Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные, 2016, № 1

ISSN 5181501959

сельскохозяйственные
животные

1

2016
ÐÎÑÑÈÉÑÊÈÉ
ÂÅÒÅÐÈÍÀÐÍÛÉ
ÆÓÐÍÀË

Эпизоотология

Паразитология

Санитария

Нарушения метаболизма

Памятные даты

Современные фармакои биопрепараты

Ðîññèéñêèé 
Âåòåðèíàðíûé 
Æóðíàë
Russian Veterinary Journal
1/2016

Содержание/Contents

РВЖ • СХЖ • № 1/2016
3

ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ

Эпизоотология

Терентьева Т.Е., Глотова Т.И., Котенева С.В., Глотов А.Г. 

Видовой спектр бактерий рода Clostridium, 

выделенных от крупного рогатого скота на молочных комплексах . . . . . 5

Расулов С.А., Мирзоев Д.М., Давлатов Х.О., Ахматбекова С.Ш. 

Динамика заболеваемости бруцеллезом мелкого рогатого скота 

и людей в районах Республики Таджикистан 

с высокими показателями инфицированности . . . . . . . . . . . . . . . . . . 9

Паразитология

Георгиу Х., Скорнякова О.О. 

Видовая идентификация кровепаразитов крупного рогатого скота

в Кировской области . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 12

Постевой А.Н., Пешков Р.А., Андреянов О.Н. 

Некоторые биологические свойства возбудителя фасциолеза 

Fasciola hepatica в отношении малого прудовика Lumnaea truncatula . . . . 14

Санитария

Афонюшкин В.Н., Табанюхов К.А., Черепушкина В.С.,

Хоменко Ю.С., Татарчук О.П. 

Влияние дезинфицирующих средств на генетический материал патогенов,

специфичных для мясоперерабатывающей промышленности . . . . . 17

ЛЕКЦИИ

Самойловская Н.А., Белименко В.В., Успенский А.В., 

Христиановский П.И., Новосад Е.В., Сасикова М.Р.

Цистный эхинококкоз животных . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 20

Белькевич И.А. 

Полигипомикроэлементозы животных . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 24

ПАМЯТНЫЕ ДАТЫ

Ипполитова Т.И, Данилевская Н.В., Дельцов А.А. 

К 110-летию со дня рождения И.Е. Мозгова . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 29

Юров К.П., Надточей Г.А. 

Подвиг ученого . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 31

СОВРЕМЕННЫЕ ФАРМАКО- И БИОПРЕПАРАТЫ

Переслегина И.О., Руднева С.Ю., Наровлянский А.Н., 

Пронин А.В., Санин А.В. 

Влияние Гамавита на продолжительность опороса у свиноматок 

и прирост живой массы тела помесных поросят . . . . . . . . . . . . . . . . 32

Христиановский П.И., Зинин И.В., Белименко В.В. 

Использование инъекционных нематоцидов для лечения 

и профилактики телязиоза крупного рогатого скота . . . . . . . . . . . . . 35

ORIGINAL ARTICLES

Epizootology

Terentjeva T.E., Glotova T.I., Koteneva S.V., Glotov A.G. 

Species Spectrum of Bacteria of Genus Clostridium Isolated 

from Cattle on Dig Dairy Farms . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5

Rasulov S.A., Mirzoev D.M., Davlatov X.O., Ahmatbekova S.S. 

Dynamics of Brucellosis in Small Cattle 

and People in Tajikistan Regions with 

High Indices of Morbidity . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 9

Parasitology

Georgiou Ch., Skornyakova O.O. 

Species Identification of Blood Parasites of Cattle 

in the Kirov Region . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 12

Postevoy A.N., Peshkov R.A., Andreyanov O.N. 

Some Biological Properties of the Fasciolosis Activator F. hepatica 

in attitude to the Small Pond Snail of Lumnaea truncatula . . . . . . . . . . . 14

Sanitation

Afonyushkin V.N., Tabaniukhov K.A., Cherepushkina V.S., 

Khomenko Yu.S., Tatarchuk O.P. 

Impact of Biocides on Genetic Material of Pathogens, 

Specific for Meat Processing Industry . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 17

LECTURES

Samoylovskaya N.A., Belimenko V.V., Uspenskij A.V., 

Christianovsky P.I., Novosad E.V., Sasikоva M.R. 

Echinococcosis in Animals . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 20

Belkevich I.A. 

Polyhypomicroelementosis of the Animal . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 24

MEMORABLE DATES

Ippolitova T.I., Danilevskaya N.V., Deltsov A.A. 

To the 110th Anniversary of I.E. Mozgov . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 29

Yurov K.P., Nadtochey G.A. 

Exploit of the Scientist . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 31

MODERN PHARMACOLOGICAL DRUGS & BIOPREPARATIONS

Pereslegina I.O., Rudneva S.Yu., Narovlyansky A.N., 

Pronin A.V., Sanin A.V. 

Effect of Gamavit upon Duration of Farrowing in Sows of Large White

Breed and Increase in Live Weight of Crossbred Piglets . . . . . . . . . . . . 32

Christianovsky P.I., Zinin I.V., Belimenko V.V. 

Employment of Injection Nematicides for the Treatment 

and Prevention of Thelaziosis in Cattle . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 35

Воспроизведение материалов в любом виде, включая электронный, возможно только по письменному согласованию с издательством.
Редакция не несет ответственности за содержание рекламных материалов.

Мнение редакции не всегда совпадает с мнением авторов статей 

Рукописи, принятые на рассмотрение, редакция не возвращает.

Согласно рекомендациям Роскомнадзора выпуск и распространение издания допускается без размещения знака информационной
продукции.

Главный редактор

Ф.И. Василевич, докт. вет. наук, академик РАН, проф., ректор ФГБОУ МГАВМиБ

Выпускающий редактор

В.В. Ракитская (rakitskaya.vera@yandex.ru)

Редакционная коллегия

Р.М. Акбаев, канд. вет наук, эксперт в области паразитологии (ФГБОУ МГАВМиБ)

Н.А. Балакирев, докт. с.-х. наук, академик РАН, проф., проректор по научной работе ФГБОУ МГАВМиБ

Н.П. Буряков, докт. биол. наук, проф. декан факультета ВЗО и ДО РГАУ–МСХА им. К.А. Тимирязева

О.А. Верховский, докт. биол. наук, проф., президент АНО «НИИ ДПБ»

Н.А. Власов, докт. биол. наук, проф. (Федеральная служба по ветеринарному и фитосанитарному надзору)

Л.И. Грищенко, докт. вет. наук, эксперт в области ихтиопатологии, ФГБОУ МГАВМиБ

Н.В. Данилевская, докт. биол. наук, профессор, зав. кафедрой фармакологии и токсикологии ФГБОУ МГАВМиБ

Г.П. Дюльгер, докт. вет наук, зав. кафедрой морфологии и ветеринарии факультета зоотехнии и биологии 
(ФГБОУ ВП РГАУ–МСХА им. К.А. Тимирязева)

А.В.Жаров, докт. вет. наук, эксперт в области патологической анатомии (ФГБОУ МГАВМиБ)

С.Ю. Зайцев, докт. биол. наук, докт. хим. наук, проф., зав. кафедрой химии имени профессоров С.И. Афонского, А.Г. Малахова
(ФГБОУ МГАВМиБ)

В.И. Максимов, докт. биол. наук, проф. проректор Учебно-методического объединения вузов РФ по образованию в области зоотехнии
и ветеринарии, эксперт в области физиологии (ФГБОУ МГАВМиБ)

А.В. Пронин, докт. биол. наук, проф. (Минздрав РФ)

В.В. Пронин, докт. биол. наук, проф., зав. кафедрой морфологии, физиологии и ветсанэкспертизы
(Ивановская ГСХА имени академика Д.К. Беляева)

А.В. Санин, докт. биол. наук, проф., руководитель лаборатории клеточного иммунитета НИИЭМ им. Н.Ф. Гамалеи

А.А. Сидорчук, докт. вет. наук, проф., зав. кафедрой эпизоотологии и инфекционных болезней ФГБОУ МГАВМиБ

Г.В. Сноз, докт. вет. наук, проф., эксперт в области диагностики болезней и терапии животных (ФГБОУ МГАВМиБ)

Л.Ф. Сотникова, докт. вет. наук, проф., эксперт в области офтальмологии, зав. кафедрой биологии и патологии мелких домашних, лабораторных и экзотических животных ФГБОУ МГАВМиБ

Ю.Н. Федоров, докт. биол. наук, эксперт в области иммунологии 
(ВАК Минобразования и науки РФ, член бюро Отделения ветеринарной медицины РАН) 

К.П. Юров, доктор ветеринарных наук, заслуженный деятель науки РФ, профессор, заведующий лабораторией вирусологии (ВИЭВ)

4
РВЖ • СХЖ • № 1/2016

Научно-практический журнал 
Издается с марта 2005 г.

