Практикум по биофизике : в 2 ч. Ч.2
Покупка
Издательство:
Лаборатория знаний
Год издания: 2020
Кол-во страниц: 512
Дополнительно
Вид издания:
Учебное пособие
Уровень образования:
ВО - Магистратура
ISBN: 978-5-00101-775-2
Артикул: 688262.02.99
Практикум по биофизике содержит описания практических работ с применением ряда биофизических методов и служит дополнением к теоретическим материалам по курсу «Биофизика». Каждая практическая работа предваряется теоретическим введением и включает описание экспериментальной установки или используемой математической модели, а также порядок выполнения работы. В ходе выполнения работ студенты ознакомятся с устройством приборов, овладеют современными биофизическими методами и приобретут навыки применения этих методов в научных исследованиях.
Часть 2 практикума рассчитана на магистрантов, студентов биологических специальностей 5—6-го курсов вузов.
Тематика:
ББК:
УДК:
ОКСО:
- ВО - Бакалавриат
- 06.03.01: Биология
- 12.03.04: Биотехнические системы и технологии
- 19.03.01: Биотехнология
- ВО - Магистратура
- 06.04.01: Биология
- ВО - Специалитет
- 06.05.01: Биоинженерия и биоинформатика
- 30.05.02: Медицинская биофизика
- 31.05.01: Лечебное дело
- 31.05.02: Педиатрия
ГРНТИ:
Скопировать запись
Фрагмент текстового слоя документа размещен для индексирующих роботов
В ПРАКТИКУМ ПО БИОФИЗИКЕ в двух частях Часть 2 У Ч Е Б Н И К Д Л Я В Ы С Ш Е Й Ш К О Л Ы Под редакцией члена-корр. РАН А. Б. Рубина, проф. Г. В. Максимова и зав. лаб. С. М. Ременникова 2-е издание, электронное Рекомендовано к опубликованию решением Ученого и Учебно-методического советов биологического факультета Московского государственного университета имени М. В. Ломоносова Москва Лаборатория знаний 2020
УДК 373.167.1:57 ББК 28.57я73 П69 С е р и я о с н о в а н а в 2009 г. П69 Практикум по биофизике : в 2 ч. Ч. 2 / А. М. Абатурова [и др.] ; под ред. А. Б. Рубина, Г. В. Максимова, С. М. Ременникова. — 2-е изд., электрон. — М. : Лаборатория знаний, 2020. — 512 с. — (Учебник для высшей школы). — Систем. требования: Adobe Reader XI ; экран 10". — Загл. с титул. экрана. — Текст : электронный. ISBN 978-5-00101-775-2 (Ч. 2) ISBN 978-5-00101-773-8 Практикум по биофизике содержит описания практических работ с применением ряда биофизических методов и служит дополнением к теоретическим материалам по курсу «Биофизика». Каждая практическая работа предваряется теоретическим введением и включает описание экспериментальной установки или используемой математической модели, а также порядок выполнения работы. В ходе выполнения работ студенты ознакомятся с устройством приборов, овладеют современными биофизическими методами и приобретут навыки применения этих методов в научных исследованиях. Часть 2 практикума рассчитана на магистрантов, студентов биологических специальностей 5–6-го курсов вузов. УДК 373.167.1:57 ББК 28.57я73 В соответствии со ст. 1299 и 1301 ГК РФ при устранении ограничений, установленных техническими средствами защиты авторских прав, правообладатель вправе требовать от нарушителя возмещения убытков или выплаты компенсации ISBN 978-5-00101-775-2 (Ч. 2) ISBN 978-5-00101-773-8 c○ Лаборатория знаний, 2017 2
Введение Представленные в этом сборнике задачи входят в специальный практикум по биофизике кафедры биофизики биологического факультета МГУ имени М. В. Ломоносова. Подборка задач соответствует программе по биофизике для высшей школы и подкрепляет практически теоретический материал лекций. Каждая из задач представляет собой самостоятельное небольшое исследование, выполняемое студентами в течение 18 или 36 часов в зависимости от объема задачи. Как правило, задачи выполняются в группе из 2–3 человек под руководством одного преподавателя. По итогам проделанной работы оформляется письменный отчет, который должен включать следующие разделы. 1. Титульный лист с именами преподавателей и исполнителей. 2. Оглавление. 3. Краткое теоретическое введение, в котором приводится обоснование для применения к исследуемым объектам методов, используемых в задаче. 4. Цели и задачи исследования. 5. Методы исследования; приводятся основы используемых в задаче методов, а также особенности измерений применительно к используемым объектам. 6. Результаты проведенных экспериментов, корректно обработанные и представленные в удобной для восприятия форме. 7. Выводы. В этом разделе студенты самостоятельно интерпретируют полученные результаты. 8. Литература (список используемой литературы). Все страницы текста и таблицы должны быть пронумерованы. Объем отчета не должен превышать 10 страниц. Отчет о выполнении задачи выполняется в электронном виде на листах формата А4 (297 210 мм), а также распечатывается в одном экземпляре.
