Цитология с основами гистологии

 

Министерство науки и высшего образования Российской Федерации 

Сибирский федеральный университет 

 
 
 
 
 
 

Т. И. Голованова 

А. Н. Иванова 

 
 
 
 

ЦИТОЛОГИЯ  

С ОСНОВАМИ ГИСТОЛОГИИ 

 
 
 

Практикум 

 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

Красноярск 

СФУ 
2022 

УДК 57.86(07) 
ББК 28.05я73 

Г610 
 
 
Р е ц е н з е н т ы: 
Ю. А. Литовка, доктор биологических наук, профессор кафедры хи-

мической технологии древесины и биотехнологии Сибирского государственного 
университета науки и технологий имени академика М. Ф. Решетнева; 


А. Я. Ларионова, кандидат биологических наук, старший научный со-

трудник лаборатории лесной генетики и селекции Института леса имени 
В. Н. Сукачева СО РАН 

 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

Голованова, Т. И. 

Г610 
 
Цитология с основами гистологии : практикум / Т. И. Го-

лованова, А. Н. Иванова. – Красноярск : Сиб. федер. ун-т, 2022. – 
116 с. 

 
 
ISBN 978-5-7638-4665-2 
 
 
Изложены краткие теоретические сведения об устройстве микроскопа, 

о строении клеток и тканей животных и растений, приведены правила работы 
с микроскопами и порядок выполнения лабораторных работ. 

Предназначен для студентов, обучающихся по направлению подготовки 

06.03.01 «Биология». 

 
 

Электронный вариант издания см.:

http://catalog.sfu-kras.ru

УДК 57.86(07)
ББК 28.05я73

 
 

ISBN 978-5-7638-4665-2 
© Сибирский федеральный университет, 2022 

ОГЛАВЛЕНИЕ 

ВВЕДЕНИЕ .................................................................................................. 6 

ПРАВИЛА ТЕХНИКИ БЕЗОПАСНОСТИ ........................................... 7 

ПРАВИЛА ОФОРМЛЕНИЯ РАБОТ ...................................................... 9 

1. УСТРОЙСТВО МИКРОСКОПА И ПРАВИЛА РАБОТЫ  
С НИМ ......................................................................................................... 10 
Меры безопасности при работе с микроскопом ................................... 11 
Устройство микроскопа .......................................................................... 12 
Настройка освещения микроскопа с вынесенным осветителем ......... 13 
Настройка освещения микроскопа с встроенным в основание 
осветителем .............................................................................................. 14 
Приготовление постоянных и временных препаратов ......................... 14 
Важнейшие характеристики микроскопа .............................................. 16 
Разрешающая способность объектива ................................................... 20 
Числовая апертура объектива ................................................................. 21 
Глубина резкости изображения .............................................................. 22 

2. КЛЕТКА .................................................................................................. 25 
Строение клеток развивающихся листьев элодеи канадской  
(Elodea canadensis Michx.) ...................................................................... 28 
Строение клеток сформированного листа элодеи ................................ 29 
Клетки кожицы листа валлиснерии (Vallisneria spiralis L.) ................ 31 
Плазмолиз в клетках кожицы чешуи луковицы репчатого лука  
(Аllium сера L.) ......................................................................................... 33 
Эндоцитоз ................................................................................................ 34 
Клетки плоского эпителия полости рта человека ................................. 35 
Межклеточные соединения .................................................................... 36 
Плазмодесмы в оболочках клеток запасающей ткани семени  
хурмы (Diospyros Kaki Thunb.) ............................................................... 38 
Эндоплазматический ретикулум ............................................................ 39 
Рибосомы ................................................................................................. 40 
Аппарат Гольджи .................................................................................... 40 
Лизосомы ................................................................................................. 42 
Пероксисомы ........................................................................................... 43 
Ультраструктурная организация митохондрий .................................... 43 
Ультраструктурная организация хлоропласта ...................................... 45 
Обнаружение ассимиляционного крахмала в клетках листа элодеи 
(Elodea canadensis Mich.) ........................................................................ 46 

Ультраструктурная организация хромопласта ..................................... 47 
Хромопласты в клетках околоплодников зрелых плодов  
и корнеплодах моркови ........................................................................... 48 
Ультраструктурная организация лейкопласта ...................................... 50 
Лейкопласты в клетках кожицы листа традесканции вирджинской 
(Tradescantia virginiana L.) ..................................................................... 51 
Ультраструктура интерфазных ядер ...................................................... 52 
Ультраструктура ядерной мембраны ..................................................... 54 
Ядра растительных клеток. Корешок лука ............................................ 54 

3. ДЕЛЕНИЕ ............................................................................................... 56 
Митоз в клетках корешка лука ............................................................... 59 
Митоз в животной клетке ....................................................................... 61 
Амитоз эпителиальных клеток ............................................................... 63 
Пути клеточной гибели ........................................................................... 64 

