Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные, 2018, № 1

ISSN 2500-4379

Сельскохозяйственные животные

1

2018
ÐÎÑÑÈÉÑÊÈÉ
ÂÅÒÅÐÈÍÀÐÍÛÉ
ÆÓÐÍÀË

Актуальная тема: 
пестивирусы жвачных

Патологическая физиология

Из истории вакцин и вакцинации

Ихтиология

Прионные инфекции

Современные фармакои биопрепараты

Юбилеи

Ðîññèéñêèé 
Âåòåðèíàðíûé 
Æóðíàë
Russian Veterinary Journal
1/2018

Содержание/Contents

• РВЖ • № 1/2018 •
3

АКТУАЛЬНАЯ ТЕМА

Юров К.П. 

Филодинамика пестивирусов жвачных . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5

ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ

Патологическая физиология

Ю.Н. Бригадиров, Коцарев В.Н. 

Шапошников И.Т., Лобанов А.Э., Фалькова Ю.О.

Некоторые показатели имммуно-биохимического статуса свиноматок 

при воспалительных процессах в репродуктивных органах . . . . . . . . 9

СОВРЕМЕННЫЕ ФАРМАКО- И БИОПРЕПАРАТЫ

Санин А.В., Ожерелков С.В., Наровлянский А.Н., Пронин А.В., 

Деева А.В., Зубашев И.К., Кожевникова Т.Н., Изместьева А.В., 

Агафонова А.Д., Белоусова Р.В.

Антивирусная активность Гамапрена в отношении вируса диареи 

крупного рогатого скота в экспериментах in vitro . . . . . . . . . . . . . . . . . 12

Олейникова О.Я.

Применение лекарственных препаратов с кормом для контроля

респираторных инфекций у молодняка крупного рогатого скота 

в условиях промышленного животноводства . . . . . . . . . . . . . . . . . 17

ЛЕКЦИИ

Сидорчук А.А.

История создания вакцин и вакцинации. 

Часть I. Краткое введение в вакцинологиюe . . . . . . . . . . . . . . . . . . 19

Грищенко Л.И., Елеев Э.Л.

Герпесвирусные болезни рыб: распространение, 

течение, диагностика и профилактика . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 22

Макаров В.В.

Прионы и прионные болезни . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 29

ЮБИЛЕЙ

К 70-летию со дня рождения А.А. Сидорчука . . . . . . . . . . . . . . . . . . 35

VITAL TOPIC

Yurov K.P.

Phylodynamics of Pestiviruses of Ruminants . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5

ORIGINAL ARTICLES

Pathologic physiology

Brigadirov Y.N., Kotsarev V.N.,

Shaposhnikov I.T., Lobanov A.E., Falkova. Yu.O.

Some Indicators of Immuno-Biochemical Status of Sows in Case 

of Inflammatory Processes in Reproductive Organsх . . . . . . . . . . . . . . . . 9

MODERN PHARMACOLOGICAL DRUGS & BIOPREPARATIONS

Sanin A.V., Ozherelkov S.V., Narovljanskij A.N., Pronin A.V.,

Deeva A.V., Kozhevnikova T.N., Zubashev I.K., Agafonova A.D., 

Izmest'eva A.V., Belousova R.V. 

Antiviral Activity of Gamapren against the Bovine Diarrhea

Virus in the in vitro Experiments . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 12

Oleynikova O.Ya.

Use of Drugs in Feed to Control

Respiratory Infections in Young Cattle 

in Industrial Stockbreeding . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 17

LECTURES

Sidorchuk A.A.

History of Vaccines and Vaccination. 

Part I. Brief Introduction into Vaccinology . . . . . . . . . . . . . . . . . . 19

Grishenko L.I., Eleev E.L.

Herpesviral Fish Diseases: Distribution,

Flow, Diagnosis and Prevention . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 22

Makarov V.V.

Prion and Prion Diseases . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 29

ANNIVERSARY

Sidorchuk: 70-th Аnniversary . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 35

Воспроизведение материалов в любом виде, включая электронный, возможно только по письменному согласованию с издательством. Редакция не несет ответственности за содержание рекламных материалов.

Мнение редакции не всегда совпадает с мнением авторов статей 

Рукописи, принятые на рассмотрение, редакция не возвращает.

Согласно рекомендациям Роскомнадзора выпуск и распространение издания допускается без размещения знака информационной продукции.

Главный редактор

Василевич Ф.И., докт. вет. наук, Заслуженный работник высшей школы, академик РАН, проф. кафедры паразитологии и ветеринарносанитарной экспертизы, ректор ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина (Москва)

Выпускающий редактор

В.В. Ракитская (rakitskaya.vera@yandex.ru)

Редакционная коллегия

Акбаев Р.М., канд. вет. наук, доцент кафедры паразитологии и ветеринарно-санитарной экспертизы ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина
(Москва)

Балакирев Н.А., докт. с/х наук, академик РАН, проф. кафедры мелкого животноводства, рыбоводства и пчеловодства ФГБОУ ВО
МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина (Москва)

Буряков Н.П., докт. биол. наук, проф., Почетный работник АПК России, зав. кафедрой кормления и разведения животных ФГБОУ ВО
РГАУ — МСХА имени К.А. Тимирязева (Москва)

Верховский О.А., докт. биол. наук, проф., президент АНО «НИИ ДПБ» (Москва)

Власов Н.А., докт. биол. наук, проф. (Федеральная служба по ветеринарному и фитосанитарному надзору) (Москва)

Грищенко Л.И., докт. вет. наук, эксперт в области ихтиопатологии, проф. кафедры мелкого животноводства, пчеловодства и рыбоводства
ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина (Москва)

Данилевская Н.В., докт. биол. наук, проф. кафедры физиологии, фармакологии и токсикологии ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина
(Москва)

Дюльгер Г.П., докт. вет. наук, зав. кафедрой морфологии и ветеринарии факультета зоотехники и биологии ФГБОУ ВО РГАУ — МСХА
им. К.А. Тимирязева (Москва)

Зайцев С.Ю., докт. биол. наук, докт. хим. наук, проф., зав. кафедрой химии им. проф. С.И. Афонского, А.Г. Малахова ФГБОУ ВО МГАВМиБ —
МВА им. К.И. Скрябина (Москва)

Максимов В.И., докт. биол. наук, проф. кафедры физиологии, фармакологии и токсикологии ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина (Москва)

Пронин А.В., докт. биол. наук, проф. (Минздрав РФ) (Москва)

Пронин В.В., докт. биол. наук, проф., Почетный работник Высшего профессионального образования, зав. кафедрой морфологии, физиологии
и ветсанэкспертизы ФГБОУ ВО «Ивановская ГСХА им. ак. Д.К. Беляева», (Иваново), Центр доклинических исследований ФГБУ ВНИИЗЖ (Владимир)

Сансызбай А.Р., докт. вет. наук, проф., генеральный директор «НИИ проблем биологической безопасности» КН МОН (Республика Казахстан)

Санин А.В., докт. биол. наук, проф., руководитель лаборатории клеточного иммунитета НИИЭМ им. Н.Ф. Гамалеи (Москва)

Сидорчук А.А., докт. вет. наук, проф., зав. кафедрой эпизоотологии и организации ветеринарного дела ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА
им. К.И. Скрябина (Москва)

Сноз Г.В., докт. вет. наук, Заслуженный работник высшей школы Российской Федерации, проф. кафедры диагностики болезней и терапии
животных ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина (Москва)

Сотникова Л.Ф., докт. вет. наук, проф., эксперт в области офтальмологии, зав. кафедрой биологии и патологии мелких домашних,
лабораторных и экзотических животных ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина (Москва)

Федоров Ю.Н., докт. биол. наук, член-корреспондент РАН, Заслуженный деятель науки РФ, проф., эксперт в области иммунологии (Москва)

Юров К.П., докт. вет. наук, Заслуженный деятель науки РФ, проф., зав. лабораторией вирусологии ФГБНУ ВИЭВ им. Я.Р. Коваленко (Москва)

4
• РВЖ • № 1/2018 •

Научно-практический журнал 
Издается с марта 2005 г.

