Материалы национальной научной конференции профессорско-преподавательского состава, научных сотрудников и аспирантов СПбГУВМ

МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА 

РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ 

*** 

ДЕПАРТАМЕНТ НАУЧНО-ТЕХНОЛОГИЧЕСКОЙ ПОЛИТИКИ  

И ОБРАЗОВАНИЯ 

*** 

САНКТ-ПЕТЕРБУРГСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ 
УНИВЕРСИТЕТ ВЕТЕРИНАРНОЙ МЕДИЦИНЫ 

 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

МАТЕРИАЛЫ 

 

национальной научной конференции 

профессорско-преподавательского состава, 

научных сотрудников и аспирантов СПбГУВМ 

 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

Санкт-Петербург 

2021 

УДК: 619 (063) 
DOI: 10.17238/736085 
 
 
 
Материалы национальной научной конференции профессорско
преподавательского 
состава, 
научных 
сотрудников 
и 
аспирантов 

СПбГУВМ.- СПб, Издательство ФГБОУ ВО СПбГУВМ, 2021 г. – 139с. 

 
 
 
 
Редакционная коллегия: 
 
Проф. Стекольников А.А. (отв. редактор) 
Проф. Карпенко Л.Ю. (зам. отв. редактора) 
Проф. Померанцев Д.А. (зам. отв. редактора) 
Доц.  Бахта А.А. 
Проф. Белова Л.М. 
Проф. Крячко О.В. 
Доц. Козыренко О.В. 
Проф. Яшин А.В. 
Доц. Нечаев А.Ю.  
Доц. Мкртчан М.Э. 
Проф. Пристач Н.В.  
Доц. Иванов А.А. 

 

 
 

Утверждены на заседании редакционно-издательского совета 

ФГБОУ ВО СПбГУВМ 

 
Зав. редакционно-издательским центром Иванова С.Э. 
 
 
 
 
 
 
 
 

©    ФГБОУ ВО СПбГУВМ, 2021 

РЕЗУЛЬТАТЫ НАУЧНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ 

 
УДК: 796.015.576:618.19-006.6-036.8:599.323.45 

ИНТЕРВАЛЬНЫХ ГИПОКСИЧЕСКИХ ТРЕНИРОВОК  

НА ВЫЖИВАЕМОСТЬ МЫШЕЙ С АСЦИТНОЙ  

КАРЦИНОМОЙ ЭРЛИХА 

Алистратова Ф.И., СПбГУВМ 
 
На сегодняшний день проблема профилактики и лечения онкологиче
ских заболеваний, вопреки существующим достижениям современной медицины и патофизиологии, остаѐтся одной из фундаментальных задач. Поэтому возможность использования немедикаментозных средств, оптимизирующих собственные функциональные возможности при минимуме побочных эффектов, является весьма актуальным вопросом. 

Применение фармакотерапии для лечения онкологических заболеваний 

на сегодняшний день показывает определѐнные успехи, существуют таргетные 
препараты, которые обладают направленным действием и могут препятствовать дальнейшему распространению ростовых факторов опухоли [1].  

Была выдвинута гипотеза, что применение интервальных гипобариче
ских тренировок у самцов мышей межлинейных гибридов F1 может усилить 
противоопухолевый иммунитет, тем самым увеличить резистентность экспериментальных животных к развитию опухоли, локализовать ее площадь 
развития и продлить жизнь организма с онкологией. Целью работы было 
выяснить эффективность применения гипоксии в заданном режиме на организм мышей-самцов с асцитной карциномой Эрлиха (АКЭ). Для решения 
поставленной цели были выдвинуты следующие задачи: 

1. Определить содержание лейкоцитов и вывести лейкоцитарную 

формулу в крови мышей после воздействия гипобарической гипоксии. 

2.  Провести оценку влияния гипобарической гипоксии на динамику 

изменения объема опухоли и веса животных с перевитыми опухолевыми 
клетками в рамках феноменологической модели развития опухолей. 