Учредитель: Издательство «Логос Пресс»
Директор М.В. Гейне 
Руководитель проекта И.М. Шугурова, к.б.н.
Руководитель отдела маркетинга Е.В. Лебедева
Менеджер по маркетингу М.А. Шугуров
Компьютерный дизайн Я.В. Быстрова

Адрес редакции: 127018, Москва, ул. 2-я Ямская, 2
E-mail: info@logospress.ru, http://logospress-vet.ru
Тел.: +7/495/689-85-16, +7/495/220-48-16

Свидетельство о регистрации СМИ:
ПИ № ФС77-57776 от 18.04.2014
Подписан в печать 27.11.15

Оформление подписки каталог «Почта России» 12594 (на год)

Журнал выпускается при участии
Учебно-методического объединения высших учебных заведений 
Российской Федерации по образованию в области зоотехники 
и ветеринарии
Федеральной службы по ветеринарному и фитосанитарному надзору
(Россельхознадзор)
Департамента ветеринарии Министерства сельского хозяйства РФ

ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ

Ключевые слова: крупный рогатый скот, клостридии, энтеротоксемия, злокачественный отек
Сокращения: ЖКТ — желудочно-кишечный тракт,
КМПА — кровяной мясопептонный агар, КОЕ — колониеобразующие единицы, КРС — крупный рогатый
скот, МППА — мясопептонный полужидкий агар

Введение
Клостридии — грамположительные анаэробные спорообразующие бактерии семейства Clostridiaceae рода
Clostridium, широко распространены в природе: они
присутствуют в почве, воде, материале разложения (гниения) растительных или животных продуктов. Клостридии могут обусловливать значительное число болезней сельскохозяйственных животных и птиц [9…12],
однако в большинстве случаев они являются представителями нормальной микрофлоры ЖКТ КРС [1,
6, 7, 19, 21].
Актуальность проблемы клостридиозов в нашей стране в последние годы обусловлена интенсификацией животноводства, направленной на повышение молочной
продуктивности коров, часто на фоне несбалансированного кормления. Наиболее восприимчивы к заболеванию высокопродуктивные животные после первого-второго отелов, а также телята [12, 17, 18].
Клостридии, обитая в ЖКТ в качестве комменсалов, приобретают патогенность под воздействием определенных факторов (после кормового стресса, травм,

изменений условий содержания и состояния организма животного — нарушения обмена веществ, кетозов,
ацидоза рубца), на фоне которых изменяется принцип
взаимоотношения макро- и микроорганизмов и создаются благоприятные условия для быстрого размножения последних и выработки токсинов [9, 10]. В некоторых случаях возникновению клостридиозов способствует бесконтрольное применение антибиотиков [12,
15]. Отдельные болезни, вызванные этими бактериями,
встречаются достаточно редко или могут вообще не
проявляться клинически (при этом сохраняется бактерионосительство), другие носят спорадический характер. В большинстве случаев прогноз неблагоприятный, и единственным признаком болезни может быть
гибель животного [12].
В настоящее время признанными этиологическими
агентами клостридиозов КРС являются: Cl. tetani (столбняк), Cl. novyi типа B (злокачественный отек, газовая гангрена), Cl. perfringens типа A (геморрагическое
воспаление тонкого кишечника, язвы сычуга, тимпания, газовая гангрена, внезапная гибель), Cl. perfringens типа C (некротический энтерит), Cl. perfringens типа D (энтеротоксемия), Cl. septicum (злокачественный отек, газовая гангрена), Cl. chauvoei (эмкар),
Cl. sordellii (энтеротоксемия, синдром внезапной гибели, злокачественный отек), Cl. haemolyticum (бациллярная гемоглобинурия КРС) [10…16, 20]. В последнее время в литературе появились сообщения о новом

Видовой спектр бактерий рода 
Clostridium, выделенных от крупного
рогатого скота на молочных комплексах

УДК 619:579.852.13

Т.Е. Терентьева, кандидат ветеринарных наук, старший научный сотрудник лаборатории биотехнологии —
диагностический центр (tatjana177@mail.ru), Т.И. Глотова, доктор биологических наук, профессор, заведующая
лабораторией вирусологии (tglotova@mail.ru), С.В. Котенева, кандидат ветеринарных наук, старший научный
сотрудник лаборатории биотехнологии — диагностический центр (kotenevasv@mail.ru), А.Г. Глотов, доктор
ветеринарных наук, профессор, заведующий отделом ветеринарной биотехнологии (glotov_vet@mail.ru)
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока»
(ФГБНУ ИЭВСиДВ) (630501, Новосибирская область, Новосибирский район, р.п. Краснообск, а/я 8).

Реферат
Клостридии — грамположительные анаэробные спорообразующие бактерии семейства Clostridiaceae рода Clostridium, широко распространены в природе и могут быть причиной многих болезней КРС. В большинстве случаев
являются представителями нормальной микрофлоры ЖКТ. Актуальность проблемы клостридиозов в нашей
стране в последние годы обусловлена интенсификацией животноводства, направленной на повышение молочной
продуктивности коров, часто на фоне несбалансированного кормления. Наиболее восприимчивы к заболеванию
высокопродуктивные животные после первого-второго отелов, а также телята.
Цель работы. Изучение видового состава бактерий рода Clostridium, выделенных от КРС на молочных комплексах
Сибири, а также определение их культурально-морфологических, биохимических и некоторых биологических
свойств.
Материалы и методы. Выделение и идентификацию культур бактерий проводили согласно ГОСТ 26503-85 «Методы
лабораторной диагностики клостридиозов». Видовую идентификацию чистых культур бактерий осуществляли
при помощи набора «RAPID ANAIIPanel».
Заключение. Частота выделения бактерий из проб биоматериала от животных различных половозрастных групп
составила 8,00 %, в том числе 5,43 % от коров и 1,72 % от телят до 6-ти месячного возраста. Установлено, что
среди КРС, в основном, циркулируют виды: Cl. histolyticum, Cl. septicum, Cl. sporogenes и Cl. perfringens. Из проб
внутренних органов наиболее часто выделяли патогенные бактерии Cl. septicum (100 %) и Cl. histolyticum
(71,15 %), а из молока и вагинальных выделений — непатогенные культуры Cl. histolyticum.

РВЖ • СХЖ • № 1/2016
5

Эпизоотология Т.Е. Терентьева, Т.И. Глотова, С.В. Котенева, А.Г. Глотов

виде — Cl. difficile, вызывающем заболевания у телят,
ягнят и новорожденных поросят [11, 22].
Развитие ацидозов и повышение кислотности в рубце способствуют увеличению и накоплению биомассы бактерий рода Clostridium и приобретению ими вирулентности. Активизации бактерий могут также способствовать стресс-факторы (резкие изменения в кормлении, связанные со снижением уровня углеводов,
повышением уровня протеинов; перегруппировки,
транспортировка животных и др.). Активное размножение бактерий сопровождается выработкой большого количества экзотоксинов, которые действуют
локально на слизистую кишечника или всасываются
в кровь, вызывая более широкие и тяжелые системные поражения организма, и служат основными факторами патогенности клостридий. У некоторых видов
бактерий (Cl. chauvoei, Cl. septicum), токсигенность
которых невысока, факторами патогенности являются жгутики, обеспечивающие подвижность, адгезию и гемагглютинацию [12].
В настоящее время видовой состав бактерий рода
Clostridium, вызывающих патологию у КРС в животноводческих хозяйствах Российской Федерации, изучен недостаточно. В доступной литературе нам удалось
найти сообщение о том, что причиной клостридиозов
животных в хозяйствах Московской, Рязанской, Тюменской, Белгородской, Кировской и Псковской областей
были бактерии семи видов рода Clostridium с преобладанием Cl. septicum и Cl. sporogenes [5]. Чтобы повысить эффективность мер профилактики и борьбы c
клостридиозами КРС, необходимо знать видовой спектр
бактерий, вызывающих данные заболевания.

Цель исследования
Изучить видовой состав бактерий рода Clostridium, выделенных от КРС на молочных комплексах Сибири, а
также определить их культурально-морфологические,
биохимические и некоторые биологические свойства.

