Материалы XII международной научной конференции студентов, аспирантов и молодых ученых «Знания молодых для развития ветеринарной медицины и АПК страны», посвященной 215-летию СПбГУВМ

СПбГУВМ

МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ 

 

ДЕПАРТАМЕНТ НАУЧНО-ТЕХНИЧЕСКОЙ ПОЛИТИКИ И ОБРАЗОВАНИЯ 

 

САНКТ-ПЕТЕРБУРГСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ 

ВЕТЕРИНАРНОЙ МЕДИЦИНЫ 

 

ПЕТРОВСКАЯ АКАДЕМИЯ НАУК И ИСКУССТВ 

 
 
 
 
 
 
 
 
 

МАТЕРИАЛЫ 

 

XII международной научной конференции 
студентов, аспирантов и молодых ученых 

«Знания молодых для развития ветеринарной 

медицины и АПК страны», посвященной  

215-летию СПбГУВМ 

 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

Санкт-Петербург 

2023 
 

УДК: 619 (063) 
DOI: 10.52419/3006-2023-10 
 
 
Материалы XII международной научной конференции студентов, аспирантов и 
молодых ученых «Знания молодых для развития ветеринарной медицины и 
АПК страны», посвященной 215-летию СПбГУВМ / редкол.: Л.Ю. Карпенко, 
А.А. Бахта, А.И. Козицына [и др.]; МСХ РФ, СПбГУВМ, ПАНИ. – СанктПетербург : Изд-во ИП Перевощикова Юлия Владимировна, 2023. – 577 с. 

 
 
Редакционная коллегия: 
 
Проф. Карпенко Л.Ю. (отв. редактор) 
Доц. Бахта А.А. 
Козицына А.И. 
Полистовская П.А. 
Балыкина А.Б. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

За достоверность предоставляемых и публикуемых материалов несут ответст
венность их авторы 

 

УДК 502.7 

СОВРЕМЕННЫЕ ПРОБЛЕМЫ СОХРАНЕНИЯ БИОРЕСУРСОВ 

Агафонова А.А., ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный университет ветеринарной медицины», 

г. Санкт-Петербург, Россия 

Научный руководитель: доцент Бахта А.А. 

Экологические проблемы с каждым годом занимают все более важное 

место в системе мировых приоритетов. В современных условиях развития промышленности происходит интенсивное загрязнение окружающей среды, что 
приводит к колоссальной нехватке биоресурсов. Сохранение биоресурсов – одна из основных задач, которую предстоит решить человечеству в настоящем. 
Такому удару подвергается вся структура биоресурсов.  

Сокращение биоресурсов – результат человеческой деятельности и серь
езная угроза экономическому развитию в том числе. Последние пару десятков 
лет человечество активно предпринимает различные усилия, чтобы остановить 
резкий спад уменьшения биоресурсов. Но несмотря на все прилагаемые попытки, их сокращение продолжается вследствие таких факторов, как разрушение 
естественной среды обитания, чрезмерная эксплуатация природных ресурсов, 
загрязнение воды и почвы. Но также к числу глобальных угроз относится изменение климата. Нельзя отрицать, что природно-климатические изменения также 
сильно влияют на изменение количества биоресурсов. Но если посмотреть с 
другой стороны можно сделать вывод, что в попытках остановить данную проблему есть больший шанс урегулировать влияние антропогенного фактора на 
окружающую среду, нежели решить вопрос с климатическими изменениями. 

Целью данного исследования явилось анализ на основе литературных ис
точников основных угроз биоресурсам нашей страны и оценка эффективности 
используемых в нашей стране стратегий по минимизации угроз биоресурсам. В 
ходе анализа литературных источников выявлено, что среди прямых и непрямых угроз биоресурсам нашей страны можно выделить следующие, которые 
установлены в соответствии с выявлением приоритетов для организации охраны экосистем:  

а) разрушение местообитаний животных и растений происходит в про
цессе непрерывного освоения новых земель с целью дальнейшего эксплуатирования. Угрозы природным ресурсам в связи с возрастанием антропогенного 
вмешательства приводят к неспособности выживания находящихся под угрозой 
исчезновения видов растений и животных  

б) химическое загрязнение почв, вод и воздуха негативно сказывается на 

состоянии популяций некоторых видов растений и животных, на их репродуктивной способности. Это загрязнение вызвано непосредственно влиянием тяжелых металлов. В настоящее время наибольшей опасности подвергаются водные экосистемы, особенно пресные. Пресноводные экосистемы активно накапливают тяжелые металлы антропогенного происхождения. К такому числу особо распространенных и опасных относятся соединения свинца, кадмия, меди и 
цинка. Согласно источникам, вследствие поражения токсичными агентами у 

водных организмов происходит изменение активности ферментных систем, что 
негативно сказывается на состоянии здоровья водных обитателей.  

