Материалы национальной научной конференции профессорско-преподавательского состава, научных сотрудников и аспирантов СПбГУВМ
Покупка
Новинка
Тематика:
Ветеринария
Отв. ред.:
Племяшов Кирилл Владимирович
Год издания: 2023
Кол-во страниц: 113
Дополнительно
Вид издания:
Материалы конференций
Уровень образования:
Профессиональное образование
Артикул: 834639.01.99
Тематика:
ББК:
УДК:
ОКСО:
- ВО - Бакалавриат
- 36.03.01: Ветеринарно-санитарная экспертиза
- ВО - Магистратура
- 36.04.01: Ветеринарно-санитарная экспертиза
- ВО - Специалитет
- 36.05.01: Ветеринария
ГРНТИ:
Скопировать запись
Фрагмент текстового слоя документа размещен для индексирующих роботов
МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РФ ДЕПАРТАМЕНТ НАУЧНО-ТЕХНОЛОГИЧЕСКОЙ ПОЛИТИКИ И ОБРАЗОВАНИЯ САНКТ-ПЕТЕРБУРГСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ ВЕТЕРИНАРНОЙ МЕДИЦИНЫ МАТЕРИАЛЫ национальной научной конференции профессорско-преподавательского состава, научных сотрудников и аспирантов СПбГУВМ Санкт-Петербург 2023
УДК 378.12:619:378.6(063)(470.23-25) Материалы национальной научной конференции профессор ско-преподавательского состава, научных сотрудников и аспирантов СПбГУВМ / редкол.: К.В. Племяшов (отв. редактор), А.А. Сухинин (редактор), Г.С. Никитин (редактор) [и др.] ; МСХ РФ, СПбГУВМ. – Санкт-Петербург : Изд-во СПбГУВМ, 2023. – 113 с. Редакционная коллегия: Ректор СПбГУВМ Племяшов К.В. (отв. редактор) Проф. Сухинин А.А. (редактор) Доц. Никитин Г.С. (редактор) Проф. Карпенко Л.Ю. Проф. Белова Л.М. Проф. Яшин А.В. Проф. Крячко О.В. Проф. Белопольский А.Е. Доц. Козыренко О.В. Доц. Нечаев А.Ю. Доц. Щипакин М.В. Доц. Иванов А.А. Утверждены на заседании редакционно-издательского совета ФГБОУ ВО СПбГУВМ Зав. редакционно-издательским центром Иванова С.Э. DOI: 10.52419/3006-2023-1 © ФГБОУ ВО СПбГУВМ, 2023
РЕЗУЛЬТАТЫ НАУЧНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ УДК 616.9-036.22:619(470+571)”2022“ ЭПИЗООТИЧЕСКАЯ СИТУАЦИЯ В РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ ПО СОСТОЯНИЮ НА 2022г. Айдиев А.Б., Козыренко О.В., Данко Ю.Ю., Мищенко Н.В., СПбГУВМ Эпизоотическая ситуация по инфекционным болезням на сегодняш ний день довольно сложная, на территории РФ регистрируется как болезни, которые встречались ранее - туберкулез, бруцеллез, сибирская язва, так и появившиеся новые инфекционные болезни, такие как – нодулярный дерматит, африканская чума свиней, сентенциальная пневмония крупного рогатого скота, микоплазмоз коз [1,2]. Надзор за эпизоотической ситуацией ведут органы государственной ветеринарной службы и Россельхознадзора. Проведенным эпизоотическим обследованием и отчетной ветеринарной документацией на апрель 2022г на территории РФ зарегистрированы эпизоотические очаги по следующим инфекционным болезням: В режиме карантина по АЧС среди домашних свиней находятся 3 очага: 1 – в Волгоградской области, 2 – в Челябинской, а также 3 инфицированных АЧС объектов: по 1 – в Свердловской области, Астраханской области и Хабаровском крае. На территории личного подсобного хозяйства в поселке Нориман Светлоярского района Волгоградской области установлен диагноз АЧС где содержались 42 свиньи, 22 из которых заболело и пало, 20 уничтожено. В Челябинской области введен карантин в двух хозяйствах, где выявлена