Издательство «Логос Пресс»
Директор М.В. Гейне 
Издатель ИП Солодилов Е.В.
Руководитель проекта И.М. Шугурова, к.б.н.
Руководитель отдела маркетинга Е.В. Лебедева
Менеджер по маркетингу М.А. Шугуров
Компьютерный дизайн Я.В. Быстрова

Адрес редакции: 127018, Москва, ул. 2-я Ямская, 2
E-mail: info@logospress.ru, http://logospress-vet.ru
Тел.: +7/495/689-85-16, +7/495/220-48-16

Свидетельство о регистрации СМИ:
ПИ № ФС77-67320 от 30 сентября 2016

Журнал выпускается при участии
Федеральной службы по ветеринарному и фитосанитарному надзору
(Россельхознадзор)
Департамента ветеринарии Министерства сельского хозяйства РФ

«РОССИЙСКИЙ ВЕТЕРИНАРНЫЙ ЖУРНАЛ»
цитируется в международной базе данных AGRIS ФАО ООН

Ключевые слова: КРС, пестивирус, вирусная диареяболезнь слизистых
Сокращения: ВД-БС — вирусная диарея-болезнь слизистых, ВВД — вирус вирусной диареи, ВКЧС — вирус классической чумы свиней, ВПБ — вирус пограничной болезни, КРС — крупный рогатый скот,
РН — реакция нейтрализации, ПБО — пограничная
болезнь овец, INSDC — International Nucleotide Sequence
Data Collaboration (Международная база данных нуклеотидных последовательностей)

Введение
Проблема пестивирусных инфекций жвачных впервые привлекла внимание в 1946 году в период эпизоотии диареи преимущественно у новорожденных
телят в США, штате Нью-Йорк. Заболевание характеризовалось профузной диареей, обезвоживанием организма, гипертермией, лейкопенией. Olafson и
Rickard (1947) установили вирусную природу заболевания и идентифицировали возбудителя — вирус
диареи КРС. В 1951 году Ramsey и Chivers в штате
Огайо зарегистрировали вспышку заболевания с симптомами, во многом схожими с вирусной диареей, которую диагностировали как болезнь слизистых. Заболеваемость достигала 80…100 %, с летальностью до
50 %. Изолированные вирусы оказались родственными в перекрестной РН. Оба заболевания объединили под общим названием «вирусная диарея — болезнь
слизистых».

Вирус ВД-БС 1-го и 2-го генотипа
В соответствии с современной классификацией, возбудитель относится к семейству флавивирусов (Flaviviridae), роду пестивирус (Pestivirus). ВД-БС широко распространена в во многих странах. ВВД 1-го
генотипа представлен 20 субтипами (1а…1t), ВВД 
2-го генотипа — тремя субтипами (2а…2с). ВВД передается контактным, аэрогенным, половым путем во
время случки или со спермой при искусственном осеменении, преодолевает плацентарный барьер. Через
плаценту вирус может проникать на разных стадиях

развития плода. Результатом фетальной инфекции
является резорбция эмбриона, аборты, рождение
мертвых или слабых и впоследствии отстающих в росте телят [3].
Резервуаром возбудителя часто служат персистентно инфицированные животные (телята), зараженные
внутриутробно, на фоне вирусиндуцированной иммунной недостаточности [11]. Вертикальный путь передачи вируса обуславливает опасность распространения
инфекции при экспорте племенных животных или с
генетическим материалом (спермой и ооцитами). Вертикальный путь передачи вируса отличает ВД-БС от
весьма схожего по клиническому проявлению и течению заболевания, известного как зимняя дизентерия
КРС — коронавирусная инфекция, возбудитель ко
Филодинамика пестивирусов жвачных

УДК 619: 616.98: 578.8

АКТУАЛЬНАЯ ТЕМА

• РВЖ • № 1/2018 •
5

К.П. Юров, доктор ветеринарных наук, профессор, заслуженный деятель науки РФ, заведующий лабораторией
вирусологии (konstyurov@yandex.ru).

Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии

имени Я.Р. Коваленко» (ВИЭВ) (109428, г. Москва, Рязанский проспект, д. 24, корп. 1).

Исследования выполняли по теме НИР: 0578-2014-0023. Работа финансировалась ФАНО РФ.

В статье представлен обзор современных данных, полученных специалистами многих стран, и результаты
собственных исследований, характеризующие эволюцию пестивирусов жвачных животных. Пестивирусы широко
распространены в популяциях домашних и диких животных, что связано с их способностью длительно
персистировать в организме, особенностью взаимодействия с иммунной системой животного-хозяина,
разнообразием путей передачи возбудителя, генетически обусловленной антигенной вариабельностью.
Распространению вирусов способствуют оживленные международные связи, экспорт (импорт) животных и
генетического материала (спермы, яйцеклеток), биопрепаратов. В Республике Таджикистан и РФ новые
пестивирусы — вирус ПБО и хобивирус, возбудители эмерджентных инфекций — впервые идентифицированы
в 2015–2017 гг.

Для цитирования: Юров, К.П. Филодинамика пестивирусов жвачных / К.П. Юров // Российский ветеринарный журнал. — 2018. —
№ 1. — С. 5-8.
For citation: Yurov K.P., Phylodynamics of Pestiviruses of Ruminants, Rossijskij veterinarnyj zhurnal (Russian veterinary journal), 2018,
No. 1, pp. 5-8.

Рис. Множественные кровоизлияния в слизистую рубца новорожденного
теленка (фото К.П. Юрова, 1962)
Fig. Multiple hemorrhages in the mucosa of a newborn calf rumen (Photo by
K.P. Yurov, 1962)

К.П. Юров

торой — коронавирус — передается исключительно
контактно и аэрогенно [5].
В начале 60-х годов в центральном регионе РФ на
фермах КРС регистрировалось массовое желудочнокишечное заболевание новорожденных телят, так называемая токсическая диспепсия телят. Телята заболевали в первые дни или часы жизни. Основные
симптомы — профузная диарея с выделением жидких
каловых масс часто с примесью крови, обезвоживание, потеря сосательного рефлекса. Заболеваемость
достигала 50…100 %. Вследствие сильной дегидратации телята быстро теряли массу, отказывались от
приема молозива. Летальный исход наступал в течение
1,0…1,5 недель их жизни.
На вскрытии находили катаральное воспаление слизистой оболочки желудочно-кишечного тракта, в кишечнике — молозиво с примесью крови. В 10…15 %
случаев находили множественные мелкие кровоизлияния в слизистой рубца (рис.). Доминировало мнение,
что основной причиной массовой патологии новорожденных телят является несбалансированное, неполноценное кормление коров-матерей. Профессор Московской ветеринарной академии Я.Р. Коляков ведущую роль отводил энтеропатогенным серотипам 
E. coli. Наши наблюдения тех лет (1961–1964) свидетельствовали в пользу инфекционной природы болезни. Так, в одних хозяйствах имело место массовое заболевание с симптомами «токсической диспепсии», а другие хозяйства, часто соседние, при абсолютно одинаковых условиях содержания животных
оставались благополучными. В 1967 году ряд авторов
(К.Н. Бучнев и В.Г. Макаревич с соавт.) опубликовали
сообщения о заболевании КРС с симптомами диареи и поражения слизистых оболочек в Казахстане,
вызванном вирусом ВД-БС. В 1970–1973 гг. в Тульской области Н.Н. Крюков с соавт. наблюдали вспышку острого, злокачественного заболевания молодняка в возрасте 2…8 месяцев. Болезнь характеризовалась гипертермией до 41,5…42,0 °С, отеком и гиперемией конъюнктивы и слизистой носа, сухим кашлем,
профузным поносом, часто с примесью крови. Большинство телят погибали на 2-е…3-и сутки после появления симптомов болезни. На вскрытии находили
катаральное воспаление слизистой преджелудков и
катарально-геморрагическое воспаление кишечника.
В ряде случаев толстый отдел кишечника был полностью заполнен свернувшейся кровью, слизистая
темно-красного цвета, легко сползающая при соскабливании. В патологическом материале идентифицировали вирус ВД-БС, идентичный референтному штамму «Орегон» [7]. Следует отметить, что в эти годы
в рамках программы интенсификации животноводства, улучшения генофонда дойного стада расширялась сеть станций искусственного осеменения. Для
комплектации племпредприятий закупали за рубежом племенных быков (черно-пестрой, джерсей, айширской пород и других) [6].
В настоящее время ВД-БС часто наблюдают в виде
массовых вспышек респираторного заболевания и патологии органов воспроизводства [3]. В период вспышек в разные годы идентифицированы цитопатогенные и нецитопатогенные штаммы ВВД-1 и ВВД-2 нескольких субтипов [1, 9, 8].