Материалы и методы
Работа выполнена в 2007–2015 гг. в лаборатории биотехнологии — диагностический центр Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока» и молочных комплексах Сибири.
Пробы биоматериала брали у животных разного возраста, не получавших антибактериальные препараты,
замораживали однократно и транспортировали в лабораторию в течение не более 4…12 ч в термосе со льдом, чтобы избежать повторного оттаивания и замораживания.
Культуры бактерий выделяли и идентифицировали согласно ГОСТ 26503-85 «Методы лабораторной
диагностики клостридиозов». Использовали искус
ственные питательные среды: кровяной МПА, тиогликолевую среду и МППА, содержащий 1 % глюкозы.
Для определения патогенности выделенных культур
бактерий использовали беспородных белых мышей
(n=288) массой 18…20 г [4].
Для получения чистой культуры выделенные анаэробные бактерии в пробирках с тиогликолевой средой выдерживали в темном месте при комнатной температуре в течение 10…14 суток, после чего прогревали на водяной бане при 90 °С в течение 15 минут.
При этом споровые формы бактерий сохраняли жизнеспособность, а посторонняя сопутствующая микрофлора погибала. Затем пересевали бактерии на
МППА с 1 % глюкозы в пробирки и на две чашки Петри с кровяным МПА (одну инкубировали в анаэробных, другую — в аэробных условиях при температуре 37 оС). При изучении культурально-морфологических свойств бактерий обращали внимание на характер их роста, микроморфологию в мазках, окрашенных
по Граму.
Чистые культуры анаэробных бактерий идентифицировали до вида при помощи набора «RAPID ANAIIPanel».

Результаты и обсуждение
Всего исследовали 3500 проб биоматериала от мертворожденных телят, абортированных плодов, телят до
6 месячного возраста (кусочки селезенки, печени, мышечной ткани) и коров (кусочки селезенки, печени, мышечной ткани, влагалищные выделения и молоко). Вычисляли процент положительных проб от общего количества исследованных. Результаты представлены в
таблице 1.
Результаты показали, что частота выделения бактерий рода Clostridium из проб биоматериала от животных составила 8,00 %. Больше всего положительных
проб выявили от коров (5,43 %) и телят до 6-ти месяцев
(1,72 %). Частота выделения бактерий из проб биоматериала от абортированных плодов и мертворожденных
телят составила 0,57 и 0,28 %, соответственно. Наибольшее количество культур бактерий получили из селезенки (1,60 %) и печени (1,60 %) коров. Процент выделения бактерий из проб влагалищных выделений и молока составил 0,86 и 0,88 %, соответственно.

6
РВЖ • СХЖ • № 1/2016

1. Частота выделения бактерий рода Clostridium из проб биоматериала, полученных от КРС (2007–2015)
1. The frequency of isolation of bacteria of genus Clostridium from samples of biological material taking out of cattle (2007–2015)

Вид биоматериала

Число
исследованных 
проб

Число положительных проб /%
от общего количества 
исследованных

Число положительных проб/% от общего количества
исследованных по половозрастным группам животных:

мертворожденные телята
абортированные плоды
телята до 6 мес
коровы

Селезенка
1600
100/2,86
5/0,14
10/0,28
29/0,83
56/1,60

Печень
1209
96/2,74
5/0,14
10/0,28
25/0,72
56/1,60

Мышечная ткань
129
23/0,66
–
–
6/0,17
17/0,49

Влагалищные выделения
248
30/0,86
–
–
–
30/0,86

Молоко
314
31/0,88
–
–
–
31/0,88

Всего
3500
280/8,00
10/0,28
20/0,57
60/1,72
190/5,43

2. Патогенность культур бактерий рода Clostridium
для беспородных белых мышей
2. The pathogenicity of bacterial cultures of genus Clostridium
for nonbred white mice

Вид 
бактерии

Число
исследованных
культур бактерий

Число культур бактерий/% 
от числа исследованных

патогенные
непатогенные

Cl. histolyticum
52
37/71,15
15/28,85

Cl. septicum
38
38/100
–

Cl. sporogenes
3
3/100
–

Cl. perfringens
3
3/100
–

Всего
96
81/84,37
15/15,63

Видовой спектр бактерий рода Clostridium, выделенных от крупного рогатого скота на молочных комплексах

Всего выделили 280 культур бактерий, которых по
культурально-морфологическим признакам отнесли
к роду Clostridium. Для видовой идентификации и определения патогенности использовали 96 культур.
Культивирование бактерий Cl. septicum и Cl. perfringens на тиогликолевой среде сопровождалось равномерным, разной степени выраженности помутнением и обильным выделением газа, последующим ее просветлением через 24…48 ч. Рост Cl. histolyticum сопровождался интенсивным помутнением среды без
газообразования. Для Cl. sporogenes было характерно активное образование газа и наличие неприятного гнилостного запаха.
На КМПА все бактерии формировали крупные и мелкие, круглые, плоские, с изрезанными краями колонии,
окруженные зоной b-гемолиза.
Все исследованные культуры бактерий были грамположительными. В мазках, окрашенных по Граму,
регистрировали крупные и толстые или длинные и
тонкие палочки с закругленными концами, расположенные изолированно, короткими или длинными
цепочками.
По результатам изучения биохимических свойств
идентифицировали следующие виды бактерий рода
Clostridium: Cl. histolyticum — 52 культуры, Cl. septicum — 38, Cl. sporogenes — 3, Cl. perfringens — 3 культуры.
Учитывая комменсальную, условно-патогенную природу большинства видов бактерий рода Clostridium,
значительный интерес представляло определение их
патогенных свойств, которые изучали на беспородных
белых мышах путем внутрибрюшинного введения им
0,5 мл 24-х часовой бактериальной суспензии с концентрацией 109 КОЕ/мл. Результаты исследований
представлены в таблице 2.
Всего выявили 84,37 % патогенных культур, причем все бактерии видов Cl. septicum, Cl. sporogenes и
Cl. perfringens были патогенными для белых мышей
и вызывали их гибель в течение 24…48 ч после заражения. Кроме того, 71,15 % культур бактерии Cl. histolyticum также были патогенными.
Cl. sporogenes и Cl. perfringens, как правило, выделяли из некротизированной мышечной ткани, селезенки и печени коров, что характерно для септического
процесса, а Cl. histolyticum — из печени, селезенки телят и коров. Непатогенные культуры бактерий Cl. histolyticum изолировали из проб молока и влагалищных
выделений. В некоторых случаях клостридии выделяли в ассоциации с бактериями семейства Pasteurellaceae,
в частности с Pasteurella multocida А и D, Mannheimia
haemolytica [2, 3].
В настоящее время актуальность проблемы клостридиозов обусловлена интенсификацией животноводства,
направленной на повышение молочной продуктивности коров, что приводит к глубоким расстройствам всех
видов обмена веществ и развитию иммунодефицитных
состояний. У коров часто при биохимических исследованиях выявляют сдвиг щелочного резерва в сторону ацидоза, что ведет к дистрофическим и дегенеративным изменениям в печени, нарушению воспроизводительной функции, ухудшению качества продукции и, как правило, к преждевременному выбытию
из стада высокопродуктивных животных по причине

возникновения у них различных патологий, вызванных
анаэробной инфекцией.
В отечественной научной литературе сведений о видовом составе бактерий рода Clostridium, вызывающих патологию у КРС, недостаточно. Процесс выделения энаэробных бактерий достаточно трудоемкий,
необходимы высокая квалификация исследователей,
а также строгое выполнение правил отбора и доставки проб биоматериала в лабораторию. Серотипизация
выделенных бактерий не доступна большинству диагностических ветеринарных лабораторий. Поэтому актуальным является изучение видового состава бактерий, вызывающих анаэробные инфекции у КРС, в
частности, на молочных комплексах.
Из-за большого видового разнообразия бактерий
рода Clostridium, обитающих в ЖКТ клинически здорового КРС, сам факт их изоляции не имеет диагностического значения. Важным является обнаружение
бактерий в пробах биоматериала от больных, вынужденно убитых или павших животных, с последующим
выделением культуры на питательных средах, идентификацией и изучением патогенности для лабораторных животных. Следует также иметь в виду, что
после гибели животного происходит активное размножение клостридий и проникновение их из кишечника в другие органы и ткани организма, что может подавлять другую нормальную или патогенную
микрофлору. Учитывая это, выделение бактерий из
образца материала, полученного от павшего животного, также не является основой для постановки
диагноза [12, 15].