АЧС свиней и в одном из личных подсобных хозяйств Красноармейского района где пало 117 свиней из них 113 в исправительной колонии №1 и в личном подсобном хозяйстве – 4 головы. В дикой фауне в режиме карантина по АЧС находятся 4 очага: по од ному в Приморском и Ставропольском краях, 2 – в Ярославской области, а также 8 инфицированных объектов по АЧС: по одному – в Орловской и Ростовской областях, 2 в Саратовской области, 4 – в Хабаровском крае. Причиной распространения АЧС является отсутствие своевремен ных методов диагностических исследований и специфических средств защиты [3,4]. Так же были зарегистрированы очаги оспы овец и коз – 2 очага в Республике Дагестан. Вспышка оспы овец зарегистрирована в Дербентском
районе Республики Дагестан в селе Дюзлер на территории крестьянскофермерского хозяйства, где содержится 1000 голов овец, из них заболело и пало 82 головы. Карантин в зоне отгонного животноводства на территории Кунтор калинского района в 4 км севернее села Арада, где пало 15 голов овец из них: 5 взрослых овец и 10 ягнят. В Республике Дагестан эпизоотическая ситуация осложняется тем, что есть частные фермерские хозяйства, где нет надлежащего ветеринарного контроля. Так, в личном подсобном хозяйстве расположенного в селе Кака-Шура Карабудахкентского района зарегистрирован случай сибирской язвы кожной формы у людей. В целях профилактики более 100 жителей села были вакцинированы противосибириязвенной вакциной. Бруцеллез болезнь, которая представляет угрозу как в эпидемиологическом, так и в эпизоотическом плане. Всего за отчетный период выявлено 65 очагов бруцеллеза животных, в том числе: 25 – в Волгоградской области (заболело 42 головы КРС), 10 – в Республике Дагестан на территории (заболело – 27 головы КРС), 10 – в Кабардино-Балкарской Республике на территории Зольского, Урванского, Черкеского и Терского районов (заболело 22 головы КРС), 5 – в Чеченской Республике (заболело 7 голов КРС), 4 – в Краснодарском крае на территории Лабинского района (заболело 14 голов КРС), 3 – в Карачаево-Черкесской Республике (заболело 33 головы КРС), 2 – в Оренбургской области на территории Илекского района (заболело 3 головы КРС), 1 – в Республике Саха (Якутия) на территории Чурапчинского района (заболело 2 головы КРС), 1 – в Ростовской области на территории Орловского района (заболело 7 голов КРС), 1 – в Хабаровском крае на территории г.Комсомольск-на -Амуре (заболело 2 головы КРС), 1 – в Самарской области на территории Большеглушицкого района (заболело 151 голова КРС), 1 – в Республике Тыва на территории Тес-Хемского района (заболело 9 голов МРС), 1 – в Ставропольском крае на территории Труновского района (заболело 9 голов КРС). Таким образом, для обеспечения благополучия территории по всем вышеперечисленным болезням, должен проводиться комплекс мероприятий: 1. Проведение диагностических исследований с целью выявления источника возбудителя инфекции 2. Проведение специфической профилактики против инфекционных болезней определенных ветеринарным законодательством, правилами и инструкцией 3. Проведение ветеринарно-санитарных мероприятий по дезинфек ции, дератизации и дезинсекции, направленных на обеззараживание животноводческих объектов и территорий где возбудители могут сохраняться в окружающей среде.