Хобивирус, вирус ВД-БС 3-го генотипа
В 2000–2004 гг. в нескольких европейских странах
идентифицирован новый пестивирус — HoBi-подобный (хобивирус, ложный пестивирус). Вирус был изолирован из фетальной сыворотки КРС, импортированной из Бразилии. Возбудитель был отнесен к пестивирусу КРС 3-го генотипа, в котором выделили два субтипа. Предполагается, что хобивирус имеет весьма
широкое распространение в мире. Имеются многочисленные сообщения о случаях естественной инфекции хоби-подобных пестивирусов, в большинстве случаев они связаны с респираторной патологией молодняка [13]. Нами хобивирус обнаружен в коммерческой
вирусвакцине против чумы мелких жвачных (первое
сообщение) [12]. Филогенетический анализ изолята показал его сходство со штаммами, зарегистрированными в базе данных INSDC. Гомология с наиболее сходным вирусом составила 96 % [12]. Несмотря на то, что
хобивирусы инфицируют животных многих видов, манифестная инфекция отмечается только у жвачных.
Аборты, респираторная патология при естественной
хобивирусной инфекции у КРС, в том числе буйволов,
описана в ряде стран Южной Америки, в Италии,
Таиланде, Бангладеше и других странах. В случае отсутствия надлежащего контроля при производстве биологических препаратов существует потенциальная угроза распространения хобивируса, равно как и вируса ВД-БС [14]. К тому же, последний обнаруживается в качестве контаминанта многих музейных культур
клеток [1]. Принимая во внимание опубликованные
данные о контаминации фетальной сыворотки хобивирусом, можно предполагать, что персистентная хобивирусная инфекция может представлять не меньшую проблему.

Вирус ПБО
Как свидетельствуют результаты молекулярно-генетических исследований, пестивирусы жвачных характеризуются значительной гетерогенностью. Род пестивирус включает вирус ПБО — репродуктивной болезни овец и коз, характеризующейся абортами, бесплодием, рождением нежизнеспособных и слабых
ягнят и козлят с тремором и повреждением шерстного покрова [2]. Впервые ПБО описана в 1959 году в Англии и Уэллсе. Основным источником возбудителя служат животные с персистентной формой инфекции.
ВПБ заражает животных других видов: КРС, оленей,
свиней, бизонов и серн как естественным, так и экспериментальным путем [16]. ВПБ представлен 7 генотипами ВПБ-1….ВПБ-7. Генотип ВПБ-1 (с субтипами
ПБ-1а и ПБ-1b) включает в себя изоляты из Англии,
США, Австралии и Новой Зеландии; ВПБ-2 — вирусы, выявленные в Германии; ВПБ-3 представлен изолятами из Германии и Швейцарии. ВПБ-4 изолирован
от пиренейской серны. ВПБ-5 и ВПБ-6 зарегистрированы во Франции. Изолят вируса генотипа 7 был обнаружен у козленка в северно-западной части Италии. Известны несколько нетипированных изолятов. Различают два биотипа ВПБ: цитопатогенный и нецитопатогенный. Большинство полевых изолятов пестивирусов
считаются нецитопатогенными, в то время как некоторые могут включать оба биотипа. Штамм «Coos Bay 5»
включал нецитопатогенный вариант (CB5nc) и цитопа
6
• РВЖ • № 1/2018 •

Филодинамика пестивирусов жвачных

тогенный (CB5c). Оба варианта впервые были изолированы в 1980 году от овец со свойственными для болезни слизистых поражениями [15].
Нашими исследованиями ВПБ впервые обнаружен
в 2016 году в материале от больных овец в Центрально-Азиатском регионе — Республике Таджикистан [2].
После идентификации изолята последовательность оснований нуклеотидов вируса была зарегистрирована
в INSDC (GenBank). Сравнительный анализ с помощью
компьютерной программы «BLAST» показал, что вирус ПБО, идентифицированный у овец в Таджикистане, сходен со штаммом ПБ 297 из Словакии ПБ-3 генотипа, выделенным в 2013 году, и со штаммом AH1202 5' UTR вируса ПБ, выделенным от коз в 2012 году
в Китае. Гомология составляла 91 %.

Вирулентность для различных видов животных
и антигенные характеристики вирусов
Все пестивирусные инфекции являются экономически опасными вследствие значительных потерь от постнатальной и пренатальной патологии [4]. Пестивирусы
инфицируют широкий круг домашних и диких животных, вызывая заболевания с симптомами поражения
респираторного, репродуктивного, пищеварительного
тракта, иммунодефицита. До сего времени пестивирусы классифицировали по видам хозяев, у которых они
были обнаружены. Известно, что возбудитель ВД-БС
вызывает заболевание не только КРС, но также овец,
свиней, коз, оленей, жирафов. Антитела к вирусу ВДБС обнаруживают более чем у 40 видов диких отловленных и домашних млекопитающих [4]. Вертикальная передача вируса может обусловить персистентную
инфекцию у иммунотолерантных животных, которые
при отсутствии видимых признаков заболевания будут
выделять вирус в течение жизни. Различие пестивирусов не только по признаку вирулентности, но и антигенной структуре установлено рядом авторов [8]. Так,
Becher P. et al. 2003, исследовали 10 штаммов пестивирусов, включая ВВД-1, ВВД-2, ВПБ, ВКЧС, H138
(Giraffe1) и V60 (Reindeer-1) в перекрестной РН. Полученные результаты характеризуют шесть основных
антигенных групп пестивирусов, отражающих их генетически детерминированное антигенное родство.
В опыте перекрестной РН использовали антисыворотки, полученные на овцах к штаммам V2536 ВПБ-1,
17385 ВПБ-2, и Gifhorn ВПБ-3. Нейтрализующую активность каждой из 13 антисывороток определяли по
отношению к каждому изолированному пестивирусу. Титры нейтрализующих антител против членов гетерологичных групп пестивируса были значительно
ниже, чем против членов гомологичной группы. ВВД-1
и ВВД-2 не нейтрализовались или плохо нейтрализовались антисыворотками к ВКЧС, ВПБ-1, ВПБ-2, ВПБ-3 и
штамму H138. Интересно, что антисыворотка к штаммам X818, L83-84 и V2536 ВПБ-1; штаммам 17385 и V60
BПБ-2 и штамму Gifhorn ВПБ-3 содержали антитела
к гетерологичным штаммам ВПБ и ВКЧС в равном титре. Пестивирус, выделенный от жирафа, по-разному
нейтрализовался отдельными гетерологичными антисыворотками. За исключением пестивирусного штамма PG-2, все остальные пестивирусы, включенные в это
исследование, не были нейтрализованы антисывороткой против H138 [17].