Заключение
Наши результаты свидетельствуют о том, что в хозяйствах региона Сибири патогенные (вирулентные) варианты бактерий и клинические формы клостридиозов, ими вызванные, встречаются достаточно редко
(частота их выделения составила 8,00 %, что соответствует данным других исследователей [5]). По биохимическим свойствам 96 культур бактерий рода Clostridium были отнесены к видам: Cl. histolyticum — 52, 
Cl. septicum — 38, Cl. sporogenes — 3, Cl. perfringens — 3. Все выделенные культуры Cl. septicum, 
Cl. sporogenes и Cl. perfringens, а также 71,15 % Cl. histolyticum были патогенными для лабораторных животных. В данной работе мы не выделили другие виды бактерий рода Clostridium, а также не изучали токсигенную активность бактерий. Исследования в этом плане необходимо продолжить.
Известно, что в мясном скотоводстве группой риска являются все животные без исключения, так как
они постоянно сталкиваются со спорами бактерий,
которые при соответствующих анаэробных условиях могут активизироваться, активно размножаться, выделять токсины, легко всасывающиеся в кровь
и вызывающие гибель 20…40 % животных [8…10,
12]. В молочном скотоводстве наиболее восприимчивая категория — высокопродуктивные животные после первого-второго отелов, у которых на фоне нарушения обменных процессов (недостаток энергии,
кетозы, ацидозы и прочие факторы) активизируется
условно-патогенная микрофлора, в том числе и бактерии рода Clostridium, приводя к снижению молоч
РВЖ • СХЖ • № 1/2016
7

Т.Е. Терентьева, Т.И. Глотова, С.В. Котенева, А.Г. Глотов

ной продуктивности и гибели в некоторых случаях
до 50 % животных [8…10]. Однако до сих пор факторы риска на уровне животного или стада до конца не выяснены.
Известно, что одним из подходов к контролю болезней, вызванных бактериями рода Clostridium, является вакцинация, и для повышения ее эффективности необходимо, чтобы спектр этиологических агентов, циркулирующих в конкретном хозяйстве, полностью соответствовал набору антигенов, входящих
в вакцинный препарат. Однако, учитывая комменсальную природу бактерий, эффективность специфической профилактики не всегда бывает адекватной. Поэтому только комплексный подход, включающий в
себя соблюдение зоотехнических, технологических и
ветеринарных требований к содержанию КРС является ключевым в решении проблемы профилактики
клостридиозов [9, 10, 12, 15, 16].

Б и б л и о г р а ф и я
1. Борисович, Ю.Ф. Инфекционные болезни животных. — М.: Агропромиздат, 1987.
— 288 с.
2. Глотов, А.Г. Этиологическая структура массовых респираторных болезней молодняка крупного рогатого скота в хозяйствах, занимающихся производством молока /
А.Г. 
Глотов, 
Т.И. Глотова, А.В. Нефедченко, С.В. Котенева, Н.Р. Будулов, О.В. Кунгурцева // Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. — 2008. — № 3. — С. 72–78.
3. Глотов, А.Г. Особенности проявления легочного пастереллеза молодняка КРС в хозяйствах по производству молока / А.Г. Глотов, Т.И. Глотова, Т.Е. Терентьева и соавт .// Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. — 2012. — № 2. — С. 55–61.
4. ГОСТ26503-85. Методы лабораторной диагностики клостридиозов. — Введ. 1985–03–
29. — М.: Изд-во стандартов, 1985. — 15 с.
5. Капустин, А.В. Видовой состав клостридий крупного рогатого скота / А.В. Капустин,
А.В. Моторыгин, Н.К. Букова // Вестник ветеринарии. — 2013. — № 1. — Вып. 64. — С.
71–73.
6. Сидорчук, А.А. Клостридиозы животных: учебное пособие./ А.А. Сидорчук, В.Л. Крупальник. — М.: МГАВМиБ им. К.И. Скрябина, 2004. — 140 с.
7. Ургуев, K.P. Клостридиозы животных. — М.: Россельхозиздат, 1987. — 183 с.
8. Abutarbush, S.M. Jejunal hemorrhage syndrome in dairy and beef cattle: 11 cases (2001
to 2003) / S.M. Abutarbush, О.М. Radostits // Canadian Veterinary Journal. — 2005. —
Vol. 46. — P. 711–715.
9. Barker, I.K. The alimentary system, disease associated with enteric clostridial infection / I.K.
Barker, A.A. Van Dreumel, N. Palmer // Pathology of Domestic Animals. — 1993. — Vol
2. — P. 213–221.
10. Berghaus, R.D. Risk factors associated with hemorrhagic bowel syndrome in dairy cattle / R.D. Berghaus, B.J. Mccluskey, R.J. Callan // J. of the Amer. Vet. Med. Assoc. —
2005. — Vol. 226. — P. 1700–1706.
11. Dahms, C. Epidemiology and zoonotic potential of multiresistant bacteria and Clostridium difficile in livestock and food / С. Dahms, N.O. Hubner et al. // GMS Hyg. Infect. Control. — 2014. — Vol. 9(3). – P. 1–16.
12. Hathewey, C.L. Toxigenic clostridii / C.L. Hathewey // Clinical Microbiology Reviews. —
1990. — Vol. 3. — P. 66–98.
13. Hickey, M.H. Molecular and cellular basis of microvascular perfusion deficits induced by
Clostridium perfringens and Clostridium septicum / M.H. Hickey, R.Y.Q. Kwan, M.M. Awad
et al. // PLoS Pathog. — 2008. — Vol. 4. — P. 1000–1045.
14. Kennedy, C.L. The alphatoxin of Clostridium septicum is essential for virulence /
C.L. Kennedy, E.O. Krejany, L.F. Young et al. // Mol. Microbiol. — 2005. — Vol. 57. —
P. 1357–1366.

15. Lebrun, M. Cattle enterotoxaemia and Clostridium perfringens: description, diagnosis
and prophylaxis / М. Lebrun, J.G. Mainil, А. Linden //Veterinary Record. — 2010. — Vol.
167. — P. 13–22.
16. Manteca, C. Etude de l’enterotoxemie bovine en Belgique. III. Comparaison de differents protocoles d’immunisation contre la toxine ade Clostridium perfringens // Annales de Medecine
Veterinaire. — 2004. — Vol. 148. — P. 147–152.
17. Morris, W.E. Necrotic enteritis in young calves / W.E. Morris, A.J. Venzano et al. // J. Vet.
Diagn. Invest. — 2011. — Vol. 23. — P. 254–259.
18. Odani, J.S. Malignant edema in postpartum dairy cattle / J.S. Odani, P.C. Blanchard et al.
// J. Vet. Diagn. Invest. — 2009. — Vol. 21. — P. 920–924.
19. Petit, L. Clostridium perfringens: toxinotype and genotype / L. Petit, M. Gibert, M. Popoff
// R. Trends in Microbiology. — 1999. — Vol. 7. — P. 104–110.
20. Rood, J.I. Molecular genetics and pathogenesis of Clostridium perfringens S / J.I. Rood,
Т. Cole // Microbiological Reviews. — 1991. — Vol. 55. — P. 621–648.
21. Songer, J.G. Clostridia enteric diseases of domestic animals / J.G. Songer // Clinical
Microbiology Reviews. — 1996. — Vol. 9. — P. 216–234.
22. Rodriguez-Palacios, A. Clostridium difficile PCR ribotypes in calves, Canada / А. RodriguezPalacios, H.R. Stampfli et al. // Emerg. Infect. Dis. — 2006. — Vol.12. — P. 1730–1736.