4. В виду сложной эпизоотической ситуации необходимо проводить строгий эпизоотологический надзор за инфекционными болезнями на территории Российской Федерации. Список литературы 1. Боталова, Д. П. Определение антибактериальных и фунгицидных свойств современного композиционного дезинфицирующего препарата «Дезон Вет» / Д. П. Боталова // Иппология и ветеринария. 4 (42). Санкт-Петербург. – 2021. С. 45-53. 2. Джавадов, Э. Прогрессивные методы вакцинопрофилактики / Э. Джавадов // Животноводство России. – 2020. – № S3. – С. 42-45. 3. Изучение биологических свойств штаммов возбудителей инфекционных болезней животных, выделенных на территории Российской Федерации, и сравнение их с находящимися в коллекциях возбудителями болезней, в том числе, общих для человека и животных, с целью оценки изменчивости их культуральных и морфологических свойств, патогенности, а также изучения их устойчивости к факторам внешней среды и дезинфекционным средствам. Изыскание новых эффективных средств и методов дезинфекции : методические рекомендации / Э. Д. Джавадов, А. А. Сухинин, С. А. Макавчик [и др.]. – Санкт-Петербург : Санкт-Петербургский государственный университет ветеринарной медицины, 2021. – 35 с. 4 Карпенко, Л. Ю. Профилактика микотоксикозов крупного рогатого скота / Л. Ю. Карпенко, А. А. Бахта, А. И. Козицына // Материалы национальной научной конференции профессорскопреподавательского состава, научных сотрудников и аспирантов СПбГАВМ, Санкт-Петербург, 16 ноября 2018 года / Редколлегия: Стекольников А. А. (отв. редактор), Карпенко Л. Ю. (зам. отв. редактора), Иванов В. С., Токарев A. Н., Лукина Ю.Н., Пристач Л. Н., Трушкин В. А., Бахта А. А., Полистовская П. А.. – Санкт-Петербург: Санкт-Петербургская государственная академия ветеринарной медицины, 2018. – С. 47-49. 5. Кузьмин, В. А. Эпизоотологический мониторинг лейкоза крупного рогатого скота в Российской Федерации / В. А. Кузьмин, Л. С. Фогель // Материалы национальной научной конференции профессорскопреподавательского состава, научных сотрудников и аспирантов СПбГУВМ, Санкт-Петербург, 25–29 января 2021 года. – Санкт-Петербург: СанктПетербургский государственный университет ветеринарной медицины, 2021. – С. 56-58. УДК 612.816.1:616-073.788:636.7 ЭЛЕКТРОФИЗИОЛОГИЧЕСКИЕ НАРУШЕНИЯ НЕРВНО-МЫШЕЧНЫХ СТРУКТУР У СОБАК КРУПНЫХ ПОРОД, ВЫЯВЛЕННЫЕ ПРИ ПРОВЕДЕНИИ ЭЛЕКТРОНЕЙРОМИОГРАФИИ Александрова Е.Ю., Крячко О.В., СПбГУВМ Электронейромиография (ЭНМГ) – это прогрессивный метод диа гностики, применяемый врачами неврологами. В гуманной медицине ЭНМГ позволяет специалистам быстрее установить точный диагноз при патологиях периферических нервов, отслеживать динамику патологического процесса в нервной ткани и проводить дифференциальную диагностику
поражений нервно-мышечной системы. У собак крупных пород, по мнению большинства авторов, существует предрасположенность к наличию нервно-мышечных патологий, обусловленная несоответствием резкой и ненормированной нагрузки и физических возможностей организма животных. На основании вышеизложенного, представляется актуальным рас смотреть электрофизиологические отклонения нейро-мышечных структур у собак крупных пород. Исследования проводили на собаках крупных пород (леонбергер, русский черный терьер, японская акита, восточно-европейская овчарка), которые на основании проведенных исследований были разделены на две группы: опытную (n=4) и контрольную (n=8). Животные обеих групп на момент исследования не имели в анамнезе жалоб, подтвержденных генетических болезней. В анамнезе собак исследуемой опытной группы имелись сведения о наличии травм тазовых конечностей различной степени давности. Для измерения использовали стимуляционный 2х-канальный электронейромиограф Нейро-МВП-Микро. Диагностическую ценность для оценки мышечной компоненты имели показатели амплитуды М-ответа, длительности М-ответа, а для оценки нервной проводимости рассматривали показатели латентности М-ответа, рузидуальной латентности и скорости распространения возбуждения. Анализ результатов проводили статистически по стандартным методикам, определяли M (среднее арифметическое) ±m (средняя арифметическая ошибка), достоверность различий определяли с помощью критерия U Вилкоксона-Манна-Уитни. В результате исследований большеберцового нерва (n.tibialis) по стандартной методике [1], установили, что у животных, имеющих в анамнезе травматические повреждения, отмечалось достоверное снижение показателей, характеризующих нервно-мышечную функциональность, что выражалось в снижении амплитуды М-ответа в 3,7 раз (0,01<p<0,05) по сравнению с животными, в анамнезе которых отсутствуют сведения о наличии травм. Также средний показатель скорости распространения возбуждения у этих животных был в 4,7 раз меньше (p<0,01), чем у контрольной группы и составил 120,7±11,27 м/с по сравнению с аналогичным показателем у нетравмированных животных – 564,0±18,26 м/с. Снижение скорости распространения возбуждения связано с нару шением целостности миелиновой оболочки нерва. Снижение скорости проводимости с сохранением длительности М-ответа у опытной группы говорит о наличии повреждений быстропроводящих волокон нерва [4]. Снижение (декремент) амплитуды М-ответа свидетельствует об аксональном типе поражения, полинейропатии, атрофии и дегенерации аксона нервной ткани [3], т.е. об уменьшении количества сокращающихся волокон мышечной ткани. Из этого следует, что животные опытной группы имели как нервные, так и мышечные поражения без манифестации клинической картины.