Современная классификация
На основании результатов молекулярно-генетических
и иммунологических исследований предложено изменить таксономию известных пестивирусов и обозначать их как пестивирусы A, B, C и т. д. [17]:

•
вирус ВД-БС 1-го генотипа — Пестивирус А,

•
вирус ВД-БС 2-го генотипа — Пестивирус В,

•
вирус КЧС — Пестивирус G,

•
вирус ПБО — Пестивирус D, 

•
пестивирус вилорогих — Пестивирус E, 

•
пестивирус свиней Бунгаванна — Пестивирус F,

•
пестивирус жирафов — Пестивирус G,

•
хоби-подобный пестивирус — Пестивирус H,

•
айдин-подобный пестивирус — Пестивирус I,

•
пестивирус крыс — Пестивирус J,

•
атипичный пестивирус свиней — Пестивирус К
Два тунисских изолята пестивирусов овец до сих пор
не классифицированы и могут представлять два дополнительных вида.

Заключение
Таким образом, сумма полученных разными исследователями данных, характеризующих эволюцию пестивирусов, свидетельствует о их широком распространении в популяциях домашних и диких животных, что
объясняется возможностью длительной персистенции
в организме, особенностью взаимодействия с иммунной системой животного-хозяина, генетически обусловленной антигенной вариабельностью. Все это определяет эмерджентный характер пестивирусных инфекций. Распространению новых пестивирусов способствуют оживленные международные связи, селекционная
работа и связанный с этим экспорт (импорт) быков и
генетического материала (спермы, яйцеклеток). В эпизоотический процесс в ряде случаев вовлекаются экзотические виды животных, например, жирафы, или
лесные бизоны, завезенные из Канады в Восточную Сибирь с целью сохранения вида по программе восстановления плейстоценовой мегафауны Северной Америки.
Нашими исследованиями в 2016–2017 гг. впервые обнаружены на территории некоторых стран СНГ и РФ
пестивирусы — возбудители эмерджентных болезней:
ПБО и хобивирусной инфекции. При этом учитывая
оживленные экономические связи стран Центральной
Азии и России, можно прогнозировать распространение заболеваний в ранее благополучные регионы. Определенные различия антигенных свойств и гетерогенность генетических маркеров новых пестивирусов вызывают существенные затруднения при рутинной лабораторной диагностике ПБО и хобивирусной
инфекции, а также контроле коммерческих биопрепаратов (вакцин, сывороток), что представляется большой угрозой современному животноводству.

Б и б л и о г р а ф и я
1. Алексеенкова, С.В. Проверка клеточных культур на контаминацию вирусом диареи крупного рогатого скота — необходимое условие производства
биологических препаратов / С.В. Алексеенкова, Г.К. Юров, Т.В. Гальнбек,
И.А. Калита, К.П. Юров // Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные. — 2013. — № 1. — С. 15–18.
2. Аноятбекова, А.М. Молекулярно-эволюционный генетический анализ вируса пограничной болезни, выявленного у овец в Таджикистане / А.М. Аноятбекова, С.В. Алексеенкова, К.П. Юров // Ветеринария. — 2017. — №1. — 
С. 23–26.

• РВЖ • № 1/2018 •
7

К.П. Юров

3. Глотов, А.Г. Вирусная диарея: значение в патологии воспроизводства крупного рогатого скота / А.Г. Глотов, Т.И. Глотова // Ветеринария. — 2015. —
№4. — С. 3–8.
4. Гулюкин, М.И. Стратегия борьбы с болезнью слизистых крупного рогатого скота в животноводческих хозяйствах Российской Федерации / М.И.
Гулюкин, К.П. Юров, А.Г. Глотов, Н.А. Донченко // Вопросы вирусологии. — 2013. — Т. 58. — №6. — С. 13–18.
5. Думова, В.В. Особенности зимней дизентерии крупного рогатого скота
/ В.В. Думова, А.В. Кононов, С.В. Левченко, А.В. Мищенко, В.А. Мищенко, А.П. Пономарев, Т.Б. Никешина, О.В. Кухаркина, В.А. Кудрявцев //
Ветеринарная патология. — 2006. — №4. — С. 84–88.
6. Жидков, С.А. Роль вирусной диареи в этиологии респираторных и желудочно-кишечных болезней телят / С.А. Жидков, А.И. Лебедев, М.М.
Гоголев, Г.Ф. Коромыслов // Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук. — 1995. — №3. — С. 50–53.
7. Крюков, Н.Н. О неспецифической профилактике вирусной диареи крупного рогатого скота / Н.Н. Крюков, З.Ф. Зудилина, К.П. Юров, С.А. Жидков // Ветеринария. — 1978. — №1. — С. 37–39.
8. Кунгурцева, О.В. Влияние антигенной вариабельности вируса вирусной
диареи-болезни слизистых оболочек крупного рогатого скота на результаты серологической диагностики / О.В. Кунгурцева, Т.И. Глотова, А.Г.
Глотов // Ветеринарная патология. — 2010. — №1. — С. 20–24.
9. Мищенко, В.А. Структура заболеваний пищеварительной системы новорожденных телят / В.А. Мищенко, Д.К. Павлов, В.В. Думова, Т.Б. Никешина, А.П. Пономарев, А.В. Кононов, С.В. Левченко // Ветеринария
Кубани. — 2008. — №5. — С. 22–23.
10. Осмаев, И.А. Иммуномодулирующие свойства эндогенного интерферона у телят / И.А. Осмаев, К.П. Юров, М.П. Неустроев // Ветеринария. —
2007. — №1. — С. 11–12.
11. Юров, К.П. Диагностика и контроль вирусных респираторных болезней крупного рогатого скота в условиях современного животноводства /
К.П. Юров, С.В. Алексеенкова, А.В. Пчельников, Г.К. Юров // Материалы
II Международной научно-практической конференции «Тенденции и инновации современной науки». — Краснодар, 24 сентября. — 2012. — С. 6.
12. Юров, К.П. Новый пестивирус — хоби вирус — контаминант вакцины
против чумы мелких жвачных животных / К.П. Юров, А.М. Аноятбекова,
С.В. Алексеенкова // Ветеринария. — 2016. — №10. — С. 8–10.
13. Bauermann, F.V. Generation of Calves Persistently Infected with HoBi-Like
Pestivirus and Comparison of Methods for Detection of These Persistent Infections / F.V. Bauermann, S.M. Falkenberg, B. Vander Ley, N. Decaro, B.W. Brodersen, A. Harmon, B. Hessman, E.F. Flores, J.F. Ridpath // Journal of Clinical
Microbiology. — 2014. — No. 11. — pp. 3845–3852.
14. Bauermann, F.V. HoBi-like viruses: an emerging group of pestiviruses /
F.V. Bauermann, J.F. Ridpath, R. Weiblen, E.F. Flores // Journal of Veterinary Diagnostic Investigation. — 2013. — Vol. 25. — No. 1. — pp. 6–15.
15. Neill, J.D. Complete Genome Sequences of a Cytopathic/Noncytopathic Pair
of Border Disease Viruses / J.D. Neill, J.F. Ridpath // Genome Announcements. —
2014. — Vol. 2. — No. 2. — pp. e00260-14.
16. Nettleton, P.F. Border disease of sheep and goats / P.F. Nettleton, J.A. Gilray,
P. Russo, E. Dlissi // Veterinary Research. — 1998. — Vol. 29. — No. 3-4. — pp.
327–340.
17. Smith, D.B. Proposed revision to the taxonomy of the genus Pestivirus, family Flaviviridae / D.B. Smith, G. Meyers, J. Bukh, E.A. Gould, T. Monath, A. Scott
Muerhoff, A. Pletnev, R. Rico-Hesse, J.T. Stapleton, P. Simmonds, P. Becher // Journal of General Virology. — 2017. — Vol. 98. — No. 8 — pp.
2106–2112.
18. Vilcek, S. Pestiviruses isolated from pigs, cattle and sheep can be allocated into at least three genogroups using polymerase chain reaction and
restriction endonuclease analysis / S. Vilcek, A.J. Herring, P.F. Nettleton,
J.P. Lowings, D.J. Paton // Archives of Virology. — 1994. — Vol. 136 —
pp. 309–323.