R e f e r e n c e s
1. Borisovich Ju.F. Infekcionnye bolezni zhivotnyh (Infectious diseases of the animals). Moscow,
Agropromizdat, 1987, pp. 288.
2. Glotov A.G., Glotova T.I., Nefedchenko A.V., Koteneva S.V., Budulov N.R. Sibirskij vestnik sel'skohozjajstvennoj nauki, 2008, No. 3, P. 72–78.
3. Glotov A.G., Glotova T.I., Terent'eva T.E. et al. Sibirskij vestnik sel'skohozjajstvennoj
nauki, 2012, No 2, P. 55–61.
4. GOST26503-85. Metody laboratornoj diagnostiki klostridiozov (Methods of laboratory diagnostics of clostridioses). Moscow, Izd-vo standartov, 1985, pp. 15.
5. Kapustin A.V. Motorygin A.V., Bukova N.K. Vestnik veterinarii, 2013, No. 1, Is. 64, P. 71–73.
6. Sidorchuk A.A., Krupal'nik V.L. Klostridiozy zhivotnyh (Clostridioses of the animals). Moscow,
MGAVMiB im. K.I. Skrjabina, 2004, pp. 140.
7. Urguev K.P. Klostridiozy zhivotnyh (Clostridioses of the animals). Moscow, Rossel'hozizdat, 1987, pp. 183.
8. Abutarbush S.M., Radostits О.М. Jejunal hemorrhage syndrome in dairy and beef cattle:
11 cases (2001 to 2003). Canadian Veterinary Journal, 2005, Vol. 46, P. 711–715.
9. Barker I.K., Van Dreumel A.A., Palmer N. The alimentary system, disease associated
with enteric clostridial infection. Pathology of Domestic Animals, 1993, Vol 2, P. 213–221.
10. Berghaus R.D., Mccluskey B.J., Callan R.J. Risk factors associated with hemorrhagic bowel syndrome in dairy cattle J. of the Amer. Vet. Med. Assoc, 2005, Vol. 226, P. 1700–1706.
11. Dahms C., Hubner N.O. et al. Epidemiology and zoonotic potential of multiresistant
bacteria and Clostridium difficile in livestock and food GMS Hyg. Infect. Control., 2014, Vol.
9(3), Р. 1–16.
12. Hathewey C.L. Toxigenic clostridii Clinical Microbiology Reviews, 1990, Vol. 3, P. 66–98.
13. Hickey M.H., Kwan R.Y.Q., Awad M.M. et al. Molecular and cellular basis of microvascular
perfusion deficits induced by Clostridium perfringens and Clostridium septicum PLoS Pathog.,
2008, Vol. 4, P. 1000–1045.
14. Kennedy C.L., Krejany E.O., Young L.F. et al. The alphatoxin of Clostridium septicum is
essential for virulence Mol. Microbiol., 2005, Vol. 57, P. 1357–1366.
15. Lebrun M., Mainil J.G., Linden А. Cattle enterotoxaemia and Clostridium perfringens:
description, diagnosis and prophylaxis Veterinary Record., 2010, Vol. 167, P. 13–22.
16. Manteca C. Etude de l’enterotoxemie bovine en Belgique. III. Comparaison de differents
protocoles d’immunisation contre la toxine ade Clostridium perfringens Annales de Medecine
Veterinaire, 2004, Vol. 148, P. 147–152.
17. Morris W.E., Venzano A.J. et al. Necrotic enteritis in young calves J. Vet. Diagn. Invest,.
2011, Vol. 23, P. 254–259.
18. Odani J.S., Blanchard P.C. et al. Malignant edema in postpartum dairy cattle J. Vet. Diagn.
Invest., 2009, Vol. 21, P. 920–924.
19. Petit L., Gibert M., Popoff M. Clostridium perfringens: toxinotype and genotype R. Trends
in Microbiology, 1999, Vol. 7, P. 104–110.
20. Rood J.I., Cole Т.Molecular genetics and pathogenesis of Clostridium perfringens S Microbiological Reviews, 1991, Vol. 55, P. 621–648.
21. Songer J.G. Clostridia enteric diseases of domestic animals Clinical Microbiology Reviews,
1996, Vol. 9, P. 216–234.
22. Rodriguez-Palacios A., Stampfli H.R. et al. Clostridium difficile PCR ribotypes in calves,
Canada Emerg. Infect. Dis., 2006, Vol.12, P. 1730–1736.

8
РВЖ • СХЖ • № 1/2016

ABSTRACT
T.E. Terentjeva, T.I. Glotova, S.V. Koteneva, A.G. Glotov

Institute of Experimental Veterinary Science of Siberia and the Far East (Krasnoobsk Novosibirsk region) (630501, Novosibirsk region, Novosibirsk district, Krasnoobsk, рost office box 8).

Species spectrum of bacteria of genus Clostridium isolated from cattle on big dairy farms. Clostridia are Grampositive, anaerobic, sporeforming bacteria of the family Clostridiaceae genus Clostridium, are widespread in nature and can be the cause of many diseases of cattle, as in most cases, the normal flora of the gastrointestinal
tract. The urgency of the problem of clostridiosis in our country in recent years due to the intensification of livestock production especially increase milk production of cows
often on the background of unbalancedfoot feed. The most susceptible to the disease are highyield animals after the first and second calving and the calves.
Purpose. Studying of specific structure of bacteria of genus Clostridium isolated from cattle on big dairy farms of Siberia and also definition of their culturalmorphological, biochemical and some biological properties.
Materials and methods. Isolation and identification of cultures of bacteria was spent according to «Methods of laboratory diagnostics clostridiosis». Specific identification of pure cultures of bacteria carried out by means of a set «RAPID ANAIIPanel». 
Conclusion. The frequency of isolation of bacteria from a samples of biological material from animals of different gender and age was 8.00% including 5.43% of
the cows and 1.72% from calves to 6old month of age. It was established that mostly circulating species in cattle were Cl. histolyticum, Cl. septicum, Cl. sporogenes and Cl. perfringens. The most frequently isolated pathogenic bacteria from internal organs were Cl. septicum (100%) and Cl. histolyticum (71,15%) and from
milk and vaginal exudates were isolated non pathogenic cultures of Cl. histolyticum.
Key words: cattle, clostridia, enterotoxemia, malignant edema.

Ключевые слова: бруцеллез, зоонозы, эпидемия, эпизоотия, инфицированость, мелкий рогатый скот
Сокращения: КРС — крупный рогатый скот, МРС —
мелкий рогатый скот, РРП — районы республиканского подчинения, ГБАО — Горно-Бадахшанская автономная область

Введение
Особое место среди инфекционных заболеваний занимают зоонозы, способные передаваться от животных человеку. Одно из ведущих мест среди них принадлежит
бруцеллезу, который для человека очень опасен. Несмотря на постоянную противоэпизоотическую работу с
применением средств диагностики и профилактики бруцеллеза в Республике Таджикистан ежегодно выделяют
больных животных, от которых сельское хозяйство терпит значительный экономический ущерб [2, 3, 5].
В Республике Таджикистан бруцеллез МРС широко распространен и, как следствие, постоянно диагностируется у людей. Ежегодно в республике отмечают
очень высокую заболеваемость людей бруцеллезом. Динамика показателей неизменно из года в год говорит
о наличии очагов и путей передачи заболевания.

Цель исследования
Изучить в сравнительном аспекте динамику заболеваемости бруцеллезом МРС и людей в некоторых райо
нах с высокими показателями инфицированости за
2000–2014 гг.

Материалы и методы
При оценке сложившейся ситуации по бруцеллезу среди МРС и людей в Республике Таджикистан нами были использованы статистические данные, полученные
из отчетов республиканских лабораторий, Республиканского противоэпизоотического центра и Службы
государственного санитарно-эпидемиологического
надзора.
Для диагностики бруцеллеза среди животных используют серологические методы исследований (роз-бенгал
пробу, реакции агглютинации и связывания комплемента); при диагностике заболевания у людей учитывают
клинические признаки, а также результаты серологических исследований (реакция Хеддельсона–Райта, иммуноферментный анализ).
Анализ эпизоотической и эпидемической ситуации
по бруцеллезу в Республике Таджикистан проведен за
период 2000–2014 гг.

Результаты и обсуждение
По данным Министерства Сельского хозяйства Республики Таджикистан, численность МРС составляет более 4 млн. голов. Большая часть поголовья принадлежит частным и фермерским хозяйствам (приблизитель
Динамика заболеваемости бруцеллезом
мелкого рогатого скота и людей в районах
Республики Таджикистан с высокими
показателями инфицированности

УДК 619: 616. 98: 579.841.93

ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ Эпизоотология РВЖ • СХЖ • № 1/2016
9

С.А. Расулов1, научный сатрудник (rasulovsunatullo@mail.ru), Д.М. Мирзоев1, академик, старший научный сотрудник
(mirzoev.d.@mail.ru), Х.О. Давлатов1, кандидат ветеринарных наук, ведуший научный сотрудник (khdavlatov@mail.ru),
С.Ш. Ахматбекова2, ведуший спецалист (sabohat_ahmadbekova@yahoo.com).

1 Институт ветеринарии Таджикской академии сельскохозяйственных наук (734005, Республика Таджикистан, г. Душанбе, ул. Каххорова, д. 43).

2 Служба государственного санитарноэпидемиологического надзора г. Душанбе (734025, Республика Таджикистан, г. Душанбе, ул. Чапаева, д. 8).

Реферат
В статье приведены материалы по эпизоотической и эпидемической ситуации в районах с высокими показателями
инфицированности по бруцеллезу МРС и человека в Республике Таджикистан.
Цель исследования. Изучить в сравнительном аспекте динамику заболеваемости бруцеллезом МРС и людей в
некоторых районах с высокими показателями инфицированости за 2000–2014 гг.
Материалы и методы. В работе были использованы статистические данные, полученные из отчетов
республиканских лабораторий, Республиканского противоэпизоотического центра и Службы государственного
санитарно-эпидемиологического надзора.
Заключение. Проведенный анализ показывает: в Согдийской области за 15 лет зарегистрировано 6484 положительно
реагирующих животных. На долю трех районов с высокими показателями приходится 4337 голов МРС, положительно
реагирующих на бруцеллез, что составляет 67 %. Среди положительно реагирующих людей этот показатель
по области достигает цифры 4457, а в трех районах с высокими показателями — 1196, что составляет 27 %.
В 25 районах Хатлонской области выявлено 8354 положительно реагирующих животных, самые высокие показатели
отмечены в 8 районах (6720 голов, что составляет 80 %). Среди людей этот показатель достигает 4900 по
области, в 8 районах — 1571, что составляет 33 %.
В РРП на протяжении 15 лет в 13 районах было зарегистрировано 8344 голов положительно реагирующих животных.
Самые высокие показатели зарегистрированы в 6 районах — 7034 голов, что составляет 84 %. Среди людей всего
зарегистрировано 4936 положительно реагирующих, в 6 районах с высокими показателями — 2297, что составляет 47 %.