Введение Ряд задач можно объединять в самостоятельные циклы, позволяющие провести единое исследование от подготовки объекта до получения его характеристик и составления математической модели изучаемых процессов. Выполненные задачи и циклы могут служить основой курсовых и дипломных работ. Представленные задачи рекомендуются для выполнения студентами 5–6 курсов или студентами магистратуры.
Раздел 1 Теоретическая биофизика
В этом разделе представлены задачи, позволяющие построить математические модели процессов в фотосистеме II высших растений (ФС II), охватывающих временной диапазон реакций от пико- до миллисекунд, и модели каталитического цикла в ФС II; освоить метод анализа стационарных метаболических потоков, основанный на линейном программировании; ознакомиться и применить методы главных и независимых компонент (МГК и МНК) для анализа массива динамической визуальной информации, поступающей от современных методов конфокальной и многофотонной флуоресцентной микроскопии, функциональной магнито-резонансной томографии и др. Предлагается освоить метод многочастичной броуновской динамики на примере связывания белков электрон-транспортной цепи фотосинтеза; использовать методы молекулярного моделирования для изучения состояния бислойной липидной мембраны в присутствии катионов и для анализа параметров углеродных нанотрубок.
1. Математическое моделирование фотосинтетических процессов в фотосистеме II высших растений Н. Е. Беляева, Г. Ю. Ризниченко Аннотация Задача дает возможность обучиться основным принципам моделирования процессов переноса электрона и трансформации энергии в фотосинтетическом аппарате растений. На примере моделирования процессов в фотосистеме II (ФС II) рассматриваются различные способы построения модели — от упрощенных моделей до детального описания процессов переноса электрона в ФС II. Предусматривается построение модели миллисекундных процессов в ФС II (модель двухэлектронных ворот) и модели «быстрых» (пико- и микросекундных) процессов первичного разделения зарядов. Кроме того, предполагается построение детальной модели каталитического цикла ФС II. В рамках каждой из моделей предлагается произвести моделирование эффекта индукции флуоресценции хлорофилла при разных интенсивностях освещения объекта с интерпретацией полученных результатов. На основе сопоставления полученных результатов делают выводы о преимуществах и ограничениях каждого способа моделирования. При выполнении задачи используется предназначенный для по строения и исследования моделей сложных метаболических систем пакет программ DBSOLVE. Для выполнения задачи как отдельного исследования необходимо наличие трех компьютеров с достаточным вычислительным ресурсом. Исследование может проводиться как отдельная задача или в рамках цикла задач по освоению методов изучения фотосинтезирующих образцов. Цель работы Освоение методов кинетического моделирования метаболической системы в приложении к процессам ФС II и методик верификации моделей с использованием данных по индукции фотосинтеза.