Экспериментальные исследования, направленные на изучение биоло
гических эффектов гипобарической гипоксии, проводились на взрослых 
самцах мышей линии F1, масса которых составляла 33- 35,05 ±3,25 г. Животные были разделены на 2 группы: опыт/ контроль (n=10).  Уровень достоверности подтверждается статистическим анализом результатов с применением критерия Стьюдента. Различия рассматривались, как значимые 
при уровне, р < 0,05. 

В соответствии с этой целью было проведено 2 этапа исследования. 

На первом этапе мышей подвергали гипоксическому воздействию в течение 
первых 10-ти дней эксперимента, на втором - воздействие проводилось ежедневно в течение 3-х недель, за исключением выходных дней. Объем опухо

ли анализировали с помощью штангенциркуля на 16-е сутки (терминальный 
период). Вес подопытных животных определяли на 0-й день, а окончательный чистый вес измеряли на 22-й день. 

Влияние гипоксического воздействия на динамику развития асцитной 

карциномы у мышей проводили по следующим параметрам: объем опухоли, 
лейкограмма и продолжительность жизни животных.  

На первом этапе исследования содержание лейкоцитов на 5-е сутки у 

мышей контрольной группы составляло 7,09±0,31*109/л, в группе опыт содержание клеток было на том же уровне и равнялось 7,21±0,43*109/л. На десятые сутки было отмечено достоверное увеличение числа лейкоцитов в 
группе контроля 16,59±0,38*109/л, против 11,67±0,37*109/л в группе опыт,  
(p <0,05). 

Таким образом, наблюдалось увеличение числа лейкоцитов, в 2 раза, у 

животных группы контроль, по отношению к мышам группы опыт. Содержание лейкоцитов у мышей интактной группы оставалось на неизменном 
уровне, и было равно 7,18∙109/л±0,38∙109/л, (p <0,05). 

Также отмечено, что усредненный показатель продолжительности 

жизни мышей-опухоленосителей практически вдвое выше указанного параметра в группе сравнения (контроля). Такие изменения мы наблюдали в 
первой серии экспериментов с применением 10-дневного курса гипоксического воздействия. Однако проведение наиболее длительного 3-х недельного курса гипобарической гипоксии приводит к про-опухолевому эффекту и 
активирует рост клеток асцитной карциномы [3,4].  

Полученные результаты вероятнее всего могут быть обусловлены 

влиянием гипоксических тренировок на функционирование иммунной системы животных-опухоленосителей. Существуют исследования, подтверждающие улучшение состояния клеточного и гуморального иммунитета, что 
сопровождается увеличением содержания клеток различных классов лейкоцитов и активация синтеза иммуноглобулинов [2].  

На втором этапе исследования применение 30-дневного курса гипо
ксического воздействия не оказывает противоопухолевого действия на организм, вопрос о наличии прямой корреляции между устойчивостью животных к гипоксии и количественным и качественным соотношением различных классов лейкоцитов в крови еще не раскрыт до конца.  

Таким образом, для уточнения механизмов и непродолжительности 

тормозящего действия интервальных гипоксических тренировок и поиска 
оптимальных значений противоопухолевого эффекта выбранного экзогенного воздействия на организм существует необходимость дальнейших более 
углубленных исследований. 

Литература: 1) Инжеваткин, Е.В. Метаболические изменения лимфоцитов и 

опухолевых клеток у мышей с асцитной карциномой Эрлиха в процессе роста опухоли / 
Инжеваткин, Е.В,.Фоменко, Е.Ю. // Известия Российской академии наук. Серия биологическая, 2007- 376-380. 2) Карпенко, Л.Ю. Биохимические показатели крови кошек с диагнозом гломерулонефрит / Л.Ю. Карпенко, А.А. Бахта, А.И. Енукашвили, Е.Н. Трофи

мец // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. – 2016. – № 2. – С. 
114–119. 3) Скопичев, В.Г. Гипобария как способ активации кислородной емкости крови / 
В.Г. Скопичев, Ф.И. Алистратова, Н.Н. Богачев // Вопросы нормативно-правового регулирования 
в 
ветеринарии. 
– 
2017. 
– 
№4. 
– 
C. 
136–138. 
4) 
de 
Bock,  

K., Antiangiogenic therapy, hypoxia, and metastasis: risky liaisons, or not? /de Bock, K., Mazzone, M., & Carmeliet, P.// Nat. Rev. Clin. Oncol., 8, -2001- p. 393-404. 