С.А. Расулов, Д.М. Мирзоев, Х.О. Давлатов, С.Ш. Ахматбекова

но 80 % домашних хозяйств имеют в собственности
скот). В Таджикистане приблизительно 3500 сел и 7000
домашних хозяйств, в которых содержится от 10 до
5000 гол. скота на одно село, таким образом, на каждую выращенную голову КРС приходится не менее двух
овец и коз.
Болезнь регистрируют в 65 районах республики, в 17
из них за 15 лет отмечена высокая заболеваемость. Установлено, что из 3-х областей и РРП Таджикистана по
среднему уровню заболеваемости бруцеллезом в течение многих лет первое место занимает Хатлонская область, второе место — РРП, третье — Согдийская область, четвертое — ГБАО. Конкретные сведения приведены в таблице и диаграмме.
Как показывает сравнительная оценка эпизоотического и эпидемического процессов в районах с высокими показателями инфицированности среди МРС
и людей, за прошедшие 15 лет самый высокий показатель был в Согдийской области в районе Гончи —
1588 голов МРС и 788 человек. В Хатлонской области самый высокий показатель инфицированности
МРС бруцеллезом зарегистрирован в Темурмаликском районе — 1039 голов; среди людей положительно реагирующие выявлены в Панджском районе —
444 человека; по РРП самый высокий показатель среди МРС отмечен в районе Турсунзаде — 2141 голов,
среди людей самый высокий показатель болезни выявлен в районе Рудаки — 733 человека.

По ГБАО за прошедшие 13 лет (с 2000 г. по 2012 г.)
было исследовано 311897 голов, из них положительно реагирующих 325, инфицированность составила
0,10 %. В 2013–2014 гг. выявлена максимальная инфицированность бруцеллезом МРС: из 8 районов ГБАО
в двух зарегистрированы самые высокие показатели
положительно реагирующих животных. Так, в 2013 г.
в районе Шугнан было выявлено 147 голов положительно реагирующих, что составило 2,17 % инфицированности. В районе Мургаб положительно реагирующих выявлено 10 голов, инфицированность составила 0,12 %. В 2014 г. болезнь стала быстро прогрессировать. В районе Шугнан было выявлено 508
голов положительно реагирующих животных (заболеваемость 7,07 %), в районе Мургаб положительно
реагирующих было 52 головы, инфицированность составила 0,57 %. Среди людей в 2013 г. в Шугнанском
районе было выявлено 171 больных бруцеллезом, а
в 2014 г. зарегистрировано 261человек; в Мургабском районе число больных составило 47 человек, а в
2014 г. численность положительно реагирующих возросла до 59 человек.

Заключение
Проведен анализ эпизоотической и эпидемической ситуации по бруцеллезу в Республике Таджикистан за период 2000–2014 гг., при этом высокая заболеваемость
установлена в 17 из 65 районов.

10
РВЖ • СХЖ • № 1/2016

Сравнительный анализ заболеваемости бруцеллезом МРС и людей в некоторых районах Республики Таджикистан
(по данным Республиканского противоэпизоотического центра и Службы государственного санитарноэпидемиологического надзора)
Comparative analysis of morbidity by brucellosis of small cattle and people in some regions of the Republic of Tajikistan
(by data of the Republican antiepizootic center and Service of the State sanitationepidemiological surveillance)

Названия
районов
Исследованы
Число положительно реагирующих по годам

2000
2001
2002
2003
2004
2005
2006
2007
2008
2009
2010
2011
2012
2013
2014

Согдийская область

Гончи
Животные
82
50
40
439
415
21
18
38
18
64
64
89
95
67
88

Люди
81
25
37
93
125
81
48
22
41
19
66
78
45
15
14

Истаравшан
Животные
100
78
126
112
152
69
213
155
183
74
23
25
17
15
12

Люди
36
20
10
12
22
14
12
11
17
11
10
9
6
1
3

Шахристан
Животные
125
153
213
224
144
66
168
55
121
45
24
12
13
22
10

Люди
52
19
13
17
13
7
56
13
8
3
7
10
3
2
2

Хатлонская область

Вахш
Животные
206
43
56
133
98
107
74
31
17
32
31
28
20
44
31

Люди
5
6
19
13
36
41
27
37
34
17
17
31
8
1
2

Пандж
Животные
27
33
108
247
150
26
16
15
25
6
50
25
31
42
31

Люди
26
105
46
29
17
25
23
21
23
18
50
31
14
15
14

Муминабад
Животные
19
38
53
12
208
62
28
12
20
83
34
34
88
31
73

Люди
5
3
14
18
11
24
39
12
5
6
5
5
5
5
4

Васе
Животные
26
54
33
51
133
39
44
18
27
16
42
22
16
28
9

Люди
5
2
3
6
28
11
14
5
6
5
11
15
7
9
9

Хамадони
Животные
14
65
84
60
93
56
56
54
49
46
27
16
26
216
89

Люди
4
2
3
10
7
9
9
9
1
3
1
2
1
1
2

Фархар
Животные
18
35
49
139
104
74
45
25
18
20
27
23
59
71
51

Люди
1
5
12
12
18
15
10
11
9
9
13
3
6
3
6

Темурмалик
Животные
73
36
254
263
165
70
16
22
18
13
21
34
19
12
23

Люди
3
1
2
3
5
20
12
8
12
9
4
3
2
2
3

Дангара
Животные
58
68
61
125
77
62
41
51
21
28
25
58
41
40
42

Люди
34
13
8
52
31
15
32
16
8
12
5
3
3
2
3

Районы республиканского подчинения

Вахдат
Животные
15
13
19
75
44
34
25
36
91
39
29
63
71
57
48

Люди
11
4
128
40
20
53
67
34
60
17
5
21
8
13
10

Гиссар
Животные
21
15
51
141
173
201
143
206
64
48
14
37
101
77
7

Люди
4
4
3
12
35
33
27
15
4
4
1
3
15
2

Рудаки
Животные
13
29
25
94
24
15
15
26
24
10
136
23
56
268
58

Люди
3
3
5
27
20
46
64
158
111
108
141
55
13
10
9

Шахринав
Животные
84
222
256
48
119
103
78
69
91
79
28
24
88
57
13

Люди
5
3
3
5
7
9
10
10
8
5
4
13
7
22
31

Турсунзаде
Животные
145
49
118
189
464
304
308
218
146
132
11
14
12
22
9

Люди
5
4
7
10
18
11
25
16
5
8
5
5
5
3
3

Файзабад
Животные
19
74
86
68
15
22
11
24
35
20
5
57
69
48
207

Люди
56
38
15
5
48
6
8
3
16
10
19
63
42
55
105

Динамика заболеваемости бруцеллезом мелкого рогатого скота и людей в районах Республики Таджикистан
с высокими показателями инфицированности

Основные причины распространения болезни — неудовлетворительный учет, ввод в стадо неисследованного поголовья МРС, несанкционированные перемещения животных [1, 4]. Усугубляют ситуацию факты сокрытия владельцами информации о приобретении животных и непредставление поголовья
ветеринарным специалистам для проведения ветеринарных обработок и исследований, что приводит
к возникновению опасных заразных болезней животных и людей.

Б и б л и о г р а ф и я
1. Абсатиров, Г.Г. Роль ветеринарно-санитарных мероприятий в борьбе с бруцеллезом / Г.Г. Абсатиров // Ветеринария. — 2011. — №3(19). — С. 38–40.
2. Аракелян, П.К. Система контроля эпизоотического процесса бруцеллеза мелкого рогатого скота / П.К. Аракелян, Ощепков В.Г., Бондарева О.В., Барабанова Е.Б. и др. — Новосибирск: ИИРЦ ЦНСХБ СО РАСХН, 2010. — 22 с.
3. Ахмадбекова, С.Ш. Ситуация по бруцеллезу в Таджикистане остается тревожной / С.Ш. Ахмадбекова, Х.Х. Махмадуллаев // Материалы международного
рабочего совещания «Бруцеллез — пограничная инфекция животных и человека, требующая общих усилий разных стран», 2–3 июня 2008 г. — Серпухов, 2008. — С. 5.