4. ТКАНИ .................................................................................................... 65 
4.1. Эпителиальные ткани ....................................................................... 65 
Клетки призматического эпителия почечных канальцев..................... 66 
Клетки мерцательного эпителия мантии беззубки ............................... 67 
Многорядный однослойный эпителий .................................................. 68 
Многослойный эпителий ........................................................................ 69 
Переходный эпителий мочевого пузыря ............................................... 71 
Обкладочные клетки фундальных желез желудка ............................... 72 
4.2. Соединительные ткани ..................................................................... 74 
Рыхлая соединительная ткань крысы .................................................... 77 
Пигментные клетки кожи головастика .................................................. 79 
Жировая ткань ......................................................................................... 79 
Плотная соединительная ткань .............................................................. 81 
Гиалиновый хрящ ребра кролика ........................................................... 81 
Волокнистый хрящ межпозвоночного диска ........................................ 82 
Эластическая связка. Продольный разрез ............................................. 83 
Плотная коллагеновая соединительная ткань. Сухожилие, 
поперечный разрез .................................................................................. 84 
Костная ткань. Клетки жаберной крышки ............................................ 86 
Берцовая кость человека в поперечном разрезе ................................... 86 
Развитие кости из соединительной ткани. Нижняя челюсть  
зародыша свиньи ..................................................................................... 88 
Развитие кости на месте хряща. Трубчатая кость зародыша свиньи .. 89 
Эритроциты лягушки .............................................................................. 90 
Мазок крови человека ............................................................................. 91 

4.3. Мышечная ткань ............................................................................... 92 
Поперечно-полосатая мышечная ткань ................................................. 93 
Гладкая мышечная ткань ........................................................................ 94 
Сердечная мышечная ткань .................................................................... 96 
4.4. Нервная ткань ................................................................................... 97 
Нервные клетки сетчатки лошади .......................................................... 98 
Двигательные нейроны. Спинной мозг ................................................. 98 
Тигроид в двигательных нейронах ...................................................... 100 
Синапсы на нейронах мозжечка ........................................................... 101 
Миелиновые нервные волокна ............................................................. 102 

БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК ............................................... 104 

СЛОВАРЬ ТЕРМИНОВ ........................................................................ 106 
 
 
 

ВВЕДЕНИЕ 

При подготовке специалистов-биологов среди общих биологи-

ческих дисциплин важное место занимает цитология – наука о строении 
и функциях клетки. Цитология – наука экспериментальная, поэтому 
в учебном плане подготовки биологов кроме лекционного времени 
для ее изучения отводится время на лабораторные занятия. 

В задачи лабораторного практикума по цитологии с основами 

гистологии входят: проверка и закрепление теоретических положений, 
излагаемых в лекционных курсах и учебниках; ознакомление  
со строением клеток и тканей животных и растений; знакомство и работа 
с современными световыми микроскопами; получение навыков 
научно-исследовательской работы, способности описывать и обобщать 
полученный материал; приобретение навыков приготовления 
как временных, так и постоянных препаратов, формирование общенаучных, 
инструментальных и общепрофессиональных компетенций. 

Лабораторные занятия выполняются индивидуально. Лаборато-

рии должны быть оснащены современными световыми микроскопами 
(люминесцентный AxioImager.D1, проходящего и отраженного света 
AxioImager D1); микроскопами Axiostar plus (производство ZEIZZ); 
санными микротомами НМ 430; спектрофотометрами Analytik jena 
SPEKOL 1300  для ознакомления с разнообразными клетками, тканями, 
процессами деления клеток. Также должны быть доступны интерактивные 
технические средства обучения, компьютерная техника для 
проверки знаний тестированием UniTest версии 3.0.0. 

К лабораторному практикуму студент допускается только после 

инструктажа по технике безопасности. Основные положения техники 
безопасности изложены в инструкциях, которые должны находиться 
на видном месте в лаборатории.  

ПРАВИЛА  

ТЕХНИКИ БЕЗОПАСНОСТИ 

К работе в лаборатории допускаются студенты, прошедшие ин-

структаж по технике безопасности. 

Нужно работать в белом халате из хлопчатобумажной ткани  

и иметь личное полотенце. 

На каждом занятии назначается дежурный, который отвечает  

за чистоту и порядок. 

За каждым студентом закрепляется рабочее место, которое 

необходимо содержать в чистоте и порядке. 

Запрещается держать в лаборатории пищевые продукты, прини-

мать пищу, пить воду из химической посуды. 

Перед работой следует проверить исправность нагревательных 

приборов, вентиляции, защитных средств. Ремонт оборудования может 
производить только инженер. 

Запрещается работать с разбитой посудой, пользоваться реакти-

вами из банок без этикеток. 

Необходимо переливать приготовленные растворы в склянки  

с надписями. 