Таким образом, полученные результаты доказывают, что при нали чии у животных в анамнезе травматических повреждений, независимо от их степени давности, сохраняются стойкие электрофизиологические нарушения периферических нервов. Список литературы 1. Александрова, Е. Ю. Адаптация методики проведения стиму ляционной электронейромиографии по моторным волокнам у собак на примере исследования N.tibialis / Е. Ю. Александрова, О. В. Крячко // Знания молодых для развития ветеринарной медицины и АПК страны: Материалы X юбилейной международной научной конференции студентов, аспирантов и молодых ученых, посвященной году науки и технологий, СанктПетербург, 23–24 ноября 2021 года. – Санкт-Петербург: СанктПетербургский государственный университет ветеринарной медицины, 2021. – С. 13-14. 2. Морфометрия нервных стволов грудной конечности йоркширского терьера / С. В. Вирунен, М. В. Щипакин, А. В. Прусаков [и др.] // Международный вестник ветеринарии. – 2017. – № 2. – С. 27-29. 3. Никитин С.С. Электромиографические стадии денервационно реиннервационного процесса при нервно-мышечных болезнях: необходимость ревизии // Нервно-мышечные болезни. 2015. №2. – с. 16-24. 4. Одинак М. М. Заболевания и травмы периферической нервной системы: (обобщение клинического и экспериментального опыта): руководство для врачей / М. М. Одинак, С. А. Живолупов. - Санкт-Петербург: СпецЛит, 2009 СПб.: Типография "Наука" РАН). – 366 с. УДК 636.086:57.022 ПУТИ АДАПТАЦИИ ФУРАЖНЫХ КУЛЬТУР К ДЕЙСТВИЮ СТРЕСС ФАКТОРОВ Алистратова Ф.И., СПбГУВМ Современные интенсивные технологии производства продуктов пи тания способствуют снижению качественного состава культурных растений. Это является одной из причин, приводящих к возрастанию ослабления их иммунного потенциала по отношению к ряду вредных организмов и многократному уменьшению урожайности. В связи с этим человечество теряет более трети продуктивности сельскохозяйственных угодий. Кроме этого, поражение растений приводит и к скрытым потерям, связанным, например, со снижением качества продукции, поскольку патогены, в дополнение к негативному эффекту на урожайность, обладают свойством синтезировать различного рода токсины[1,3]. Наиболее эффективным и кардинальным способом борьбы с болез нями являются использование иммунизаторов природного происхождения.
В связи с чем, актуальным является поиск новых экологически безопасных препаратов для защиты культурных растений от заболеваний, повышения урожайности и улучшения качества продукции[2]. Целью данной работы была оценка применимости гипоксического воз действия на модели культуры клеток N. tabacum BY-2, для поиска элиситоров. В работе использовали культуру клеток N. tabacum BY-2 для изуче ния накопления фитоалексина капсидиола. Качественный состав полученных экстрактов оценивали с помощью высокоэффективной тонкослойной хроматографии «CAMAG» и ПО winCATS. Разделение проводили на пластинах HPTLC Silica gel 60 F254 (Merc) в системе хлороформ:метанол (16:1). Окрашивали анисовым альдегидом (0.5 мл анисового альдегида, 50 мл ледяной уксусной кислоты, 1 мл серной кислоты) и анализировали при длине волны 460 нм в присутствии стандарта. Действие стресс-фактора моделировали в гипобарокамере. Экспози ция составила 60 минут с разрежением 525-532 мм рт. ст. Выявлено, что в клетках, обработанных гипоксией, обнаружено накопление капсидиола, по отношению к контролю, что подтверждает активацию неспецифической иммунной защиты растительного организма. Таким образом, на культуре клеток N. tabacum BY-2 показан запуск неспецифического пути активации иммунного ответ и последняя может быть использована в качестве модели для поиска элиситоров. Литература 1. Иванова, А. Б. Безопасность и контроль качества пищевых продуктов / А. Б. Иванова, Л. Ю. Карпенко // Acta Naturae (русскоязычная версия). – 2016. – № S1. – С. 220-221. – EDN WLPBKP. 