в) следующей немаловажной угрозой считается угроза биоразнообразию, 

которая связана с высоким уровнем браконьерства и превышенным использованием биологических ресурсов. Среди экологических правонарушений попрежнему серьезную опасность для видового биологического разнообразия 
представляет браконьерство. 

При анализе литературных данных по использованию различных страте
гий сохранения биоразнообразия выявлено, что наиболее эффективный из способов охраны является создание охраняемых территорий (заповедники, национальные парки, биосферные заповедники, ресурсные резерваты и т.д.). Также к 
эффективным способам защиты биоресурсов страны относят международные 
соглашения по этой проблеме. В 1992г. конференция ООН по окружающей 
среде и развитию приняла Международную конвенцию по охране биологического разнообразия. Важным соглашением является Конвенция о международной торговле видами дикой фауны и флоры, находящимися под угрозой уничтожения. 

Таким образом, на основании изложенных данных можно сделать вывод, 

что проблема экологии всегда будет актуальна. Только общими усилиями и 
тщательным контролем мы сможем решить ее и сделать все возможное, чтобы 
минимизировать риски ее развития. 

Список использованной литературы: 1.) Васильев Андрей Витальевич, Васюков 

Владимир Михайлович Стратегии сохранения биоразнообразия: региональный аспект // 
Самарская Лука: проблемы региональной и глобальной экологии. 2021. №3; 2.) 
Полистовская, П. А. Тяжелые металлы в водной экосистеме и их влияние на рыб: 
монография / П. А. Полистовская, Л. Ю. Карпенко, А. А. Бахта. — Санкт-Петербург: 
СПбГУВМ, 2022. — 88 с; 3.) Проблемы сохранения биологического разнообразия 
Земли:[Электронный 
ресурс].URL:https://ecodelo.org/9158
рroblemy_sokhraneniya_biologicheskogo_raznoobraziya_zemli-geoekologiya 
4.) 
Пятый 

национальный доклад «Сохранение биоразнообразия в Российской Федерации». М. 
Министерство природных ресурсов и экологии Российской Федерации, 2015 г., 124 с. 5. 
Борисова, С. Д. Распространение инвазионных видов Растений с различными статусами 
активности по территории Верхневолжья / С. Д. Борисова, Л. Ю. Карпенко, А. А. Бахта // 
Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. – 2021. – № 2. – С. 90-93. – 
DOI 10.17238/issn2072-6023.2021.2.90.5. Санитарно-микробиологическое состояние вод 
малых водоемов Ленинградской области / П. А. Полистовская, К. П. Кинаревская, А. А. 
Бахта [и др.] // Бактериология. – 2018. – Т. 3, № 1. – С. 33-35. – DOI 10.20953/2500-10272018-1-33-35. – EDN XZFBWH.6. Полистовская, П. А. Тяжелые металлы в водной 
экосистеме и их влияние на рыб / П. А. Полистовская, Л. Ю. Карпенко, А. А. Бахта. – СанктПетербург : Санкт-Петербургский государственный университет ветеринарной медицины, 
2022. – 88 с. – EDN VMICIC.7. Оценка экологического состояния Южного озера системы 
солдатских озер / Л. Ю. Карпенко, А. А. Бахта, К. П. Кинаревская, П. А. Полистовская // 
Материалы национальной научной конференции профессорско-преподавательского состава, 
научных сотрудников и аспирантов СПбГАВМ, Санкт-Петербург, 16 ноября 2018 года / 
Редколлегия: Стекольников А. А. (отв. редактор), Карпенко Л. Ю. (зам. отв. редактора), 
Иванов В. С., Токарев A. Н., Лукина Ю.Н., Пристач Л. Н., Трушкин В. А., Бахта А. А., 
Полистовская П. А.. – Санкт-Петербург: Санкт-Петербургская государственная академия 
ветеринарной медицины, 2018. – С. 46-47. – EDN YSNBKH. 