 
УДК: 579.64 

РАЗРАБОТКА ПИТАТЕЛЬНЫХ СРЕД ДЛЯ ВЫРАЩИВАНИЯ 

CHLORELLA VULGARIS 

Белокурова Е.С., СППУ им. Петра Великого  
 
Дефицит белка в рационах питания человека и сельскохозяйственных 

животных является важной проблемой современности. При этом проблема 
кормового белка приобрела мировое значение и занимает одно из первых мест. 

В современном промышленном рыбоводстве во всѐм мире уделяется 

большое внимание инновационным технологиям выращивания и кормления 
рыб. Из-за большого загрязнения рыбохозяйственных водоѐмов токсичными 
элементами в пищу рыбам могут попасть вредные вещества и соединения, поэтому в промышленном рыбоводстве широко используются комбикорма [1]. 
Основными питательными веществами корма являются белки с незаменимыми 
аминокислотами, жир с незаменимыми жирными кислотами, простые и сложные углеводы, минеральные вещества и витаминно-ферментные комплексы.  

На сегодняшний день основным источником белка в комбикормах для 

рыб является рыбная мука. По данным различных исследований, именно 
аквакультура потребляет более 50% мирового производства рыбной муки и 
90% рыбьего жира. Они же являются одним из главных источников загрязнения от работы рыбоводных хозяйств. 

Поэтому в разных странах мира проводятся исследования по замене 

рыбной муки на различные высокобелковистые продукты растительного 
происхождения. Так, в США рыбную муку частично заменяют на соевые 
продукты. 

Во многих европейских странах решение проблемы белка в рыбовод
стве и животноводстве видят в расширении производства «одноклеточного» 
белка, получаемого из разнообразных одноклеточных организмов, в том 
числе и водорослей, включая Chlorella vulgaris. Преимущества такого подхода заключаются в высоком содержании его в биомассе продуцентов, широком спектре аминокислот и витаминов, низком содержании липидов, экологической чистоте производства и ряде других моментов [2]. 

Цель нашего исследования: разработка рецептур питательных сред 

для культивирования Chlorella vulgaris  для максимального накопления биомассы.  

В качестве контроля была выбрана питательная среда Тамия следую
щего состава (г/л): КNО3 – 5,0; MgSO4+7H2O – 2,5; KHPO4 – 1,25 [3]. Анализ 

литературных источников показал, что химический состав биомассы одноклеточной водоросли сильно варьируется в зависимости от внешних факторов, в частности от используемых питательных сред, поэтому в качестве дополнительного источника азота и фосфора в экспериментальную среду 1  
было добавлено (NH₄)₂HPO₄ -1,85, а в экспериментальную среду 2 кроме 
(NH₄)₂HPO₄ ещѐ дополнительно были введены источники калия и магния в 
виде K2SO4 хMgSO4-1,3. 

Контрольная и экспериментальные питательные среды и растворы со
лей были приготовлены на основе дистиллированной воды и не подвергались стерилизации. 

Процесс выращивания проходил в лабораторных условиях периодиче
ским методом при искусственном освещении. 

По результатам исследования можно сделать вывод о том, что наибо
лее высокий показатель жизнедеятельности культуры водоросли Chlorella 
vulgaris наблюдался в питательной среде, обогащѐнной (NH₄)₂HPO₄ и K2SO4 
хMgSO4. Данный показатель контролировался по уровню накопленной биомассы. Предложенные питательные среды можно использовать и для непрерывного культивирования биомассы водоросли. 

Моделирование питательных сред для выращивания одноклеточной 

водоросли Chlorella vulgaris позволит получать готовую биомассу определѐнного химического состава, которую можно использовать как источник 
пищевых и биологически-активных веществ при создании сбалансированных кормов для животных и рыб.  