R e f e r e n c e s
1. Alekseenkova S.V., Yurov G.K., Gal'nbek T.V., Kalita I.A., Yurov K.P., Proverka kletochnyh kul'tur na kontaminaciyu virusom diarei krupnogo rogatogo skota – neobhodimoe uslovie proizvodstva biologicheskih preparatov, Rossijskij veterinarnyj zhurnal. Sel'skohozyajstvennye zhivotnye, 2013, No. 1, pp.
15–18.
2. Anoyatbekova A.M, Alekseyenkova S.V., Yurov K.P., Molekulyarno-ehvolyucionnyj geneticheskij analiz virusa pogranichnoj bolezni, vyyavlennogo u ovec
v Tadzhikistane, Veterinariya, 2017, No. 1, pp. 23–26.
3. Glotov A.G., Glotova T.I., Virusnaya diareya: znachenie v patologii vosproizvodstva krupnogo rogatogo skota, Veterinariya, 2015, No. 4, pp. 3–8.
4. Gulyukin M.I., Yurov K.P., Glotov A.G., Donchenko N.A., Strategiya bor'by s
bolezn'yu slizistyh krupnogo rogatogo skota v zhivotnovodcheskih hozyajstvah Rossijskoj Federacii, Voprosy virusologii, 2013, Vol. 58, No. 6, pp. 13–18.
5. Dumova V.V., Kononov A.V., Levchenko S.V., Mishchenko A.V., Mishchenko
V.A., Ponomarev A.P., Nikeshina T.B., Kuharkina O.V., Kudryavcev V.A., Osoben
nosti zimnej dizenterii krupnogo rogatogo skota, Veterinarnaya patologiya,
2006, No. 4, pp. 84–88.
6. Zhidkov S.A., Lebedev A.I., Gogolev M.M., Koromyslov G.F., Rol' virusnoj
diarei v ehtiologii respiratornyh i zheludochno-kishechnyh boleznej telyat,
Vestnik Rossijskoj akademii sel'skohozyajstvennyh nauk, 1995, No. 3, pp.
50–53.
7. Kryukov N.N., Zudilina Z.F., Yurov K.P., Zhidkov S.A., O nespecificheskoj
profilaktike virusnoj diarei krupnogo rogatogo skota, Veterinariya, 1978,
No. 1, pp. 37–39.
8. Kungurceva O.V., Glotova T.I., Glotov A.G., Vliyanie antigennoj variabel'nosti
virusa virusnoj diarei-bolezni slizistyh obolochek krupnogo rogatogo skota
na rezul'taty serologicheskoj diagnostiki, Veterinarnaya patologiya, 2010, No.
1, pp. 20–24.
9. Mishchenko V.A., Pavlov D.K., Dumova V.V., Nikeshina T.B., Ponomarev A.P.,
Kononov A.V., Levchenko S.V., Struktura zabolevanij pishchevaritel'noj sistemy novorozhdennyh telyat, Veterinariya Kubani, 2008, No. 5, pp. 22–23.
10. Osmaev I.A., Yurov K.P., Neustroev M.P., Immunomoduliruyushchie svojstva ehndogennogo interferona u telyat, Veterinariya, 2007, No. 1, pp. 11–12.
11. Yurov K.P., Alekseenkova S.V., Pchel'nikov A.V., Yurov G.K., Diagnostika
i kontrol' virusnyh respiratornyh boleznej krupnogo rogatogo skota v usloviyah
sovremennogo zhivotnovodstva, Materialy II Mezhdunarodnoj nauchno-prakticheskoj konferencii «Tendencii i innovacii sovremennoj nauki» (Proceedings of the II international scientific and practical conference «Trends and
innovations in modern science», Krasnodar, 24th September, 2012, p. 6.
12. Yurov K.P., Anoyatbekova A.M., Alekseenkova S.V., Novyj pestivirus — hobi
virus ? kontaminant vakciny protiv chumy melkih zhvachnyh zhivotnyh,
Veterinariya, 2016, No. 10, pp. 8–10.
13. Bauermann F.V., Falkenberg S.M., Vander Ley B., Decaro N., Brodersen
B.W., Harmon A., Hessman B., Flores E.F., Ridpath J.F., Generation of Calves
Persistently Infected with HoBi-Like Pestivirus and Comparison of Methods for Detection of These Persistent Infections, Journal of Clinical Microbiology, 2014, No. 11, pp. 3845–3852.
14. Bauermann F.V., Ridpath J.F., Weiblen R., Flores E.F., HoBi-like viruses: an
emerging group of pestiviruses, Journal of Veterinary Diagnostic Investigation, 2013, Vol. 25, No. 1, pp. 6–15.
15. Neill J.D., Ridpath J.F., Complete Genome Sequences of a Cytopathic/Noncytopathic Pair of Border Disease Viruses, Genome Announcements, 2014,
Vol. 2, No. 2, pp. e00260?14.
16. Nettleton P.F., Gilray J.A., Russo P., Dlissi E., Border disease of sheep
and goats, Veterinary Research, 1998, Vol. 29, No. 3-4, pp. 327–340.
17. Smith D.B., Meyers G., Bukh J., Gould E.A., Monath T., Scott Muerhoff
A., Pletnev A., Rico-Hesse R., Stapleton J.T., Simmonds P., Becher P., Proposed revision to the taxonomy of the genus Pestivirus, family Flaviviridae,
Journal of General Virology, 2017, Vol. 98, No. 8, pp. 2106–2112.
18. Vilcek S., Herring A.J., Nettleton P.F., Lowings J.P., Paton D.J., Pestiviruses
isolated from pigs, cattle and sheep can be allocated into at least three
genogroups using polymerase chain reaction and restriction endonuclease
analysis, Archives of Virology, 1994, Vol. 136, pp. 309–323.

8
• РВЖ • № 1/2018 •

ABSTRACT
K.P. Yurov.

All Russian Research Institute of Experimental Veterinary Medicine named

after Ya. R. Kovalenko (VIEV) (24/1, Ryazanskyi prospect, Moscow, 109428).

Phylodynamics of Pestiviruses of Ruminants. The
article presents an overview of the current data obtained
by specialists from many countries and the results of
their own research that characterize the evolution of pestiviruses of ruminant animals. Pestiviruses are widespread in populations of domestic and wild animals, which
are associated with their ability to persist for a long time
in the hosts, a feature of interaction with the host's
immune system, a variety of pathways of the pathogen,
genetically determined by antigenic variability. The spread
of viruses is promoted by intensive international connections, the export (import) of animals and genetic
material (sperm, ova), biological products. In the Republic of Tajikistan and the Russian Federation, new pestiviruses — border disease virus and HoBilike viruse,
causative agents of emergent infections, were first identified in 2015–2017.

