Паразитология и инвазионные болезни животных
Покупка
Тематика:
Ветеринария
Издательство:
Республиканский институт профессионального образования
Год издания: 2020
Кол-во страниц: 266
Дополнительно
Вид издания:
Учебное пособие
Уровень образования:
Среднее профессиональное образование
ISBN: 978-985-7234-12-7
Артикул: 749648.01.99
В учебном пособии изложены основные вопросы морфологии и биологии возбудителей паразитарных болезней, их симптоматика и диагностика, приведены данные по препаратам, применяемым при инвазионных заболеваниях. Описаны также основные методы консервирования и пересылки патологического материала.
Предназначено для учащихся колледжей, ветеринарных специалистов и слушателей ФПК.
Тематика:
ББК:
УДК:
ОКСО:
- Среднее профессиональное образование
- 36.02.01: Ветеринария
- 36.02.03: Зоотехния
ГРНТИ:
Скопировать запись
Фрагмент текстового слоя документа размещен для индексирующих роботов
А. И. Ятусевич Н. Ф. Карасев С. И. Стасюкевич ПАРАЗИТОЛОГИЯ И ИНВАЗИОННЫЕ БОЛЕЗНИ ЖИВОТНЫХ Допущено Министерством образования Республики Беларусь в качестве учебного пособия для учащихся учреждений образования, реализующих образовательные программы среднего специального образования по специальности «Ветеринарная медицина» Минск РИПО 2020
УДК 619:616.99(075.32) ББК 48.73я723 Я87 А в т оры : заведующий кафедрой паразитологии и инвазионных болезней УО «Витебская государственная академия ветеринарной медицины» доктор ветеринарных наук, профессор А. И. Ятусевич; доктор ветеринарных наук, профессор Н. Ф. Карасев; доцент этой же кафедры доктор ветеринарных наук, доцент С. И. Стасюкевич. Рецен з ен т ы : цикловая комиссия ветеринарных дисциплин УО «Смиловичский государственный аграрный колледж» (И. В. Иванютина); доцент кафедры микробиологии и эпизоотологии УО «Гродненский государственный аграрный университет» кандидат ветеринарных наук, доцент Т. М. Скудная. Ятусевич, А. И. Я87 Паразитология и инвазионные болезни животных : учеб. пособие / А. И. Ятусевич, Н. Ф. Карасев, С. И. Стасюкевич. – Минск : РИПО, 2020. – 266 с. : ил. ISBN 978-985-7234-12-7. В учебном пособии изложены основные вопросы морфологии и био логии возбудителей паразитарных болезней, их симптоматика и диагностика, приведены данные по препаратам, применяемым при инвазионных заболеваниях. Описаны также основные методы консервирования и пересылки патологического материала. Предназначено для учащихся колледжей, ветеринарных специали стов и слушателей ФПК. УДК 619:616.99(075.32) ББК 48.73я723 ISBN 978-985-7234-12-7 © Ятусевич А. И., Карасев Н. Ф., Стасюкевич С. И., 2020 © Оформление. Республиканский институт профессионального образования, 2020
ПРЕДИСЛОВИЕ Паразитология (от греч. parasites – нахлебник, паразит, logos – наука) – биологическая наука, изучающая паразитов, их взаимоотношения с хозяевами и окружающей средой, а также вызываемые ими болезни у человека, животных и растений. Подразделяется по объектам паразитирования на медицинскую, ветеринарную и агрономическую или фитопаразитологию. Паразитарные болезни причиняют значительный ущерб вследствие снижения продуктивности животных, что отрицательно сказывается на количестве и качестве получаемой продукции: мяса, молока, яиц, шерсти и др. В связи с этим ветеринарные специалисты должны проводить своевременную диагностику болезней паразитарной этиологии и организовывать эффективные мероприятия по ликвидации паразитов. Большинство паразитарных болезней по своему клиниче скому проявлению сходны с инфекционными. Поэтому каждый ветеринарный специалист обязан в первую очередь разбираться в эпизоотологической ситуации, четко понимать особенности клинического проявления и использовать лабораторные методы выявления морфологических особенностей возбудителя, его яиц, личинок и т. д. Исходя из вышеизложенного, в предлагаемом вашему внима нию пособии по каждой болезни описаны эпизоотологические данные, особенности клинического проявления и патологоанатомические изменения, а также приведены методики лабораторных исследований патологического материала и методики изучения отдельных объектов внешней среды. Учебное пособие по паразитологии и инвазионным болезням животных предназначено для средних специальных учебных заведений. Оно соответствует программе «Паразитология и инвазионные болезни животных» для учреждений образования, обеспечивающих получение среднего специального образования по специальности 2 – 74 03 02 «Ветеринарная медицина».
