же быстрым 
исчезновением воспалительных явлений, чего не может 
быть при клеточной инфильтрации тканей. 

Глазную туберкулиновую пробу рекомендовано про
водить крупному рогатому скоту старше 6 лет. Ее проводят 
двукратно с интервалом 5-6 дней между первым и вторым 
введением туберкулина. Препарат наносят в количестве 3-5 
капель на конъюнктиву при оттянутом нижнем веке. Учет 
результатов офтальмопробы проводят через 3, 6, 9 и 12 ч после повторного введения туберкулина. Реакция характеризуется выделением из внутреннего угла слизисто-гнойного 
или гнойного секрета, накапливающегося вначале в конъюнктивальном мешке, а затем вытекающего в виде шнура.

Внутривенное введение туберкулина у зараженных 

животных вызывает общую системную реакцию, клинически проявляющуюся повышением температуры тела, учащением пульса и дыхания, угнетением общего состояния 
животного и некоторыми другими внешними изменениями. 
Эти явления достигают максимума развития через 6-8 ч и