Литература: 1)Аршаница, Н.М. Загрязнение металлами рыбохозяйственных во
доемов./ Н.М. Аршаница , Д.С. Беляев, О.А. Ляшенко, М.Р. Гребцов, А.А. Стекольников ,  
Я.С. Волков //Международный вестник ветеринарии, 2018.  № 2.С.73-81. 2) Мещерякова, 
Ю.В. Культивирование микроводоросли хлорелла / Ю.В. Мещерякова [Текст] // Наука в 
центральной России. 2013. -№2. -С.56-59. 3) Гайсина, Л.А. Современные методы выделения и культивирования водорослей [Текст] / Л.А. Гайсина, А.И. Фазлутдинова, P.P. Кабиров. – Уфа: БГПУ, 2008.–152 с. 

 
УДК: 614.95:636.93 

ПРИМЕНЕНИЕ ВЫСОКОБЕЛКОВЫХ КОРМОВЫХ ДОБАВОК  

В РАЦИОНАХ ПУШНЫХ ЗВЕРЕЙ 

    Белопольский А.Е., СПбГУВМ  
 
Современный рацион для пушных зверей должен содержать в соот
ветствующих количествах все необходимые для организма питательные вещества. Недостаток хотя бы одного из них ухудшает степень использования 
питательных веществ рациона в целом. Высокую продуктивность пушных 
зверей можно поддерживать лишь с учѐтом потребностей организма в питательных веществах при нормированном кормлении. Первоначальное нормирование кормов всегда связано с двумя основными показателями: общей питательностью и количеством  перевариваемого белка [1]. Постоянный недо

корм пушных зверей белками приводит к дегенеративным процессам, таким 
как замедление роста и развития организма животного, перерождение мышечных и костных тканей, прекращение роста волос и воспроизводительных способностей. Полноценность белка зависит от его аминокислотного 
состава. При недостатке одной из лимитирующих аминокислот белок считается неполноценным, и скармливание таких кормов  сказывается на продуктивности животных. Например, при недостатке цистина и метионина прекращается образование гормона роста передней доли гипофиза, а недостаток 
триптофана снижает привесы. Вся жизнедеятельность и тем более продуктивность животных, связана с обязательным присутствием достаточного количества белка в их рационах. Количество перевариваемого протеина в разных кормах отличается. Наиболее богаты белком корма животного происхождения, такие, как кровяная, мясная, мясо - костная мука, мука из продуктов переработки масленичных культур [2]. На переваримость кормов влияют химический состав, физические свойства, вкус, запах и способ подготовки их к скармливанию (резка, дробление, экструдирование и др.). Так, в качестве белковых добавок используется экструдированные смеси измельчѐнных продуктов убоя совместно с растительным наполнителем. Составы получаемых экструдированных белковых добавок могут варьироваться в достаточно широких пределах в зависимости от состава входящих в них компонентов, их соотношения и режима обработки. В рецептах белковых добавок основным источником протеина может быть фарш тушек норки, рыбные 
отходы и продукты убоя птицы.      

С целью изучения питательной ценности экструдированных добавок 

для норок был проведѐн  физиологический опыт, позволяющий охарактеризовать рейтинг кормовых белковых добавок по приросту живой массы. Животные 1 группы получали в сутки по 2 кг общехозяйственного корма основного рациона; животные 2 группы получали в сутки 1,4 кг основного рациона + 0,3 кг белковых добавок + 0,2 кг воды; животные 3 группы получали в сутки 1,4 кг основного рациона + 0,2 кг белковых добавок + 0,2 кг воды. Результаты физиологического опыта представлены в таблице 1. 

Таблица 1 

Влияние экструдированных добавок на прирост  

живой массы   норок (М ± m; n=60)  

Показатели
1 группа n=20
2 группа n=20
3 группа n=20

Живая масса норок на начала 

опыта, г
784±103
776±98
776±92

Живая масса норок на конец 

опыта, г
896±190
947±142
924±111

Среднесуточный прирост живой 

массы, г
14,7±1,7
20,75±2,9
18,77 ±2,6

Съедено корма на голову в 

сутки, г
186
190
189

Из данных таблицы видно, что норки во всех группах съели практиче
ски одинаковое количество корма 186 - 190 г., но в группах 2 и 3 среднесуточный прирост живой массы повысился на  42 % и 28 %  соответственно. 
Из этого можно сделать вывод, что включение экструдированных белковых 
добавок в рацион норок от 15 до 25%  не снижает интенсивности роста зверей в сравнении с основным рационом, даже при снижении общего количества кормов в суточном рационе. С целью изучения влияние экструдированных белковых добавок на репродуктивные функции норок был проведѐн 
опыт по определению плодовитости и выходу щенков. Результаты физиологического опыта представлены в таблице 2. 