ГЕЛЬМИНТОЛОГИЯ Прижизненная диагностика гельминтозов Клиническое проявление гельминтозов чрезвычайно разно образное, однако часто без специфических признаков. Имеющиеся изменения могут наблюдаться и при болезнях иной этиологии. В связи с этим диагностика гельминтозов проводится, как правило, специфическими лабораторными методами. Паразитические черви поражают различные органы и ткани животных. При размножении они откладывают яйца или личинки, которые различными путями выделяются из организма хозяина во внешнюю среду. Обнаружение гельминтов, их личинок и яиц в экскрементах или тканях инвазированных гельминтами животных лежит в основе лабораторных методов диагностики гельминтозов. Методы исследования, направленные на обнаружение пара зитов или их отдельных частей, называют гельминтоскопией. Для обнаружения яиц гельминтов используют методы гельминтоовоскопии, а для выявления личинок гельминтов – методы гельминтоларвоскопии. Взятие и доставка в лабораторию проб фекалий Рукой в резиновой перчатке берут примерно 10–20 г фекалий из прямой кишки животных или только что выделившихся при испражнении. В последнем случае берут пробу с верхней части экскрементов, не соприкасавшейся с полом или почвой. Руку и пинцет после взятия каждой пробы тщательно моют. Пробы от мелких животных берут с помощью резиновой груши. Вращательными движениями наконечник груши вводят в прямую кишку. При сдавливании груши воздух входит в кишку. Затем наконечник груши вынимают. Эта манипуляция вызывает рефлекторный акт дефекации. После каждого взятия пробы наконечник груши тщательно промывают. Взятый материал регистрируют в описи сопроводительного документа.
ГельминтолоГия Каждую пробу помещают в пакетик из плотной бумаги или целлофановый, нумеруют и отправляют в лабораторию с описью в сопроводительном документе. В нем указывают хозяйство, отделение или владельца животных, вид и количество их в стаде (отаре, табуне), дату взятия проб и цель исследования. В лабораторию отправляют пробы не более суточной дав ности со времени их взятия. При исследовании на диктиокаулез и стронгилоидоз пробы следует доставлять в лабораторию не позже чем через 4 ч после взятия. Консервирование проб фекалий. В пробах фекалий, храня щихся при температуре свыше 20 °С, в яйцах большинства видов стронгилят и рабдидат в течение суток формируются личинки и по мере своего развития выходят в окружающую среду. Например, при 22–24 °С и 65–67 % относительной влажности воздуха количество яиц стронгилят в пробах фекалий в первые 24 ч уменьшается в 2,5–9,4 раза, а стронгилоидеса – в 5,8–4,9 раза; через 48 ч в пробах остается мизерное количество яиц. Исследования таких проб методами овоскопии через сутки или более дадут отрицательные результаты, несмотря на реальную зараженность животных. В отношении большинства других возбудителей это не происходит, но в связи с развитием микрофлоры и гнилостных процессов в пробах исследовать материал трудно. Поэтому фекалии целесообразно исследовать сразу после доставки. Если время, условия или какие-либо другие причины не по зволяют исследовать материал своевременно, его консервируют физическими и химическими способами и средствами. Из физических известен способ воздействия пониженными температурами. В пробах фекалий, помещенных в холодильник при температуре от 0 до 4 °С, развитие личинок в яйце и личинок, выделившихся из яйцевых оболочек, задерживается. Однако длительное хранение материала при этой температуре не предотвращает бактериального развития и гнилостный процесс в нем. Из химических средств предлагают следующие. 1. Растворы детергентов (моющих средств). В состав детерген тов входят жирные спирты, относящиеся к группе поверхностноактивных веществ, а также полифосфаты, силикаты натрия, алкилоламиды, карбоксиметилцеллюлоза и другие вещества. Применяют также препараты «Лотос», «Экстра», «Барф», «Тайд» и др. Гранулированный порошок «Лотос» содержит около 5 % вла ги. Для удаления влаги перед приготовлением раствора порошок