4. Иванов, Н.П. Методологические основы борьбы с бруцеллезной инфекцией в
современных условиях / Н.П. Иванов // Ветеринария. — 2008. — №1. — С. 40–47.
5. Руденко, А.В. Анализ динамики распространения бруцеллеза в республике Калмыкия / А.В. Руденко, О.Б. Генджиева // Материалы VIII международной научнопрактической конференции «Проблемы сохранения и рационального использования биоразнообразия Прикаспия и сопредельных регионов». — Элиста,
2012. — С. 97–101.

R e f e r e n c e s
1. Absatirov G.G. Veterinarija, 2011, No. 3(19), P. 38–40. 
2. Arakeljan P.K., Oshhepkov V.G., Bondareva O.V., Barabanova E.B. et al. Sistema kontrolja jepizooticheskogo processa brucelleza melkogo rogatogo skota
(Control system of the epizootic process of brucellosis of small cattle). Novosibirsk, IIRC CNSHB SO RAAC, 2010, pp. 22.
3. Ahmadbekova S.Sh., Mahmadullaev H.H. Brucellez — pogranichnaja infekcija
zhivotnyh i cheloveka, trebujushhaja obshhih usilij raznyh stran (Brucellosis is the
boundary infection of animals and man, which requires the general efforts of
the different countries), 2–3 june 2008, Serpuhov. Proceedings of the International
Working Conference, P. 5.
4. Ivanov N.P. Veterinarija, 2008, No. 1, P. 40–47.
5. Rudenko A.V., Gendzhieva O.B. Problemy sohranenija i racional'nogo ispol'zovanija bioraznoobrazija Prikaspija i sopredel'nyh regionov (Problems of retention and economical utilization of biovariation of the Caspian region and contiguous
regions), Jelista, 2012. Proceedings of the International Scientific and Practical
Conference, P. 97–101.

РВЖ • СХЖ • № 1/2016
11

ABSTRACT
S.A. Rasulov1, D.M. Mirzoev1, X.O. Davlatov1, S.S. Ahmatbekova2

1 Veterinary Institute (734005, Tajikistan, Dushanbe, Kakhorov st., 43).

5 Service of the State sanitationepidemiological surveillance (734025, Tajikistan, Dushanbe, Chapaev st., 8).

Dynamics of Brucellosis in Small Cattle and People in Tajikistan Regions with High Indices of Morbidity. The paper presents the materials on the epizootic and epidemic situation in regions with high indices of brucellosis in small cattle and humans in Tajikistan.
Purpose. The aim was to study in the comparative aspect the dynamics of morbidity by brucellosis in small cattle and people in some regions with the high
indices of morbidity in 2000–2014.
Material and methods. The statistical data, obtained from the reports of republic laboratories, Republic antiepizootic center and the Services of state sanitaryepidemiological supervision were used in the work.
Conclusion. The analysis shows that in Sughd region after 15 years 6484 positively reacting animals were registered. In the portion of three regions with the
high indices 4337 small cattle positively react to brucellosis (67 %). Among positive reacting humans in the region the morbidity reaches 4457, and in three districts with the high indices — 1196 (27 %).
In 25 districts of Khatlon region it is revealed 8354 positively reacting animals, the highest indices are noted in 8 the regions (6720 of heads, 80 %). Among the
people this index reaches 4900 in the region, in 8 districts — 1571 (33 %).
In all regions of republican subordination for a period 15 of years in 13 districts 8344 positively reacting animals were registered. The highest indices are registered in 6 the regions — 7034 (84 %). Positively reacting people were 4936, in 6 regions with the high indices — 2297 (47 %).
Keywords: brucellosis, zoonotic diseases, epidemic, epizootic, infection, small cattle.

Рис. Динамика заболеваемости бруцеллезом МРС и людей по районам Таджикистана за период 2000–2014 гг.
Fig. Brucellosis dynamic of small cattle and people in districts of Tajikistan for the period 2000–2014.

Ключевые слова: бабезиоз, пироплазмоз, анаплазмоз,
крупный рогатый скот, Babesia bigemina (Piroplasma
bigeminum), Anaplasma marginale, морфология
Сокращения: ДНК — дезоксирибонуклеиновая кислота,
КРС — крупный рогатый скот, РНК — рибонуклеиновая кислота

Введение
Вопрос дифференциации возбудителей кровепаразитарных заболеваний в Кировской области, в частности бабезиоза (пироплазмоза) и анаплазмоза КРС, для ветеринарных специалистов животноводческих хозяйств и ветеринарных лабораторий в последние годы стал актуальным в связи с выбором специфического лечения.
Бабезиоз — облигатно трансмиссивная протозойная
болезнь, вызываемая беспигментными эндоглобулярными паразитами; характеризуется, в основном, повышением температуры тела, желтухой и гемоглобинурией [1].
Бабезиоз у КРС вызывают Bаbеsiа bigemina (син. Рiroplasma bigeminum), Babesia bovis (син. Francaiella colchica), Bаbеsiа divergens. Возбудителей бабезиоза дифференцируют между собой (табл.) по их форме, углу соединения
парных грушевидных форм, соотношению размера к радиусу эритроцита, локализации в эритроците при микроскопии мазков из крови или внутренних органов [2, 3].
В отличие от бабезиоза возбудителями анаплазмоза жвачных (Дьяконов Л.П., 1973) являются типичные прокариоты,
не имеющие «истинного» ядра и других органоидов, свойственных простейшим. От вирусов анаплазмы отличаются клеточной организацией и наличием ДНК и РНК [5].
Anaplasma marginale (Дзасохов Г.С., 1959) — паразит
диаметром от 0,3 до 0,8 мкм. Форма округлая, точковидная.
Возбудитель состоит из одного хроматинового вещества, окрашивается по Романовскому–Гимзе в темно-красный цвет.
В эритроците чаще располагается по краю. Число анаплазм
в одном эритроците составляет от 1 до 4. Зараженность
эритроцитов может достигать 50 % и более [1, 2] (табл.).

Цель исследования
Идентифицировать вид возбудителей бабезиоза и анаплазмоза КРС в условиях Кировской области.

Материалы и методы
Настоящая работа проводилась в 2005–2014 гг. на кафедре эпизоотологии, паразитологии и патологической анатомии (хирургии, акушерства и заразных болезней)
ФГБОУ ВПО Вятская ГСХА, на базе диагностического
отдела КОГКУ «Кировская областная ветеринарная лаборатория», в лаборатории протозоологии ГНУ ВИЭВ.
Для определения вида кровепаразита исследовали под
микроскопом мазки из периферической крови заболевших
животных, окрашенные по методу Романовского–Гимзы

УДК 636.22: 619: 616.993.1 (470.342)

Видовая идентификация кровепаразитов
крупного рогатого скота в Кировской области

ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ

12
РВЖ • СХЖ • № 1/2016

Х. Георгиу1, доктор биологических наук, заведующий лабораторией протозоологии (chgeorgiou@rambler.ru), 
О.О. Скорнякова2, кандидат ветеринарных наук, доцент кафедры хирургии, акушерства и заразных болезней (olymur@yandex.ru).

1 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Всероссийский научноисследовательский институт экспериментальной ветеринарии

имени Я.Р. Коваленко» (ВИЭВ) (109428, Москва, Рязанский проспект, д. 24, кор. 1).

2 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Вятская ГСХА» (610017, Киров, Октябрьский проспект, д. 133).

Реферат
Вопрос дифференциации возбудителей кровепаразитарных заболеваний в Кировской области, в частности бабезиоза
(пироплазмоза) и анаплазмоза КРС, для ветеринарных специалистов животноводческих хозяйств и ветеринарных
лабораторий в последние годы стал актуальным в связи с выбором специфического лечения.
Цель исследования. Изучить видовой состав возбудителей кровепаразитарных заболеваний КРС в Кировской области. 
Материалы и методы. Период исследований составил 10 лет. Для определения вида кровепаразита исследовали
под микроскопом мазки из периферической крови заболевших животных, окрашенные по методу Романовского–Гимзы
с использованием буферного раствора. Микроскопия выполнена на бинокулярном микроскопе «Микромед-1»; для
морфометрической оценки возбудителя использовали цифровую камеру (видео-окуляр) серии Toup Cam 3.1 MP и
программное обеспечение анализа изображений ToupView.
Заключение. В Кировской области бабезиоз КРС официально регистрируется с 2006 г., анаплазмоз — с 2005 г. Впервые
на территории Кировской области был идентифицирован возбудитель бабезиоза (пироплазмоза) КРС — Babesia
bigemina (Piroplasma bigeminum) (Smith et Kilborne, 1893) и возбудитель анаплазмоза КРС — Anaplasma marginale
(Theiler, 1910). Обнаруженные возбудители ничем не отличаются от описанных в литературе паразитов.