УДК 57.083.16:582.263 

ПРИМЕНЕНИЕ РАЗЛИЧНЫХ МЕТОДОВ ОКРАШИВАНИЯ КЛЕТОК 

МИКРОВОДОРОСЛИ CHLORELLA VULGAR6IS ШТАММА GTO 

Ажикина О.Ю., ФГБОУ ВПО «Санкт-Петербургский государственный университет ветеринарной 

медицины», г. Санкт-Петербург, Россия 

Научный руководитель: профессор, д.б.н. Карпенко Л.Ю. 

Интерес к микроводорослям продиктован не только их богатым амино
кислотным составом, наличием в больших концентрациях витаминов, минералов и пигментов, но так же огромной пластичностью метаболизма. Существует 
множество различных исследований, изучающих взаимосвязи между изменением характеристик культивирования водорослей и концентрацией метаболитов в 
клетках водорослей.  

Однако, для изучения зависимостей между условиями культивации и от
ветных реакций штаммов, необходимо проводить базовые исследования, касающиеся морфометрии микроводорослей, подсчета живых и мертвых клеток, 
учитывать степень загрязненности, лизис, появление уродливых форм (признаки мертвой клетки). Для большинства вышеописанных критериев оценивания 
роста культуры необходимо предварительно окрашивать клетки специальными 
красителями. В тоже время, при изучении методик для каждого вида водорослей, можно столкнуться с расхождением информации, касающейся типа красителя, его концентрации и времени экспозиции раствора с культурой клеток. 

Целью данного исследования являлось опробовать существующие мето
дики окрашивания клеток Chlorella vulgaris и сравнить степень окрашивания. 

В качестве объекта исследования использовалась маточная культура 

Chlorella vulgaris, штамма GKO, произведенная в ООО «Альготек». Образец 
прошел токсикологические и микробиологические испытания на базе ФГБУ 
«Тверская межобластная ветеринарная лаборатория» (Протокол испытания 
№1663-ИЛ от 14 июля 2019). Хлореллу выращивали в культуральных сосудах в 
условиях равномерной культивации в среде Тамийя (рН 6,8-7,2), при температуре 30ºС и барботировании воздухом, содержащим 0,3% СО2 . Исследование 
проводилось на базе кафедры биохимии и физиологии, ФГБОУ ВО СпбГУВМ. 

В качестве красителей клеток использовались следующие краски: трипа
новый синий, метиленовый синий, тетразолиевый синий, феноловый красный. 
Растворы изготавливались согласно общим инструкциям в день исследования. 
В качестве контрольного теста дополнительно измерялась оптическая плотность на фотоколориметре (КФК-3-01) при длине волны 560 нм.  

Определение общего количества клеток Chlorella vulgaris осуществляли 

под оптическим микроскопом (микмед-5, Россия), с использованием счетной 
камеры Горяева. Подсчет клеток проводился при увеличении (150Х и 600Х). 
Расчёт проводился по формуле (см. формула 1) 

                         

где N – количество клеток в 1 мл; 1000 – коэффициент пересчета мм³ в 

см³; n – количество просчитанных клеток в определенном секторе камеры Горяева; h – глубина счетной камеры 0,1 мм; S – площадь сектора (при площади 
«большого» квадрата 0,04 мм²). 

Определение количества клеток мертвых клеток проводили так же в ка
мере Горяева. Процент мертвых клеток определялся по формуле 2 

                   

              

                             

При предварительной обработке, к штамму хлореллы добавляли лимон
ную кислоту в концентрации 40 мг/мл, для появления мертвых клеток в общем 
соотношении к живым клеткам 1:5, время инкубирования составило 24 часа, 
при температуре 25ºС.  

По окончании инкубации, оптическая плотность исследуемой культуры 

равнялась 0,254±0,01, что согласно литературным данным характерно для следующей концентрации 4,5 млн/мл. Окрашивание проводилось красителями в 
следующих концентрациях: трипановый синий – 0,04%, метиленовый синий – 
1%, тетразолиевый синий – 0,01%, фенольный красный – 0,05%. Смешивание 
производилось в 96-ти луночных иммунологических планшетках, с добавлением 100 мкл клеточной суспении к 50 мкл трипанового синего, 500 мкл метиленового синего, 5 мкл тетразолиевого синего и 55 мкл фенолового красного, инкубировали в течение 3-х минут.  