Ключевые слова: свиноматки, беременность, лактация, репродуктивные органы, воспалительные процессы, показатели крови
Сокращения: БАСК — бактерицидная активность
сыворотки крови, ЛАСК — лизоцимная активность сыворотки крови, СРБ — С-реактивный белок,
ЦИК — циклирующие иммунные комплексы

Введение
Перевод животноводства на промышленную технологию,
особенностью которой являются новые методы содержания, кормления и эксплуатации, и связанное с этим увеличение как концентрации поголовья на ограниченных
площадях, так и потенциально патогенных микроорганизмов в помещениях, сопровождающееся изменением
их первоначальных свойств, влияние на организм животных технологических стресс-факторов, экологическое
неблагополучие внешней среды, усугубляющееся практически повсеместным дефицитом в кормах микроэлементов, ставит перед ветеринарными специалистами новые сложные задачи по охране здоровья животных [7].

Неблагоприятные факторы внешней среды негативно влияют на адаптационные механизмы у животных,
изменяя их, что приводит к снижению неспецифической резистентности и иммунитета или повышению реактивности. Нарушение функции иммунной системы
представляет собой один из патогенетических механизмов любого патологического процесса [5]. В связи с этим
среди животных крупных свиноводческих предприятий
широкое распространение приобрели так называемые
факторные инфекции, проявляющиеся у маточного поголовья нарушениями воспроизводительной функции [2,
7]. Возникновение этих болезней обусловлено, как правило, ассоциациями микроорганизмов. Вирусы вызывают в организме животных альтерацию и иммуносупрессию, что служит пусковым механизмом для развития вторичной бактериальной инфекции наряду с теми,
что вызываются грибами и простейшими [1, 4, 8].

Цель исследования
Определить иммуно-биохимические показатели крови
свиноматок с воспалительными процессами в репро
Некоторые показатели 
иммуно-биохимического статуса
свиноматок при воспалительных
процессах в репродуктивных органах

УДК 619: [612.015:612.12]: 636.4

ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ Патологическая физиология • РВЖ • № 1/2018 •
9

Ю.Н. Бригадиров, доктор ветеринарных наук, главный научный сотрудник лаборатории болезней органов
воспроизводства и молочной железы (ldmvdc@mail.ru), В.Н. Коцарев, доктор ветеринарных наук, ведущий научный
сотрудник лаборатории болезней органов воспроизводства и молочной железы, И.Т. Шапошников, доктор
биологических наук, зав. лабораторией лаборатории болезней органов воспроизводства и молочной железы, 
А.Э. Лобанов, младший научный сотрудник лаборатории болезней органов воспроизводства и молочной железы,
Ю.О. Фалькова, аспирант лаборатории болезней органов воспроизводства и молочной железы
Государственное научное учреждение «Всероссийский научно-исследовательский ветеринарный институт патологии,
фармакологии и терапии» Россельхозакадемии (394087, г. Воронеж, ул. Ломоносова, 114 б).

Целью исследования явилось определение иммуно-биохимических показателей крови свиноматок с воспалительными
процессами в репродуктивных органах и риском их развития на различных стадиях репродуктивного цикла. Опыты
проведены в условиях свиноводческого предприятия на 20 свиноматках, которые были разделены на две группы.
В первую группу (n=10) вошли свиноматки, оставшиеся после опороса клинически здоровыми. Вторую группу (n=10)
составили свиноматки, у которых после родов регистрировали острый послеродовой гнойно-катаральный эндометрит
и метрит-мастит-агалактию, а во время «течки» — скрытый эндометрит. В период опыта: на 23…25-й, 72…74-й,
110…112-й день супоросности, на 3…4-й день лактации и перед отъемом поросят от 5 свиноматок из каждой группы
были взяты пробы крови для иммуно-биохимических исследований. Установлено, что у свиноматок первой группы по
отношению ко второй были выше показатели лейкоцитов — на 4,2…12,1 %, лимфоцитов — на 6,1…39,8 %, циркулирующих
иммунных комплексов (ЦИК) — на 10,3…13,9 %, положительных значений С-реактивного белка (СБР) — у 40…80 %
свиноматок и меньшего количества Т-лимфоцитов — на 2,35…6,9 %, общих иммуноглобулинов — на 5,6…6,6 %, меньшей
лизоцимной активности сыворотки крови (ЛАСК) — на 2,1…10,6 %, бактерицидной активности сыворотки крови
(БАСК) — на 23,3…20,7 %. Во время лактации у них были выше показатели Т-лимфоцитов — на 8,1 %, В-лимфоцитов —
в 1,17 раза, ЛАСК — в 1,4 раза, при меньшем количестве лейкоцитов — на 14,9 %, общих иммуноглобулинов — на 5,6 %,
меньшей БАСК — на 7,0 %. К отъему поросят стало меньше В-лимфоцитов — на 17,8 % при более высоких показателях
Т-лимфоцитов — на 15,9 %, ЛАСК — на 4,9 %, ЦИК — на 47,6 % и положительных значений (40 %) СРБ. Выявленные
значения показателей иммуно-биохимического статуса у свиноматок с воспалительными процессами в репродуктивных
органах и риском их развития можно использовать в качестве прогностических и диагностических тестов.

Для цитирования: Бригадиров, Ю.Н. Некоторые показатели имммуно-биохимического статуса свиноматок при воспалительных
процессах в репродуктивных органах / Ю.Н. Бригадиров, Коцарев В.Н. Шапошников И.Т., Лобанов А.Э., Фалькова Ю.О. //
Российский ветеринарный журнал. — 2018. — № 1. — С. 9-11.
For citation: Brigadirov Y.N., Kotsarev V.N., Shaposhnikov I.T., Lobanov A.E., Falkova. Yu.O., Some Indicators of Immuno-Biochemical
Status of Sows in Case of Inflammatory Processes in Reproductive Organs, Rossijskij veterinarnyj zhurnal (Russian veterinary journal),
2018, No. 1, pp. 9-11.

Ю.Н. Бригадиров, В.Н. Коцарев, И.Т. Шапошников, А.Э. Лобанов, Ю.О. Фалькова

дуктивных органах и предрасположенных к таковым
на различных стадиях репродуктивного цикла.

Материалы и методы
Опыты проведены в условиях свиноводческого предприятия с промышленной технологией ведения производства на
20 свиноматках помеси пород крупной белой и ландрас, взятых в опыт на 20…25-й день беременности. Животные
ретроспективно, в зависимости от характера течения послеродового периода и результатов анализа цервикально-маточной слизи, полученной в стадию возбуждения полового
цикла, были разделены на две группы. В первую группу (n=10)
вошли свиноматки, оставшиеся после опороса клинически
здоровыми. Кроме того, у них в стадию возбуждения полового цикла отсутствовал скрытый эндометрит. Вторую
группу (n=10) составили свиноматки, у которых после родов регистрировали острый послеродовой гнойно-катаральный эндометрит и метрит-мастит-агалактию, а во время
«течки» — скрытый эндометрит. В период опыта: на 23…25-й,
72…74-й, 110…112-й день супоросности, на 3…4-й день лактации и перед отъемом поросят от 5 свиноматок из каждой
группы были взяты пробы крови для иммуно-биохимических исследований с использованием соответствующих
методик [3, 6]. При возобновлении половой цикличности
у свиноматок получали цервикально-маточную слизь для
цитологических исследований на скрытый эндометрит.