Рис. 2. Различная локализация Anaplasma marginale в эритроцитах крови
КРС (ок. 10, об. 100)
Fig. 2. The different position Anaplasma marginale in the blood of cattle
(eyepiece 10, lens 100)

Рис. 1. 
Различные формы Babesia bigemina (Piroplasma bigeminum) в крови
КРС, ок. 10, об. 100
Fig. 1. The different forms Babesia
bigemina (Piroplasma bigeminum)
in the blood of cattle (eyepiece 10,
lens 100)

Паразитология Видовая идентификация кровепаразитов крупного рогатого скота в Кировской области

с использованием буферного раствора. Микроскопия выполнена на бинокулярном микроскопе «Микромед-1»; для
морфометрической оценки возбудителя использовали цифровую камеру (видео-окуляр) серии Toup Cam 3.1 MP и
программное обеспечение анализа изображений ToupView.

Результаты и обсуждение
В Кировской области бабезиоз КРС впервые был зарегистрирован в 2006 г. в Верхошижемском районе в ОАО «Агрофирма Среднеивкино». Заболели три коровы с летальным исходом. В 2008 г. в Советском районе (СПК СА
«Мушинский») заболели 5 коров, из них три животных
с летальным исходом, а в 2009 г. в ОАО «Мокинское»
выявлено три случая бабезиоза. В 2010 г. число заболевших бабезиозом животных в Советском районе выросло в 3 раза (в СХПК «Лошкаринский» заболело 6 голов,
в частном секторе д. Кочки — 3 коровы), а в 2012 г. —
в 1,3 раза по сравнению с 2010 г. (заболело с летальным
исходом 12 коров в Кирово-Чепецком районе (ООО «Агрофирма «Фатеево») и в Богородском районе (колхоз
«Чирковский») Кировской области) [4, 5]. В 2013 г. бабезиоз был обнаружен в Верхошижемском районе в СХПК
«Звезда» у двух коров, одна из которых принадлежала частным владельцам, но выпасалась вместе со стадом
хозяйства. Оба случая с летальным исходом [4].
При микроскопии мазков из крови КРС в эритроцитах
были обнаружены преимущественно парной грушевидной
формы паразиты, соединенные тонкими концами под острым углом, что является характерным диагностическим
признаком паразита Bаbеsiа bigemina (Рiroplasma bigeminum). Длина парных грушевидных форм была больше
радиуса эритроцита, расположение в эритроците — в центре (рис. 1). Число паразитов в одном эритроците от одного до четырех. Размер парных грушевидных 2…3 мкм.
Анаплазмоз КРС регистрируется в Кировской области
с 2005 г. [3]. В ходе исследований в категорию стационарно
неблагополучных по анаплазмозу были отнесены три южных
района области — Вятско-Полянский, Малмыжский
и Кильмезский. Средний процент зараженности составил
80,56 % [5].
При микроскопии в периферической крови КРС, спонтанно зараженных анаплазмозом, обнаруживались еди
ничные точковидной формы паразиты, расположенные
ближе к периферии эритроцита и окрашенные в темно-красный цвет (рис. 2). Паразитемия в среднем составила 5…6 (максимум 7…8) анаплазм в 100 эритроцитах.

Заключение
Исходя из данных морфологических особенностей обнаруженных нами паразитов в крови КРС, можно заключить, что возбудителем бабезиоза КРС в Кировской области является внутриэритроцитарный паразит Babesia bigemina (Piroplasma bigeminum) (Smith et Kilborne, 1893), относящийся к роду Babesia, а возбудителем анаплазмоза —
Anaplasma marginale (Theiler, 1910), относящийся к роду Anaplasma. Обнаруженные нами возбудители ничем
не отличались от описанных в литературе паразитов.

Авторы приносят глубокую благодарность заведующему диагностическим отделом КОГКУ «Кировская областная ветлаборатория» М.Н. Харламовой за предоставленный ценный научный материал, необходимый для изучения эпизоотологических особенностей кровепаразитарных болезней крупного рогатого скота в
Кировской области и проведения занятий по протозоологии на очном и заочном отделениях факультета ветеринарной медицины
Вятской ГСХА.

Б и б л и о г р а ф и я
1. Ахмадов Н.А. Диагностика, меры борьбы с бабезиозом и анаплазмозом крупного рогатого скота в Республике Таджикистан / Н.А. Ахмадов: автореф. дис... канд. биол. наук. Защ.
02.04. 2013. М.: 11-й Формат, 2013. — 27 с.
2. Георгиу, Х. Диагностика пироплазмидозов крупного рогатого скота // Труды ВИЭВ. —
2010. — Т. 76. — С. 138–142.
3. Методические указания по лабораторной диагностике пироплазмидозов животных. — М.,
2000. — 4с.
4. Сведения о лабораторно-диагностических исследованиях, проведенных лабораториями
Кировской области за 2005-14гг.: Отчеты КОГКУ «Кировская областная ветлаборатория». — Киров, 2005, 2006, 2007, 2008, 2009, 2010, 2011, 2012, 2013, 2014.
5. Скорнякова, О.О. Эпизоотологический мониторинг и динамика сезонной восприимчивости крупного рогатого скота к бабезиозу и анаплазмозу / О.О. Скорнякова // Российский паразитол. журнал. — 2014. — № 4. — С. 34–40.

R e f e r e n c e s
1. Akhmadov N.A. Diagnostics and control of babesiosis and anaplasmosis in cattle in the Republic of Tajikistan: Extended abstract of candidate’s thesis, Moscow, 11th Format, 2013, 27 p.
2. Georgiou Ch. Diagnostics of piroplasmidosis in cattle // Proceedings VIEV. М., 2010. V. 76.
pp.138–142.
3. Methodological guidelines on laboratory diagnostics of piroplasmoses in animals, Moscow, 2000, 4 p.
4. Data on laboratory diagnostics conducted by laboratories in Kirov Region in 2005-2014: Report by
Kirov Regional Veterinary Laboratory. Kirov, 2005, 2006, 2007, 2008, 2009, 2010, 2011, 2012, 2013, 2014.
5. Skornyakova O.O. Epizootological monitoring and dynamics of seasonal susceptibility of cattle
to babesiosis and anaplasmosis// Russian Parasitol. Journal., 2014. No. 4. pp. 34–40.

РВЖ • СХЖ • № 1/2016
13

Дифференциальная диагностика возбудителей бабезиозов и анаплазмоза КРС [3]
Differencial diagnostics of babesiosis and anaplasmosis pathogens in cattle [3]

Возбудитель
Форма
Размер парных грушевидных и
точковидных форм к радиусу эритроцита

Угол соединения
парных форм
Локализация

Babesia bovis
Кольцевидная, амебовидная, грушевидная
Равны
Тупой
В центре эритроцитов

Babesia bigemina
Овальная, кольцевидная, круглая,
амебовидная, грушевидная
Больше
Острый
То же

Bаbеsiа divergens
Круглая, амебовидная, грушевидная
Меньше
Острый
По периферии эритроцитов

Anaplasma marginale
Точковидная, округлая
Меньше
–
По краям эритроцитов

ABSTRACT
Ch. Georgiou1, O.O. Skornyakova2

1 Y.R. Kovalenko’s AllRussian Research Institute for Experimental Veterinary Medicine of Federal agency for scientific institutes of Russian Federation (VIEV) (109428, Moscow, Ryazansky pr., 241).

5 Vyatka State Agricultural Academy (610017, Kirov, Oktyabrsky Prospect, 133).

Species Identification of Blood Parasites of Cattle in the Kirov Region. A question of the differentiation of the hematozoon diseases agents in the
Kirovskaya district, in particular babesiosis (piroplasmosis) and anaplasmosis of cattle, for the veterinary specialists of cattlebreeding economies and veterinary laboratories in recent years became urgent in connection with the selection of specific treatment.
Purpose. The aim was to study the species composition of pathogens of hematozoon diseases in cattle in the Kirov region. 
Materials and methods.The investigation has taken 10 years. To determine the species of the blood parasite the smears from peripheral blood of sick animals were examined under microscope. The smears were stained by RomanovskyGiemsa procedure by using buffer solution. The microscopial examination was performed with binocular
microscope “Micromed1”. Digital camera Toup Cam 3.1 MP (video ocular) and image analysis software ToupView were used for morphometric analysis of the pathogen. 
Conclusion. In Kirov region babesiosis in cattle has been officially registered since 2006, anaplasmosis — since 2005. The pathogen of babesiosis (piroplasmosis) of
cattle — Babesia bigemina (Piroplasma bigeminum) (Smith et Kilborne, 1893) and the pathogen of anaplasmosis of cattle — Anaplasma marginale (Theiler, 1910) have
been identified for the first time on the territory of Kirov region. The pathogens discovered do not differ from those described earlier.
Keywords: babesiosis, piroplasmosis, anaplasmosis, cattle, Babesia bigemina (Piroplasma bigeminum), Anaplasma marginale, morphology.