Таблица 2 

Влияние экструдированных белковых добавок  

на репродукцию норок (М ± m; n=60)  

Группа 

животных

Живая 
масса,

г

Благополучно 
ощенились, %

Плодовито

сть,

щенков

Мертворожден
ных и павших 

щенков, %

Выход 

щенков на  

самку

Контрольная 

группы

n=30

783±92
90,2
6,41
14,1
5.67

Опытная группа

n=30
781±97
96,7
6,59
12,2
6.59

Из данных таблицы видно, что при щенении норок контрольной груп
пы благополучно ощенились 27 самок из 30, а в опытной группе 29 самок из 
30, что на 6,5 % выше, чем у норок  контрольной группы. Мертворожденных 
щенков у самок опытной группы было меньше на 2%, чем у самок контрольной группы. Выход щенков на основную самку контрольной группы 
составил 5,67 голов в опытной же группе 6,59 голов щенков, что на 14 % 
выше, чем у норок  контрольной группы. 

Сегодня вопросы белкового и аминокислотного питания пушных зве
рей требуют особого внимания, так как здесь заложены большие резервы 
дальнейшего развития звероводства и увеличения производства высококачественной продукции. 

Литература:  1) Квартникова, Е.Г. Рекомендации по санитарно - химическому 

исследованию качества кормов в звероводстве и рациональному их использованию: 
справ. / Е.Г. Квартникова. - Родники:  1994. – 262 с. 2) Крупенин, В.Л. К проблеме переработки биоотходов / В.Л. Крупенин // Успехи современного естествознания. – 2008. – 
№ 6. – С. 137-139. 

 
УДК: 616.34-001.4:57.084:599.323.45 

МОДЕЛИРОВАНИЕ РАНЕВОГО ПРОЦЕССА  

НА  ЛАБОРАТОРНЫХ КРЫСАХ 

Бокарев А.В., Свердлова М.В., СПбГУВМ 
 
Одним из наиболее важных условий при изучении патогенеза ранево
го процесса, а так же влияний на него различных лечебных методик или 

препаратов, является создание адекватной модели данного процесса на лабораторных животных.   

Целью нашей работы являлся подбор такого способа ненесения раны 

лабораторным крысам, который (вариант) продолжался бы достаточно долго, чтобы разница в его продолжительности при спонтанном заживлении 
раны и  при индуцированном заживлении, была статистически достоверна. 

Для достижения поставленной цели были испробованы три способа 

нанесения ран. 

1 – простая хирургическая рана нанесенная скальпелем. 
2 – осложненная рана, при которой края раны нанесенной скальпелем 

дополнительно прижигались 10% раствором трихлоруксусной кислоты. 

3 – ожоговая рана, нанесенная путем  4 секундного контактирования с 

кожей крысы  круглой медной пластиной диаметром 10 мм нагретой в пламени газовой горелки до желтого цвета.  

В ходе последующего наблюдения: 
1 - наблюдали скорость заживления ран путем визуального контроля и 

фотографирования. 

2 -  замеряли расстояния краев раневого дефекта линейкой. 
3 – проводили термометрию и термографию раневого дефекта.   
Нами было установлено, что простые и даже осложненные трихлорук
сусной кислотой раны заживают у крыс слишком быстро. Максимум за  
5 дней. А учитывая, что ни один из химических или биологических ранозаживляющих препаратов не действует моментально, их лечебный эффект не 
может быть оценен объективно за столь короткий период.  

Наиболее оптимальными, с целью последующего изучения влияния 

ранозаживляющих препаратов, следует признать ожоговые раны. Спонтанное 
заживление подобных ран у крыс растянуто на период от 4 до 8 недель. И за 
этот период имеется объективная возможность оценить влияние (или отсутствие такового) любого препарата или любого комбинированного метода. 