Результаты исследования представлены в следующей таблице. 

Таблица 

Характеристика окрашенных мазков при использовании разных красителей 

Краситель, концентрация

Общее 

число кле
ток

Отношение мертвых клеток к общему количеству кле
ток, %

Комментарий

Трипановый синий –

0,04%
4,37±0,04
21,7

Мертвые клетки окрашены 
в темно-синий цвет, живые 

клетки не окрашены.

Метиленовый синий –

0,5%
4,55±0,03

Живые и мертвые клетки 
не окрашены, дифферен
циация невозможна.

Тетразолиевый синий –

0,01%
4,67±0,08

Живые и мертвые клетки 

имеют слабое сине
фиолетовое окрашивание.

Фенольный красный –

0,05%
3,89±0,03

Живые и мертвые клетки 
имеют ярко оранжевое ок
рашивание.

Таким образом, согласно полученным данным, способность к дифферен
циации клеток при микроскопии обнаружена при использовании трипанового 
синего – в качестве красителя клеток микроводоросли Chlorella vulgaris. В тоже 
время было отмечено, что метиленовый синий в указанной концентрации не 
был способен окрасить клетки хлореллы, в то время как тетразолиевый синий и 
фенольный красный – прокрашивали как живые, так и мертвые клетки. Более 
того, феноловый красный так же продемонстрировал способность к окрашиванию артефактов, находящихся в исследуемом образце, из-за чего подсчет самих 
клеток был несколько затруднителен.  

Список использованной литературы: 1) M.M. Pereira, L. Mouton, C. Yéprémian et al., 

Ecotoxicological effects of carbon nanotubes and cellulose nanofibers in Chlorella vulgaris.// J 
Nanobiotechnol 12.15, 2014; 2) O.Yu. Azhikina, I.A. Makhnin, Yu.E. Berenev and L.Yu. Karpenko. 

Cytotoxicity of some preservatives for culture Chlorella Vulgaris GKO strain//International 
Scientific and Practical Conference “AGRARIAN SCIENCE, 2023.; 3) Молекулярная биология / 
Л. Ю. Карпенко, А. А. Бахта, А. И. Козицына [и др.] ; Карпенко Л.Ю., Бахта А.А., Козицына 
А.И., Балыкина А.Б., Душенина О.А.. – Санкт-Петербург : Санкт-Петербургский 
государственный университет ветеринарной медицины, 2020. – 240 с. – EDN UQRFFQ.; 
4)Нагорнов С.А., Мещерякова Ю.В. Исследование условий культивирования микроводоросли 
хлорелла в трубчатом фотобиореакторе // Вестник ТГТУ, 2015. №4; 5)Федоров В.Д. 
Изменения в природных биологических системах / под ред. В. Н. Максимова. — М.: РАГС, 
2004; 6) Швец И.М. Определение жизнеспособности клеточных культур. Учебнометодическое пособие. – Нижний Новгород: Нижегородский госуниверситет им. , 2015. – 
21 с.;7) Химия пищи : Лабораторный практикум / Л. Ю. Карпенко, А. А. Бахта, А. И. 
Козицына [и др.]. – Санкт-Петербург : Санкт-Петербургский государственный 
университет ветеринарной медицины, 2021. – 123 с. – EDN OGOHIY. 

УДК 636.082.474.4 

ГАЛЛОВАЯ КИСЛОТА И БИОЛОГИЧЕСКИЕ ЭФФЕКТЫ ЕЁ 

ДЕЙСТВИЯ ПРИ ИСПОЛЬЗОВАНИИ В ЭМБРИОГЕНЕЗЕ БРОЙЛЕРОВ 

Азарнова Т. О.ˡ, Шалаева А. Д.ˡ , Луговая И.С.² , Аншаков Д. В.³ , Золотухина Е. А.³ ,  

ˡ ФГБОУ ВО «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии - МВА имени К. 