Результаты и обсуждение
Установлено следующее: иммунный статус свиноматок с
риском развития воспалительного процесса в репродуктивных органах (табл. 1) по сравнению со статусом свиноматок без отклонения от нормы в клиническом состоянии на 23…25-й день после осеменения характеризовался отсутствием разницы в содержании лейкоцитов, незначительным уменьшением количества Т-лимфоцитов
(на 2,35 %), общих иммуноглобулинов (на 5,6 %), снижением ЛАСК (на 2,1 %) и БАСК (на 23,3 %, р<0,01) при
повышении абсолютного количества лимфоцитов (на
6,1 %), В-лимфоцитов (на 3,4 %) и ЦИК (на 10,3 %). Положительная реакция на СРБ выявлена у 40 % свиноматок, в то время как в группе клинически здоровых животных у 80 % реакция на СРБ была отрицательной.
К 72…74-у дню супоросности иммунно-биохимический
статус животных претерпевал изменения: у свиноматок с
риском развития патологии воспалительного характера в
репродуктивных органах в сравнении с клинически здоро
выми животными содержалось больше лейкоцитов на 
4,2 %, общего количества лимфоцитов — на 12,8 %, В-лимфоцитов — на 19,8 %, ЦИК — на 13,9 % при меньших показателях Т-лимфоцитов — на 6,9 %, соотношения Т- и
В-лимфоцитов — на 20,0 %, общих иммуноглобулинов — на
6,6 %, ЛАСК — на 10,6 % (р<0,01), БАСК — на 20,7 % (р<0,01).
При этом, положительная реакция на СРБ выявлялась у
60 % свиноматок, в то время как у животных группы сравнения в 100 % случаев она была отрицательной.
К 110…112-у дню супоросности разница по отдельным
иммуно-биохимическим показателям крови между подопытными свиноматками была более выраженной. При
возрастании содержания лейкоцитов в крови животных обеих групп у свиноматок, предрасположенных к
воспалительным процессам в половой системе, общее количество лейкоцитов было выше на 12,1 %, концентрация лимфоцитов — на 39,8 % (р<0,05). Количество Т-лимфоцитов превышало на 40,4 % (р<0,01), что существенно отразилось на соотношении Т- и В-лимфоцитов (значение показателя меньше в 2,2 раза). Наряду с
пониженной активностью Т-клеточного звена иммунной
системы у свиноматок были меньше значения показателей естественной резистентности. Концентрация иммуноглобулинов была ниже на 7,1 %, значения ЛАСК —
на 18,5 % (р<0,01), БАСК — на 12,3 %, а содержание ЦИК
оставалось на более высоком уровне. Положительная реакция на СРБ выявлена в 80 % случаев; в группе сравнения получен 100%-й отрицательный результат на СРБ.
На 3…4-й день лактации иммунный статус свиноматок с патологией репродуктивных органов характеризовался значительным снижением содержания в крови
лейкоцитов (на 14,9 %), что обусловлено их миграцией
в молочную железу, вызванного ее воспалением (табл. 2).
Концентрация лимфоцитов оставалась на более высоком
уровне, чем у клинически здоровых после опороса свиноматок. У них в значительной степени активизировалось Т-клеточное звено иммунной защиты. Так, содержание Т-лимфоцитов превышало уровень таковых у свиноматок с нормальным течением послеродового периода на 8,1 %, В-лимфоцитов — в 1,7 раза (р<0,001). При
меньшем на 5,6 % содержании общих иммуноглобулинов и показателе БАСК (на 7,0 %) были выше значения ЛАСК — в 1,4 раза (р<0,05), а также содержание ЦИК,
характеризующих степень антигенной нагрузки на организм животных, — на 27,1 %. Положительные реакции на СРБ составили 100 % при таком же показателе

10
• РВЖ • № 1/2018 •

1. Показатели иммунобиохимического статуса супоросных свиноматок
1. Indicators of immunobiochemical status of pregnant sows

Показатели

Сроки исследований во время супоросности, день

23…25й
72…74й
110…112й

норма
риск патологии
норма
риск патологии
норма
риск патологии

Лейкоциты, 109/л
12,4±0,45
12,3 ±0,29
12,0±0,39
12,5±0,30
13,2±1,21
14,8±0,66

Лимфоциты, 109/л
6,61±0,17
7,01±0,21
6,48±0,11
7,31±0,52
5,08±0,36
7,10*±0,50

Тлимфоциты, %
51,0±4,48
49,8±1,45
33,3±1,13
31,0±1,86
40,6±4,98
24,2**±2,26

Влимфоциты, %
17,7±1,48
18,3±0,62
16,7±1,32
20,0±1,83
20,3±2,65
26,8*±2,37

Соотношение Ти Влимфоцитов, у.е.
2,9:1
2,7:1
2,0:1
1,6:1
2,0:1
0,9:1

Общ. иммуногл, г/л
26,8±0,68
25,3±0,31
25,6±0,64
23,9±0,49
23,8±0,086
22,1±1,54

ЛАСК, мкг/мл
1,032±0,044
1,010±0,032
0,85±0,012
0,76**±0,029
1,89±0,064
1,54**±0,10

БАСК, %
65,1±3,18
49,9**±3,73
67,7±2,54
53,7 **±3,22
55,5±3,17
48,72,32

ЦИК, г/л
0,29±0,013
0,32±0,016
0,36±0,028
0,41±0,023
0,38±0,025
0,45±0,053

СРБ, %
80 отриц.
40 полож.
100 отриц.
60 полож.
100 отриц
80 полож.

Примечание: *p<0,050,02, ** p<0,01

Некоторые показатели имммуно-биохимического статуса свиноматок 
при воспалительных процессах в репродуктивных органах

отрицательных реакций у животных с нормальным течением послеродового периода. 
Перед отъемом поросят у свиноматок с проявившимися воспалительными процессами в репродуктивных органах по отношению к клинически здоровым животным при
меньшем  содержании  лейкоцитов на 3,3 % концентрация
лимфоцитов была выше на 11,4 %. Увеличилась активность
Т-клеточного звена иммунной системы, о чем свидетельствует повышенное на 15,9 % количество Т-лимфоцитов:
это указывает на хроническое течение воспалительного
процесса. На этом фоне отмечено снижение количества 
В-лимфоцитов, которых стало на 17,8 % меньше, чем у клинически здоровых свиноматок, что отразилось на показателе соотношения Т- и В-лимфоцитов. У этих свиноматок были меньше следующие показатели: концентрация
общих иммуноглобулинов — на 5,8 % и значения БАСК —
на 9,8 % при несущественной разнице в значениях ЛАСК
(больше на 4,9 %). Разница в содержании ЦИК возросла
до 47,6 %. Количество положительных реакций на СРБ у
них составило 40 % при 80 % отрицательных у животных с нормальным течением послеродового периода. 

Заключение
Иммунно-биохимический статус свиноматок с воспалительными процессами в репродуктивных органах или риском их развития во время супоросности и лактации имел
отличия разной степени выраженности в показателях в
сравнении со статусом клинически здоровых животных.
Во время супоросности у них были выше: общее содержание лейкоцитов, абсолютное количество лимфоцитов,
концентрация В-лимфоцитов, ЦИК, число положительных
реакций на СРБ, но меньше содержалось В-лимфоцитов,
общих иммуноглобулинов при более низких показателях
ЛАСК и БАСК. С наступлением лактационного периода
у них наблюдали активизацию Т- и В-клеточного иммунитета, повышение ЛАСК и количества ЦИК. На меньшем
уровне оставались: содержание общих иммуноглобулинов,
показатели БАСК, количество лейкоцитов. Перед отъемом
поросят снижалась количество В-лимфоцитов при более
высоком уровне Т-лимфоцитов, ЛАСК и ЦИК. Выявлялись
положительные реакции на СРБ. Установленные значения
показателей иммуно-биохимического статуса у свиноматок с воспалительными процессами в репродуктивных
органах или риском их развития можно использовать в качестве прогностических и диагностических тестов.