Нельзя оставлять без присмотра включенные приборы и элек-

трооборудование. 

Работать с летучими и ядовитыми веществами можно только 

под тягой. 

Использовать для отмеривания кислот, щелочей и ядовитых ре-

активов нужно цилиндры либо пипетки с резиновой грушей или ватным 
тампоном.  

При работе с едкими веществами следует надевать предохрани-

тельные очки, резиновые перчатки и фартуки. 

Сливать кислые и щелочные реактивы в раковину можно только 

после их нейтрализации. 

Для нагревания горючих и летучих реактивов нужно пользо-

ваться водяными банями. Нельзя их нагревать на открытом огне или 
вблизи пламени. 

При внезапном отключении тока необходимо выключить все 

электроприборы. 

Тушить огонь при загорании легковоспламеняющихся жидко-

стей нужно углекислотным огнетушителем, песком или кошмой. 

При загорании проводов следует немедленно их обесточить, ту-

шить огонь углекислотным огнетушителем или асбестовым покрывалом. 

Работать с ртутными термометрами нужно очень осторожно. 
После окончания работы привести в порядок рабочее место 

(убрать со стола реактивы и оборудование, из ящиков стола мусор, 
стол вымыть, протереть сухой тряпкой) и сдать дежурному. 

ПРАВИЛА ОФОРМЛЕНИЯ РАБОТ 

Каждый студент ведет рабочую тетрадь, оформление которой 

должно отвечать следующим требованиям: 

– на титульном листе указывают предмет, по которому делаются 

записи, кем они делаются (курс, группа, подгруппа, фамилия, имя, 
отчество); 

– каждое занятие отмечают порядковым номером, указывают его 

дату; 

– при оформлении работы указывают ее заглавие, цель, объект 

изучения; 

– результаты фиксируют в виде рисунков с обязательными под-

писями к ним и описывают текстом или оформляют в виде таблиц 
(характер оформления работы обычно в конкретном практикуме); 

– рисунки должны быть размером с четверть тетрадного листа, 

иметь номер, название, выноски и подписи; 

– в конце каждой работы делают вывод или заключение, кото-

рые обсуждаются при подведении итогов занятия.  

Зарисовывание препаратов имеет исключительно важное значе-

ние в процессе их изучения. Процесс зарисовки учит студента «читать» 
препарат, понимать своеобразие и общность клеток и тканей, 
глубже осмысливать их морфологические, генетические и функциональные 
особенности. 

Все записи необходимо делать в лаборатории. Для проверки 

академической активности и качества работы студента дневник периодически 
проверяет преподаватель, дает ему оценку.  

1. УСТРОЙСТВО МИКРОСКОПА  

И ПРАВИЛА РАБОТЫ С НИМ 

Микроскоп необходимо содержать в чистоте и предохранять  

от повреждений. В нерабочем состоянии микроскоп должен быть 
накрыт чехлом. Особое внимание следует обращать на чистоту объективов 
и других оптических деталей. 

ВНИМАНИЕ! Нельзя касаться пальцами поверхностей линз. 

Для предохранения оптических деталей визуальной насадки от пыли 
следует оставлять окуляры в тубусах или надевать на них колпачки. 

Оптические поверхности окуляров, объективов и конденсора 

можно осторожно протирать чистой ватой, навернутой на деревянную 
палочку и смоченной специальной жидкостью для чистки оптических 
деталей. При загрязнении внутренних поверхностей линз объектива 
необходимо объектив отправить для чистки в оптическую мастерскую. 


ВНИМАНИЕ! Запрещается самим разбирать объективы, окуля-

ры, конденсор. 

Рассмотрим важнейшие погрешности при работе с микроскопом, 

чтобы начинающие исследователи не допускали их с самых первых 
шагов, добиваясь таким образом максимального использования возможностей 
микроскопа. К таким ошибочным действиям необходимо 
отнести следующие: 

– одновременное применение вогнутого зеркала и конденсора, 

что нарушает принцип освещения препарата; 

– использование высокоапертурных конденсоров с NA = 1,2–1,4 

с низкоапертурными объективами с NA = 0,2–0,4, ухудшающих качество 
изображения. Для устранения этой ошибки следует предварительно 
уменьшить нумерическую апертуру конденсора путем снятия 
(отвинчивания) его верхней линзы; 

– произвольное опускание конденсора без учета толщины пред-

метного стекла, что может привести к появлению артефактов; 

– регулировка освещенности поля зрения микроскопа при по-

мощи опускания и поднятия конденсора, поскольку это влияет на качество 
изображения; 

– произвольное изменение величины отверстия апертурной диа-

фрагмы конденсора с целью регулировки освещенности поля зрения 
микроскопа; 

– пренебрежение нейтральными светофильтрами и матовыми 

стеклами для регулировки освещенности поля зрения микроскопа, что 
ухудшает восприятие препарата и может оказывать отрицательное 
влияние на зрение исследователя; 

– применение толстых предметных стекол (толще 1,2 мм), что 

препятствует правильной установке освещения при высокоапертур-
ных объективах, поскольку при этом не удается сфокусировать конденсор 
на объекте;  

– применение покровных стекол несоответствующей толщины 

(толще или тоньше 0,17 мм); 

– пренебрежение созданием полной иммерсии при работе с объ-

ективами, имеющими нумерическую апертуру более 1,2, что не позволяет 
полностью использовать нумерическую апертуру объектива. 