И. Скрябина», г. Москва, Россия  

² ФГБУ «Всероссийский государственный Центр качества и стандартизации лекарственных средств для 

животных и кормов», г. Москва, Россия  

³ Селекционно-генетический центр «Загорское экспериментальное племенное хозяйство» – филиал ФГБНУ 

ФНЦ «Всероссийского научно-исследовательского и технологического института птицеводства Российской 

академии наук», г. Сергиев Посад, Россия 

В медицине и растениеводстве успешно используют галловую кислоту 

[3]. Учеными доказано, что она обладает антиоксидантными, антигипоксическими, иммуномодулирующими, антимутагенными, противовоспалительными, 
гастропротективными и антибактериальными свойствами. При этом было отмечено, что она эффективна в достаточно узком диапазоне концентраций. Учитывая совокупность её уникальных свойств и отсутствие данных об её использовании в птицеводстве, в том числе в период инкубации, было принято решение разработать схему её введения, выявить оптимальную концентрацию заявленного биостимулятора для предынкубационной трансовариальной обработки 
яиц водными растворами; установить и проанализировать основные биологические эффекты её действия. 

Исследования были проведены в условиях ФГБНУ ФНЦ «ВНИТИП» 

РАН на пяти партиях яиц кур кросса «Росс-308», полученных от 55-ти недельного родительского стада, сформированные по 252 штуки в каждую. Четыре 
партии перед инкубацией однократно орошали водными растворами биостимулятора галловой кислоты в допустимом диапазоне концентраций для предынкубационной обработки [5]; контроль оставался интактным. Для осуществления 
эксперимента все яйца подбирали по принципу аналогов. Исследования осуществляли по общепринятым методикам [4]. 

Предынкубационная трансовариальная обработка яиц водными раствора
ми галловой кислоты, позволила получить ряд позитивных биологических эффектов. Так, у представителей всех опытных групп смена эмбрионального пуха 
была более интенсивной нежели в контроле. Количество стержневых перьев у 

первых в лучшей опытной группе превосходило контроль у петушков на 9,6% 
на правом и 9,7% (р<0,05) на левом крыле; у курочек на 8,1% на правом и 8,8% 
(р<0,05) на левом крыле. Тогда как длина у петушков имела превосходство 
4,2% на правом и 4,1% на левом крыле; у курочек 8,7% на правом и 8,3% на левом крыле; а толщина стержневого пера у петушков на 8,8% на правом и 7,3% 
на левом крыле; у курочек 8,2% на правом и 6,2% на левом крыле, относительно контроля. 

По данным Бессарабова Б.Ф. (2015) более быстрая смена эмбрионального 

пуха обычно сопряжена с более высокой жизнеспособностью и качеством молодняка [1], что нашло подтверждение в нашей работе.  

Так, выводимость яиц превосходила контроль на 3,08 -9,33% и вывод цы
плят на 2,77-9,12%. Повышение эмбриональной жизнеспособности молодняка 
опытных групп сопровождалось увеличением живой массы цыплят суточного 
возраста по сравнению с контролем на 1,8-2,6%, что обусловило перспективы 
лучшей реализации продуктивных качеств бройлеров в дальнейшем онтогенезе 
[2]. Это также подтверждается повышением бальной оценки по шкале «Оптистарт +» на 1,5-1,7 бала относительно контроля. 

Анализ проведенных исследований свидетельствует о том, что использо
вание растворов галловой кислоты перед инкубацией определило повышение 
интенсивности смены эмбрионального пуха, как у курочек суточного возраста, 
так и у петушков. Более высокая интенсивность этого процесса была выявлена 
у особей всех опытных групп, но в большей степени у представителей второй, 
которые также характеризовались наиболее значимыми различиями относительно контроля по эмбриональной жизнеспособности (преимущественно во 
второй половине инкубации) и качеству. 

Список используемой литературы: 1.) Бессарабов Б. Ф., Крыканов А. А., Киселев А. 