Б и б л и о г р а ф и я
1. Андреев, Е.В. Средства и способы пассивной иммунизации телят в хозяйствах по производству говядины. В кн. «Проблемы ветеринарной  иммунологии» / Е.В. Андреев. — М.:
Агропромиздат, 1985. — С. 135–138.
2. Макаров, В.В. Факторные болезни и причинность в инфекционной патологии / В.В. Макаров // Ветеринарная патология. — 2005. — №3 (14). — С. 4–12.
3. Методические рекомендации по диагностике, терапии и профилактике нарушений обмена веществ у продуктивных животных / М.И. Рецкий, А.Г. Шахов, В.И. Шушлебин и
др. — Воронеж: Истоки, 2005. — 94 с.
4. Мищенко, В.А. Репродуктивно-респираторный синдром свиней («синее ухо») / В.А. Мищенко, В.М. Авилов, В.М. Захаров и др. // Ветеринария. — 1994. — №9. — С. 22–24.
5. Федоров, Ю.Н. Иммунодефициты крупного рогатого скота / Ю.Н. Федоров // Ветеринария. — 2006. — №1. — С. 3–6.
6. Шахов, А.Г. Методические рекомендации по оценке и коррекции неспецифической резистентности животных / А.Г. Шахов, Ю.Н. Бригадиров, А.И. Ануфриев. — Воронеж: Истоки, 2005. — 62 с. 
7. Шахов, А.Г. Этиология факторных инфекций животных и меры их профилактики /А.Г. Шахов // Ветеринарная патология. — 2005. — №3 (14). — С. 22– 4.
8. Bryson D.G. Infectious bovine respiratory disease emerging issues and progress towards control / D.G. Bryson // Proc. of 19th World Buiatrics Congr. — Edinburgh, 1996. — Vol. 1. — рр. 1–8.

R e f e r e n c e s
1. Andreev E.V., Sredstva i sposoby passivnoj immunizacii telyat v hozyajstvah po proizvodstvu
govyadiny v kn. Problemy veterinarnoj immunologii (Means and methods of passive immunization
of calves on farms for beef production. In Problems of veterinary immunology, Moscow, Agropromizdat, 1985, pp. 135–138.
2. Makarov V.V., Faktornye bolezni i prichinnost' v infekcionnoj patologii, Veterinarnaya patologiya,
2005, No. 3 (14), pp. 4–12.
3. Metodicheskie rekomendacii po diagnostike, terapii i profilaktike narushenij obmena veshchestv u produktivnyh zhivotnyh (Methodical recommendations on diagnostics, therapy and prevention of metabolic disorders in productive animals), Reckij M.I., SHahov A.G., SHushlebin
V.I., et al., Voronezh, Istoki, 2005, 94 p.
4. Mishchenko V.A., Avilov V.M., Zaharov V.M. et al., Reproduktivno-respiratornyj sindrom svinej
(«sinee uho»), Veterinariya, 1994, No. 9, pp. 22–24.
5. Fedorov YU.N., Immunodeficity krupnogo rogatogo skota, Veterinariya, 2006, No. 1, pp. 3–6.
6. Shahov A.G., Brigadirov YU.N., Anufriev A.I., Metodicheskie rekomendacii po ocenke i korrekcii nespecificheskoj rezistentnosti zhivotnyh (Methodical recommendations on estimation and
correction of animals ' non-specific resistance), Voronezh, Istoki, 2005, 62 p.
7. Shahov A.G., EHtiologiya faktornyh infekcij zhivotnyh i mery ih profilaktiki, Veterinarnaya patologiya,
2005, No. 3 (14), pp. 22–24.
8. Bryson D.G., Infectious bovine respiratory disease emerging issues and progress towards
control, Proc. 19 World Buiatrics Congr. Edinburgh, 1996, Vol. 1, pp. 1–8.

• РВЖ • № 1/2018 •
11

2. Показатели иммунобиохимического статуса лактирующих
свиноматок
2. Indicators of immunobiochemical status of lactating sows

Показатели

Сроки исследований

3…4й день лактации
перед отъемом
поросят

норма
патология
норма
патология

Лейкоциты, 109/л
12,6±0,59
12,4±0,68
12,1±0,75
11,7±0,80

Лимфоциты, 109/л
5,38±0,48
6,32±0,53
5,18±0,47
5,77±0,22

Тлимфоциты, %
34,5±2,56
37,3±2,90
47,3±4,94
54,8±5,64

Влимфоциты, %
12,4±1,26
21,7***±1,58 24,7±2,96
20,3±1,85

Соотношение Ти Влимфоцитов
2,8:1
3,2:1
1,9:1
2,7:1

Общие иммуноглобулины г/л
24,9±3,14
23,5±1,92
27,7±2,10
26,1±1,53

ЛАСК, мкг/мл
0,58±0,025 0,80*±0,091
1,23±0,16
1,29±0,14

БАСК, %
61,6±5,15
57,3±4,73
64,4±2,47
58,1±5,39

ЦИК, г/л
0,59±0,038
0,75±0,11
0,21±0,055 0,31±0,061

СРБ, %
100 отриц.
100 полож.
80 отриц.
40 полож.ы

Примечание: *p<0,050,02, *** p<0,001

ABSTRACT
Y.N. Brigadirov, V.N. Kotsarev, I.T. Shaposhnikov,
A.E. Lobanov, Yu.O. Falkova

AllRussian Research Veterinary Institute of Pathology, Pharmacology and Therapy of the Russian Academy of Agricultural Science (in Voronezh (114 b,

Lomonosova str., Voronezh, 394087).

Some Indicators of ImmunoBiochemical Status of Sows in Case of Inflammatory Processes in Reproductive Organs. The aim of the study was to determine the immunobiochemical parameters of sow blood with inflammatory processes in the reproductive organs or  risk of its development at different stages of the reproductive cycle. The experiments were carried out in the conditions of pigbreeding enterprise on 20 sows, which were divided into two groups. The first group (n=10) included
sows that remained clinically healthy after farrowing. The second group (n=10) included the sows, which after birth recorded acute postpartum purulent catarrhal endometritis and metritismastitisagalactia, and during the «heat»hidden endometritis. In the
period of the experiment: on 23...25th, 72...74th, 110...112th day of pregnancy, on
3...4th day of lactation and before weaning from 5 sows from each group blood samples were taken for immunobiochemical studies. It is found that the sows of the first
group compared to the second one demonstrated higher leukocyte value by 4.2and 12.1 %, lymphocytes — 6.1...39.8 % of circulating immune complexes (CIC) —
10.3...13.9 % and positive values of Creactive protein (CRP) — 40...80 % of sows
and lower value of Tlymphocytes — by 2.35by 6.9 %, and the total immunoglobulin —
5.6...6.6 % and lysozyme serum activity was blood (LSBA) — by 2.1 % to 10.6 %, bactericidal activity of blood serum (BABS) — 23.3 and 20.7 %. During lactation they
had higher indices of Tlymphocytes — by 8.1 %, Blymphocytes — by 1.17 times,
LABS — by 1.4 times, with fewer leukocytes — by 14.9 %, total immunoglobulins — by
5.6 %, BABS — by 7.0 %. By weaning there were less lymphocytes — by 17.8 % at
higher rates of Tlymphocytes — by 15.9 %, LABS — by 4.9 %, and CBI — by 47.6
%, and positive values (40 %) of the CRP. The revealed values of immunobiochemical status indices in sows with inflammatory processes in reproductive organs or
with risk of its development can be used as prognostic and diagnostic tests.
Keywords: sows, pregnancy, lactation, reproductive organs, inflammatory process,
blood value.