2. Экологические проблемы использования природных и биологических ресурсов в сельском хозяйстве / И. М. Донник, М. Ф. Баймухамедов, Б. А. Воронин [и др.]. – Екатеринбург : Уральское аграрное издательство, 2013. – 200 с. – ISBN 978-5-87203-333-2. – EDN VRTJYT. 3. Алистратова, Ф.И. Материалы 3-ей Международной научной конференции PLAMIC2022 «Растения и микроорганизмы: биотехнология будущего» 3-8 октября 2022 г., СанктПетербург / Ф.И. Алистратова, Е.А. Гусенков, С.В. Сокорнова //отв. ред. И.А. Тихонович – 2022. – 19 с. – ISBN 978-5-6041302-2-3. УДК 57.02 СРАВНИТЕЛЬНЫЕ ХАРАКТЕРИСТИКИ КЛЕТОЧНЫХ ПОПУЛЯЦИЙ ПРИ ИЗУЧЕНИИ ФРАКЦИЙ КРАСНОГО ПИГМЕНТА ДРОЖЖЕЙ SACCHAROMYCES CEREVISIAE Барышев А.Н., Поляков П.А., Чумаков С.И., СПбГУВМ Биосинтез пуринов de novo является одним из наиболее консерва тивных путей среди всех организмов и необходим для жизнеспособности клеток. Ферменты этого пути часто являются мишенями противоопухоле
вых, противовоспалительных и противомикробных препаратов [1]. У дрожжей гены, участвующие в биосинтезе пуринов используются в изучении хронологического старения [2]. Целью исследования являлось изучение фракций красного пигмента и сравнение их биологической активности на трансгенных штаммах дрожжей S. cerevisiae. К моменту начала экспериментов были понятны факторы, потенци ально способные определять молекулярный вес и структуру пигмента. Было проведено изучение сорбции пигмента на DEAE-сефарозе и выявлялись характеристики фракции пигмента ПС(-), показывающие, что данная фракция является не случайным набором сопутствующих примесей, а компонентом полимеризуемого в вакуолях пигмента. Процесс полимеризации пигмента изучен недостаточно, поэтому была проведена проверка влияния сроков инкубации штамма-продуцента на соотношение массовой доли ПС(+) и ПС(-) получаемых при выделении и очистке исходного экстракта пигмента. Результаты эксперимента позволяют сделать вывод, что разные сроки инкубации штамма не влияют на соотношение массовых долей пигмента. Также проверялся характер распределения фракций пигмента на ко лонке с сефадексом G-25, выделенного из штамма после 2, 6 и 12 дней инкубации. Обнаружено, что распределение пигментов ПС(+) и ПС(-) в колонке с сефадексом G25 имеют постоянную оптическую плотность и объем отбираемых фракций высокомолекулярного пигмента (ВМП) и низкомолекулярного пигмента (НМП). Качественные реакции показали, что отличающиеся по молекуляр ному весу и сорбционным свойствам фракции пигмента эквивалентны друг другу по содержанию рибозы и ароматических аминокислот. Оценка влияния фракций пигмента на дрожжевую модель болезни Хантингтона показала, что при инкубации в жидкой среде в течение 3-х дней гибель клеток менее 5% и только на 10-й день количество мертвых клеток достигает порядка 12%. При этом доля GFP(+) клеток в контроле снижается до 50%. Экспрессируемый в дрожжах белок HttQ103-GFP, содержащий 103 глутаминовых повтора, агрегирует в клетках и замедляет рост дрожжей, тем самым проявляя токсический эффект и вызывая их гибель. Инкубация штамма Q103 с фракциями пигмента в течение 10 дней приводила к снижению гибели клеток. При этом концентрация клеток в пробах не давала существенных отличий. Дальнейшее изучение, необходимо проводить с учетом возможного взаимодействия трансгенных белков с дрожжевыми шаперонами, а также белками, способными к прионизации. 1) Были выделены четыре фракции пигмента, отличающиеся сорб ционными и молекулярно-массовыми характеристиками.