Однако следует отметить, что предложенный нами метод следует стан
дартизировать по точности температуры нагревательного элемента и силы его 
давления на поверхность тела подопытного животного. Это необходимо для того, что бы ожоговые раны у всех подопытных животных в выборке имели стандартную глубину повреждения. В противном случае период заживления ран и в 
контрольных и в опытных группах будет слишком вариабельным. 

Работы в этом направлении нами проводятся.  
Список литературы: 1. Спиридонова, Т.Г. Консервативное лечение ожоговых ран 

/ Т.Г. Спиридонова // Рос.мед. журн. 2003. – Т. 9, № 13–14. – С. 560–563. 2. Патент  
№ 2210118 РФ. Способ моделирования ожоговой травмы в эксперименте у животных / 
Моновцов И.А., Лазаренко В.А., Блинков Ю.Ю., Лазарев Е.В.– 08.10.01. 3. Патент  
№ 2472232 РФ. Способ моделирования термической ожоговой раны кожи у лабораторных животных / Колсанов А.В., Алипов В. В., Лебедев М.С., Добрейкин Е.А., Лимарева 
Л.В. – 24.03.11. 4. Влияние препарата ионизированного серебра на репаративную регенерацию кожи и подлежащих тканей при моделировании термических и химических ожогов у крыс /Н.С. Пономарь [и др.] // Биомедицина. – 2012. – № 1. – С. 143–148. 

УДК: 616-001.4-085:615.453.014.6 

АЛГОРИТМ СОЗДАНИЯ ЗАЖИВЛЯЮЩИХ ПЛЕНОК  

ДЛЯ ЛЕЧЕНИЯ РАН 

Бокарев А.В., Блузма А.О., СПбГУВМ 
 
В основе раневого процесса лежит механизм воспаления, то есть 

травматизирующий фактор, вызывающий повреждение кожи/слизистых 
оболочек и подлежащих тканей, повреждает/изменяет биологические структуры, чем вызывает в большей или меньшей степени тканевой дефект. Соответственно, любое повреждение/изменение структуры ткани влечет за собой нарушение ее функции.  

Восстановление структуры, а затем функции ткани является основной 

задачей воспалительной реакции. Однако, воспалительная реакция при раневом процессе не всегда протекает адекватно травматизирующему фактору. Что выражается в гиперэргической или гипоэргической воспалительной 
фазе раневого процесса или в ослабленной, или наоборот слишком интенсивной стадии пролиферации. Управление стадиями воспаления/фазами раневого процесса с приведением их к оптимальному течению и является основной задачей лечения ран.  

Для лечения ран используются многочисленные средства, комби
нированные методы и хирургические техники. Актуальным на сегодняшний день является лечение ран с использованием заживляющих 
пленок. В упрощенном варианте заживляющие пленки моделируют кожный покров и благодаря этому предотвращают негативные влияние 
окружающей среды на первичный пролиферат и размножающиеся эпителиальные клетки. То есть, они действуют в основной пассивно и не 
вмешиваются в биохимические и молекулярно-клеточные механизмы 
воспалительной реакции.  

Есть основания полагать, что введение в состав заживляющих пленок 

протеолитических ферментов может сокращать продолжительность стадии 
самоочищения ран. Данное предположение основано на том, что в механизме самоочищения ран основную роль играют протеолитические ферменты, 
выделяемые в неклеточную среду лейкоцитами воспалительного экссудата. 
Дополнительное введение препаратов, обладающих ферментативными 
свойствами априори должно усилить процессы расщепления воспалительного детрита и тем самым сократить фазу самоочищения и ускорить наступление фазы пролиферации и эпителизации. 

Целью исследования было определить возможность создания пленки, 

обладающей некролитическими свойствами. Для выполнения поставленной 
цели подбирали концентрацию агарозного геля удобного для нанесения на 
раневой дефект. Растворяли протеолитический фермент трипсин в агарозном геле. Агарозный гель наносили на поверхность раневого дефекта, после 
чего проводили мониторинг его очищения.