Меры безопасности при работе с микроскопом 

При работе с микроскопом с осветителем следует соблюдать ме-

ры безопасности, соответствующие мерам, принимаемым при эксплуатации 
электроустановок напряжением до 1 000 В. 

ВНИМАНИЕ! Замену лампы в осветителе микроскопа произво-

дить только при отключении от электрической сети. Во избежание 
ожога кожи рук о колбу лампы или контактные пластины патрона замену 
лампы следует производить через 15–20 мин после ее перегорания. 


Замену плавкой вставки (предохранителя) в микроскопе следует 

производить при отключенном от сети микроскопе. 

После работы с микроскопом с осветителем необходимо отклю-

чить его от сети. 

Не рекомендуется оставлять без присмотра включенный в сеть 

микроскоп. 

Устройство микроскопа 

Микроскоп представляет собой оптический прибор, дающий 

увеличенное изображение мелких объектов и их деталей. Хотя различные 
марки световых микроскопов имеют конструктивные отличия, 
в каждом из них существуют оптические и механические узлы.  

Устройство микроскопа показано на рис. 1. 
Оптический узел составляют осветительная система (конденсор 

и зеркало), объективы и окуляры вместе с тубусом; все составные части 
строго центрированы одна в отношении другой. 

 

 
Рис. 1. Устройство микроскопа Primo Star:  

1 – окуляры; 2 – бинокулярная насадка; 3 – револьверное устройство; 4 – объектив; 
5 – предметный столик; 6 – конденсор; 7 – показатель интенсивности освещения; 
8 – включение и выключение микроскопа; 9 – рукоятка грубой фокусировки; 
10 – рукоятка тонкой фокусировки; 11 – рукоятка перемещения предмет- 
 
ного столика 

Механический узел микроскопа состоит из штатива, на котором 

крепятся оптические детали, предметного столика и механизмов фокусировки 
микроскопа. 

Настройка освещения микроскопа  

с вынесенным осветителем 

В соответствии с принципом Келлера при установке освещения 

для микроскопа типа МБИ-3, а также микроскопов серии «Микмед»  
с вынесенным осветителем необходимо руководствоваться следующими 
правилами. 

1. Устанавливают осветитель ОИ-19 (или ОИ-9м) перед микро-

скопом с помощью соединительной планки, что обеспечивает нормальное 
расстояние микроскопа от осветителя. Включают его через 
трансформатор в сеть и, поворачивая корпус, направляют световой 
поток на плоское зеркало микроскопа. 

2. Поднимают конденсор микроскопа в верхнее положение и пол-

ностью закрывают его диафрагму. 

3. Уменьшают диаметр отверстия ирисовой диафрагмы освети-

теля до 1–2 мм. 

4. Перемещая патрон лампочки осветителя вдоль оси и одновре-

менно поворачивая зеркало микроскопа и корпус осветителя, добиваются 
получения изображения нити лампочки на закрытой диафрагме 
конденсора. При этом центр изображения нити лампочки должен 
находиться в центральной части ирисовой диафрагмы. 

5. Открывают отверстие диафрагмы конденсора и осветителя. 
6. Уменьшают яркость свечения нити лампочки при помощи 

реостата. 

7. Помещают исследуемый препарат на предметный столик 

микроскопа, ставят необходимый объектив в рабочее положение 
и, глядя в окуляры бинокулярной насадки микроскопа, перемещением 
тубуса фокусируют оптику микроскопа на объект. 

8. Почти полностью закрывают диафрагму осветителя и пере-

мещением конденсора добиваются резкого изображения диафрагмы 
осветителя в поле зрения микроскопа. 

9. Поворотом зеркала центрируют изображение диафрагмы 

осветителя, а затем открывают ее настолько, чтобы изображение диафрагмы 
было равно (или немного больше) полю зрения микроскопа.  

10. Вынимают один окуляр и, глядя в тубус микроскопа, умень-

шают диафрагму конденсора до едва заметного появления ее краев  
на фоне светлого кружка задней линзы объектива. 

11. Помещают окуляр на место. В прорези осветителя вставляют 

синее и матовое стекла. Затем, глядя в микроскоп, при помощи реостата 
осветителя устанавливают необходимую освещенность препарата.