ГельминтолоГия выдерживают в сушильном шкафу при 100 °С в течение 2 ч. Концентрация водного раствора «Лотоса», составляющая 1 % при весовом соотношении концентрата с фекалиями не менее 5:1, препятствует развитию яиц трихостронгилид. При этом яйца не претерпевают существенных морфологических изменений. Если «Лотоса» нет, можно применять порошок «Экстра», но в 1,5%-ной концентрации. На пробу массой 3 г требуется 15 г раствора. В пробах, залитых таким раствором (в стаканчиках или цел лофановых мешочках), яйца и личинки гельминтов могут сохраняться длительное время. Однако рекомендуют хранить материал не более двух недель. Со временем под воздействием детергентов может происходить автолиз яиц (их отдельные компоненты способны проникать через оболочки яиц). Это вызывает гибель яиц и, следовательно, потерю их. Уменьшение количества яиц по мере длительности хранения отмечают при температуре 30 °С и выше в связи с усиленным автолизом содержимого яиц. Детергенты, образуя поверхностную пленку, покрывающую яйца, снижают аэрацию яиц и тем самым препятствуют их развитию. Кроме этого, они задерживают развитие микрофлоры, влияющей на яйца гельминтов. Установлено хорошее консервирующее действие «Лотоса» и «Экстры» на яйца аскарисов, трихоцефалюсов, анкилостоматид, трихостронгилид, тениид, гименолепидид, описторхисов, дикроцелиумов, шистозом. Не исключено, что такое действие может быть и в отношении многих других возбудителей гельминтозов. 2. Жидкость Барбагалло – 3%-ный раствор формалина в изо тоническом растворе натрия хлорида. Добавление к пробам фекалий этой жидкости позволяет сохранять их не менее двух недель (опыты проведены на яйцах аскарисов, трихоцефалюсов, анкилостоматид и тениид). 3. Смесь 0,2%-ного водного раствора натрия нитрата (1900 мл), раствора Люголя (5 г йода, 10 г калия йодида, 250 мл воды), формалина (300 мл) и глицерина (25 мл). В ней яйца гельминтов сохраняются 6–8 мес. 4. Смесь глицерина (5 мл), формалина (5 мл) и воды (100 мл). 5. Смесь мертиолата 1:1000 (200 мл), формалина (25 мл), гли церина (5 мл), дистиллированной воды (250 мл) и раствора Люголя (0,6 мл) из расчета 1 г фекалий на 10 мл смеси.
ГельминтолоГия Гельминтоскопия Для обнаружения гельминтов в фекалиях их смешивают с водой (1:10) и смеси дают отстояться. Через некоторое время (не менее 5 мин) верхний слой воды сливают, а к осадку приливают новую порцию воды. Так повторяют несколько раз, что позволяет удалить бóльшую часть посторонних веществ, а в осадке остаются паразиты и нерастворимые тяжелые части фекалий. Затем осадок исследуют макро- и микроскопически. Макроскопическое исследование. Промытый осадок фека лий вновь разбавляют водой, небольшими порциями наливают в черную кювету и при медленном покачивании ее внимательно просматривают осадок. Можно брать осадок небольшими порциями, выливать в чашки Петри и просматривать под лупой или микроскопом. Некоторых гельминтов лучше наблюдать на белом фоне. Поэтому рекомендуют одну половину кюветы окрашивать в черный цвет, другую – в белый. Так последовательно просматривают весь материал. Обнаруженных паразитов выбирают препаровальной иглой или кисточкой и фиксируют. Микроскопическое исследование. Для обнаружения мелких форм паразитов отмытый осадок исследуют в бактериологических чашках с помощью штативной лупы (6–10-кратное увеличение). Гельминтоовоскопия Оборудование и средства. Для проведения гельминтоовоско пии необходимо следующее оборудование и материалы: микроскоп биологический иммерсионный (МБИ) или микроскоп биологический стереоскопический (МБС), предметные и покровные стекла, бактериологические чашки, пинцеты, ножницы, стеклянные палочки, фарфоровые ступки и пестики, стаканчики из стекла или синтетического материала с верхним диаметром 4–5 см (мензурки в форме усеченного конуса на 50 мл), можно использовать баночки Флоринского, ситечки с металлической или покровной сеткой (кусочки чулочной ткани или марли) с величиной сторон ячеек 0,25–0,3 мм, центрифужные пробирки, центрифуга до 2 тыс. об/мин, металлические петли с диаметром кольца 5–8 мм, спиртовая или газовая горелка, флотационные растворы, денсиметр для проверки плотности флотационных растворов, глицерин, молочная кислота, глазные пипетки, целлофановая пленка.