1. Математическое моделирование фотосинтетических процессов Объекты исследования Структурные и функциональные схемы процессов тилакоидной мембраны, экспериментальные данные по световой индукции флуоресценции и формированию электрохимического потенциала мембраны. Методы Построение редуцированных и детальных моделей процессов ФС II, применение пакета DBSOLVE для верификации моделей и для фитирования расчетов детальной модели ФС II по комплексу индукционных данных. План работы 1. Систематизация литературных данных по описанию процессов переноса заряда в ФС II и индукции фотосинтеза. 2. Отладка редуцированных моделей ФС II. 3. Фитирование детальной модели ФС II по выходу флуоресценции, измеренному в определенных условиях эксперимента. 4. Анализ результатов идентификации параметров детальной модели ФС II и сравнение возможностей использованных моделей. Предполагаемые результаты и навыки 1. Освоение основных принципов моделирования процессов переноса электронов, протекающих в пределах фотосинтетических пигментбелковых комплексов (ПБК). Специфика моделирования таких процессов состоит в необходимости рассмотрения вероятностей нахождения ПБК в различных окислительно-восстановительных состояниях. 2. На примере построения упрощенных и детальных моделей фотосистемы II (ФС II) предполагается сделать выводы о преимуществах и ограничениях каждого способа моделирования. 3. Использование детальной модели каталитического цикла ФС II позволяет добиться хорошего соответствия модельных и экспериментальных результатов по регистрации кривых индукции флуорсеценции хлорофилла и интерпретировать отдельные кинетические компоненты кривых в терминах концентраций соответствующих окислительно-восстановительных состояний ФС II.
Теоретическое введение 9 4. Освоение фитирования многопараметрической модели к экспериментальным данным, определяя оптимальные диапазоны значений параметров модели. 5. Выполнение задачи формирует навыки применения имитационных моделей к количественному описанию экспериментов по изучению процессов фотосинтетической мембраны. Теоретическое введение Структура и функция фотосистемы II высших растений Организация ФС II Фотосистема II представляет собой пигмент-белковый комплекс с общей молекулярной массой более 400 кДа. Функциональный комплекс ФС II содержит 200–300 молекул хлорофилла, из которых примерно 30% составляет Chl b, а также различные каротиноиды и ксантофилы. В состав индивидуального комплекса ФС II [1, 2] (рис. 1.1) входят: единичный мультимерный содержащий Chl a сердцевидный комплекс (250 кДа), так называемый «core complex» ФС II; примерно 14 содержащих Chl a/b белков с молекулярной массой около 28 кДа, представляющих собой светособирающий комплекс (LHC). Число молекул хлорофилла на один мономер в 28 кДа около 14, NChl a /NChl b 1–2,5. Число компонентов LHC может варьировать в зависимости от условий роста растения. Возможно, что при упаковке в граны светособирающие комплексы и ПБК реакционных центров (РЦ) образуют единую динамическую белковую сеть, в которой не исключена одновременная ассоциация одного LHC с более чем одним РЦ. Для такой динамической системы невозможно точно определить размер и состав единичного комплекса ФС II. LHC II. Основная фракция светособирающей антенны LHC II (около 75%) представляет собой группу тесно связанных друг с другом белков с высоким содержанием Chl b. Эти комплексы, скорее всего, образуют тримеры или олигомеры. Хлорофиллы этих тримеров исключительно плотно упакованы — расстояния между отдельными молекулами пигментов составляют всего 9–14 Å. Расположение пигментов внутри одного мономера не похоже на регулярную решетку, как это предполагалось ранее. Девять пигментов каждого LHC-тримера расположены по внешнему
1. Математическое моделирование фотосинтетических процессов гидрофобному периметру. Такое расположение, по-видимому, облегчает быстрый транспорт экситонов к другим LHC или к РЦ. Основная функция LHC II — это — сбор энергии возбуждения при поглощении квантов света его пигментами и осуществление эффективного транспорта этой энергии к реакционным центрам При фосфорилировании часть LHC II может отделяться от ФС II, что приводит к перераспределению энергии возбуждения между ФС I и ФС II. Core complex ФС II. Это минимальная единица, способная окислять воду и восстанавливать пластохинон. Он состоит из четырех пигмент-содержащих полипептидов (D1, D2, CP43 и CP47) и нескольких не содержащих пигментов полипептидов, которые предположительно участвуют в стабилизации марганцевого комплекса. Димер D1/D2 реакционного центра (рис. 1.1) содержит специальную пару хлорофиллов P680, по меньшей мере еще два Chl a, два феофитина, один прочно связанный пластохинон QA и центр связывания пластохинона QB, а также редокс-активный тирозин TyrZ. Рис. 1.1. Структура пигмент-белкового комплекса ФС II