Л. Инкубация яиц сельскохозяйственной птицы: учебное пособие — СПб., 2015. С.57; 2.) 
Брюшинин Н. В. Применение экологически безопасных препаратов для стимуляции 
эмбрионального и постэмбрионального развития бройлеров, их резистентности и 
продуктивности. Автореф. дис. канд. вет. наук – М., 2004. 15 с. 3.) Григорян К. Р., А. А. 
Шиладжян Спектральное исследование взаимодействия галловой кислоты и дубильной 
кислоты с миоглобином /Конференция химическая термодинамика и кинетика – Великий 
Новгород, 2017. С.80-81; 4.) Кондрахин, И. П. Методы ветеринарной клинической 
лабораторной диагностики: справ. изд. - М., 2004. 520 с. 5.) Кочиш И.И., Петраш М.Г., 
Смирнов Птицеводство С.Б. изд. 2-е, перераб., доп. Колос, –М., 2007. 430 c.;  

УДК 619:616.98:579:537.6 

ДИАГНОСТИКА БЛЮТАНГА ПРИ КАРАНТИНИРОВАНИИ ПЛЕМЕННОГО 

ПОГОЛОВЬЯ БЫКОВ ВВОЗИМОГО В РОССИЙСКУЮ ФЕДЕРАЦИЮ 
Айдиев А.Б., Веретенников В.В., Тарлавин Н.В., Красков Д.А., Ярыгина Н.А., ФГБОУ ВО «СанктПетербургский государственный университет ветеринарной медицины», г. Санкт-Петербург, Россия 

Научный руководитель: доцент Новикова О.Б. 

Блютанг (лат. Febris catarrhalis ovium; «синий язык») – вирусная транс
миссивная болезнь животных, относящихся к семействам полорогих, вилорогих, кабарговых, оленевых, верблюдовых. Как правило, характеризуется воспалительно-некротическими поражениями слизистой оболочки ротовой полости, 

особенно языка, желудочно-кишечного тракта, эпителия венчика и основы кожи копыт, а также дистрофическими изменениями скелетной мускулатуры.  

Возбудитель – РНК-содержащий вирус семейства Reoviridae, рода 

Orbivirus. Серогруппа вируса блютанга включает 24 серотипа [4]. 

Наиболее тяжело болезнь протекает у овец. У остальных восприимчивых 

животных болезнь протекает бессимптомно [5]. Передача вируса от больных 
здоровым животным осуществляется трансмиссивно. Основной биологический 
переносчик, в организме которого происходит размножение вируса, – мокрец 
Culicoides variipennis [1]. 

Для предотвращения заноса блютанга в благополучные по заболеванию 

страны ограничиваются запретом на ввоз восприимчивых животных из стран, 
неблагополучных по нему, а также карантинированием домашних и диких 
жвачных в местах ввоза с обязательным исследованием сывороток [2, 3]. 

Именно поэтому целью нашей работы являлось изучение сопроводитель
ных документов, протоколов испытаний межобластной ленинградской ветеринарной лаборатории и актов карантинирования племенных быков в количестве 
10 штук, привезённых из США. Все документы предоставлены управлением 
ветеринарии города Санкт-Петербург. 

Согласно документам, племенные быки были привезены из США через 

торговую компанию A.L.H. Genetics B.V., Dammelaan 31, 9104 GS Damwoude, 
расположенную в Нидерландах. Местность страны-экспортёра благополучна по 
заразным, в том числе особо опасным, болезням животных, а сами животные 
вакцинированы против инфекционного ринотрахеита КРС, вирусной диареи 
КРС, парагриппа-3 и респираторной вирусно-синтециальной болезни КРС. Карантинирование (с 11.09.2021 г.) происходило на базе АО «Невское» в заранее 
подготовленном помещении, где заблаговременно была проведена трёхкратная 
профилактическая дезинфекция 0,5% раствором «ТРИОСЕПТ-ЭНДО» - время 
экспозиции 30 минут, с последующим исследованием смывов на БГКП. Через 6 
дней после карантинирования была взята кровь из ярёмной вены у всего поголовья для серологического исследования на блютанг и ряд других инфекционных болезней (бруцеллёз, туберкулёз, парагрипп 3 и т.д.). 

Суть серологических реакций заключается в обнаружении специфических 

антител в сыворотке крови животных. Серология была проведена методом иммуноферментного анализа (ИФА) (см. таблица 1). Также применяют реакцию 
нейтрализации (РН). 

Таблица 

Результаты диагностических исследований 

№
п/п

Наименование показателя

Ед.
изм.

Результат
испытаний

Погрешность (неопределённость)

Норматив

НД на метод испытаний

1.
антитела 
к вирусу 
блютанга

Отрицательно

ИНСТРУКЦИЯ по применению 
набора для выявления антител к 

вирусу блютанга иммуно
ферментным методом «БЛЮ
ТАНГ-СЕРОТЕСТ»