ГельминтолоГия Приготовление флотационных растворов Насыщенный раствор натрия хлорида (NaCl). В эмалирован ное ведро с кипящей водой порциями кладут соль, постоянно помешивая деревянной лопаточкой до полного растворения. Соль добавляют до тех пор, пока она не начинает выпадать в осадок. Для приготовления раствора требуется 420 г соли на 1 л воды. В горячем виде раствор фильтруют через марлю. При остывании раствора кристаллы натрия хлорида выпадают в осадок, что свидетельствует о плотности насыщенного раствора, равной 1,18–1,20. Раствор свинца нитрата (азотнокислого свинца) (Pb(NO3)2). Соль растворяют в горячей воде порциями при подогревании и постоянном помешивании до полного растворения. На 1 л воды требуется 650 г соли. Фильтровать раствор не обязательно. Плотность насыщенного раствора 1,5. Он обладает высокой флотационной способностью. Однако уже через 24 ч после приготовления плотность несколько падает за счет выпадения частиц соли в осадок. Поэтому перед употреблением раствор подогревают, размешивая осадок. Плотность уточняют денсиметром. Свинца нитрат – соль тяжелого металла, при работе с ним следует соблюдать осторожность. Раствор аммония нитрата (NH4NО3 ) готовят так же, как и предыдущий раствор. На 1 л воды расходуют 1500 г гранулированного порошка аммониевой селитры. Плотность раствора аммония нитрата должна быть 1,5. Раствор натрия нитрата (NaNO3 ) готовят путем добавле ния на 1 л воды 1 кг азотнокислого натрия. Плотность раствора равна 1,38–1,40. Раствор цинка сульфата (ZnSО4 × 7H2О) приготавливают пу тем добавления на 1 л воды 400 г сернокислого цинка. Его плотность равна 1,24. Раствор натрия тиосульфата (Na2S2О3 × 5H2О) с плотностью 1,4 готовят путем добавления к 1 л воды 1750 г вещества. Раствор магния сульфата (MgSО4 ) с плотностью 1,26– 1,28 готовят путем добавления 920 г соли на 1 л воды. Методы седиментации Метод последовательных промываний применяют для диагно стики трематодозов (фасциолеза, дикроцелиоза, парамфистомоза, описторхоза и др.). Пробу фекалий (3–5 г) кладут в стакан
ГельминтолоГия чик или фарфоровую ступку, заливают небольшим количеством воды и, размешивая стеклянной палочкой (в ступке пестиком), добавляют воду до 50–100 мл. Смесь фильтруют через ситечко или марлю (1 слой) и отстаивают 3–5 мин. Затем верхний слой сливают, а к осадку добавляют такое же количество воды и повторяют процедуру до тех пор, пока надосадочный слой не будет прозрачным. Верхний слой сливают, а осадок порциями разливают в чашки Петри или на предметное стекло и микроскопируют (рис. 1). Рис. 1. Схема исследования фекалий методом последовательных промываний Модификация метода по Никулину. Учитывая, что при по следовательном сливании надосадочной жидкости происходит взмучивание, осадок и часть яиц трематод могут быть слиты, Т.Г. Никулин предложил отсасывать надосадочную жидкость грушей. При массовых исследованиях на наконечник груши надевают кружок из картона (ограничитель). Поскольку во всех пробах в стаканчиках остается одинаковое количество осадка и он не взмучивается, результаты исследований являются более достоверными (рис. 2).
ГельминтолоГия Рис. 2. Модификация метода последовательных промываний по Никулину: а – груша с картонным кружком-ограничителем; б – момент отсасывания надосадочной жидкости; 1 – груша; 2 – картонный кружок; 3 – осадок Метод седиментации с целлофановыми пленками по Котель никову – Хренову предложен для диагностики фасциолеза и дикроцелиоза жвачных, аскариоза и трихоцефалеза свиней. Из гидрофильного целлофана толщиной 22 мкм нарезают прямоугольные кусочки 2 × 3 см и помещают их на 24 ч в бактериологическую чашку с 50%-ным раствором молочной кислоты или глицерина. После приготовления целлофановых пленок берут пробу фе калий массой 2 г и размешивают в стаканчике с небольшим количеством воды. Взвесь фильтруют через металлическое ситечко или марлю (в один слой) в чистый стакан емкостью 50 мл, отстаивают 15 мин, сливают надосадочную жидкость, а к осадку добавляют 35–40 мл водопроводной воды, опять отстаивают 5 мин, надосадочную жидкость сливают, осадок переносят на предметное стекло и покрывают целлофановой пленкой. Через 8–10 мин проводят микроскопию препарата. Раствор молочной кислоты или глицерина просветляет препарат, а пленка предохраняет его от высыхания. Методы флотации Метод Фюллеборна. В стакане емкостью 200 мл размешива ют 8–10 г свежих фекалий с 20-кратным объемом насыщенного раствора натрия хлорида. После тщательного размешивания а б 1 2 3