Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные, 2015, № 2

ISSN 5181501959

сельскохозяйственные
животные

2

2015
ÐÎÑÑÈÉÑÊÈÉ
ÂÅÒÅÐÈÍÀÐÍÛÉ
ÆÓÐÍÀË

Физиология

Морфология

Акушерство/гинекология/
биотехника размножения

Паразитология

Лабораторная диагностика

Современные фармакои биопрепараты

РВЖ • СХЖ • № 2/2015
3

Генетика Ðîññèéñêèé 
Âåòåðèíàðíûé 
Æóðíàë
Russian Veterinary Journal
2/2015

Оригинальные статьи

Физиология

Романенко Л.В., Волгин В.И., Федорова З.Л., Корочкина Е.А.
Влияние генетических и паратипических факторов 
на метаболизм черно-пестрых голштинских коров . . . . . . . . . . . . . . . 5

Сухаренко Е.В., Прищепа И.В., Недзвецкий В.С., Максимов В.И.
Влияние низких доз ионов Pb2+ на состояние цитоскелета астроцитов 
мозга крыс в раннем постнатальном периоде . . . . . . . . . . . . . . . . . . 10

Морфология

Антипов А.А., Дельцов А.А.
Влияние лекарственных препаратов с различной химической
природой соединений железа на морфологию почек крыс . . . . . . . . 14

Слесаренко Н.А., Степанишин В.В.
Морфоадаптивные преобразования кишечного канала соболя
клеточного содержания при использовании в рационе пробиотика 
на основе штамма Lactobacillus paracasei . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 18

Акушерство/гинекология/биотехника размножения

Семина Л.К., Ворошилова Т.Г., Ремизова Е.В. 
Чувствительность микрофлоры, выделенной из секрета вымени больных
маститом коров, к препаратам пролонгированного действия . . . . . . . . 22

Лабораторная диагностика

Андрейчук Д.Б., Осипова О.С., Чвала И.А., 
Колотилов А.Н., Ирза В.Н., Перевозчикова Н.А.
Разработка нового метода выявления генома вируса
энцефаломиелита птиц на основе ПЦР-РВ с зондом Tаq-Mаn . . . . . . 24

Паразитология

Сибен А.Н., Лещёв М.В., Гаричкин А.А.
Эпизоотологические особенности инвазированности 
северных оленей имагинальными цестодозами в хозяйствах 
Ямало-Ненецкого автономного округа . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 28

Георгиу Х.
Трипаносомные положительные 
и отрицательные сыворотки лошадей . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 30

Лекции

Георгиу Х., Белименко В.В. 
Бабезиоз крупного рогатого скота, вызываемый Babesia bovis . . . . . 32

Современные фармако- и биопрепараты

Гусева И.И., Васильев С.С.
Технологическая приемлемость некоторых антибактериальных
препаратов при совместном использовании с вакциной против 
болезни Марека для цыплят-бройлеров . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 34

Данилевская Н.В., Дуади Яссер
Сравнительная эффективность микродисперсной водорастворимой 
и сорбированной на отрубях добавок на основе лакто-, бифидо- 
и энтеробактерий при откорме бройлеров . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 36

Санин А.В., Ожерелков С.В., Сосновская О.Ю., 
Наровлянский А.Н., Пронин А.В.
Протективный эффект Гамавита при острой интоксикации, 
вызванной четыреххлористым углеродом в эксперименте . . . . . . . . 40

Сафиуллин Р.Т., Новиков П.В., Нуртдинова Т.А., 
Леонтьева О.В., Кудревич Е.Е., Купырева В.А.
Эффективность комплексной инсектицидной программы 
против имаго жука-хрущака и его личинок в условиях 
птицефабрики при напольном содержании цыплят-бройлеров . . . . . 43

Original articles

Physiology

Romanenko L.V., Volgin V.I., Fedorova Z.L., Korochkina E.A.
Influence of the Genetic and Paratypic Factors on the Metabolism 
of White and Black Holstein Cows . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5

Sukharenko H.V., Prishchepa I.V., Nedzvetsky V.S., Maksimov V.I.
Rat Brain Cytoskeleton of Astrocytes State in the Early Postnatal
Development Following Low Dose Pb2+ Ions Exposure . . . . . . . . . . . . . . 10

Morphology

Antipov A.A., Deltsov A.A.
Effects of Medications with Different Chemical Nature of the Compound 
of Iron on the Rat Kidney Morphology . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 14

Slesarenko N.A., Stepanishin V.V.
Influence of the Diet including Lactobacillus paracasei containing 
Probiotic upon Morphological and Adaptive Transformations 
in the Intestinal Canal of the Cage Housed Sable . . . . . . . . . . . . . . . . . . 18

Obstetrics/Gynaecology/Biotechnics of the Reproduction

Semina L.K. , Voroshilova T.G., Remizova E.V. 
Sensitivity of the Microflora Isolated from the Udder Secret of the Cows 
with Mastitis to LongActing Drugs . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 22

Laboratory diagnostics

Andreychuk D.B., Osipova O.S., Chvala I.A., 
Kolotilov A.N., Irza V.N., Perevozchikova N.A.
Development of a New Method Based on Real-Time RT-PCR with Taq-Man
Probe for Avian Encephalomyelitis Virus Genome Detection . . . . . . . . . . 24

Parasitology

Siben A.N., Leschev M.V., Garichkin A.A.
Epidemiological Features of Reindeer Invasion 
by Imaginal Cestodes in the Farms 
of YamaloNenets Autonomous Area . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 28

Georgiou Ch.
Tripanosomosis Positive 
and Negative Sera for Serological Tests . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 30

Lectures

Georgiou Ch., Belimenko V.V.  
Bovine Babesiosis Сaused by Babesia bovis . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 32

Modern pharmacological drugs & biopreparations

Guseva I.I., Vasilyev S.S.
Technological acceptability 
of some antibacterial drugs combined 
with Marek's diseasevaccine in broilers . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 34

Danylevskaya N.V., Douadi Yasser
Efficacy of Microdisperse Water-Soluble and Sorbi-Oriented 
on the Bran Supplementation on the Basis of Lactobacillus, 
Bifidum and Enterobacteria for the Fattening of Broilers . . . . . . . . . . . . . 36

Sanin A.V., Ozherelkov S.V., Sosnovskaya O.Y., 
Narovlyansky A.N., Pronin A.V.
Protective Effect of Gamavit against Acute Intoxication Caused 
by Carbon Tetrachloride in the Experiment . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 40

Safiullin R.T., Novikov P.V., Nurtdinova T.A.,
Leontyeva O.V., Kudrevich E.E., Kupyreva V.A.
Effectiveness of Сomplex Insecticidal Program 
against Adult Litter Beetle and Beetle Larvae in Poultry House 
at the Floor Maintenance of Broiler Chickens . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 43

Содержание/Contents

Научнопрактический журнал
Издается с марта 2005 г.

«Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные
животные» входит в Перечень ВАК ведущих рецензируемых научных журналов и изданий, в которых должны быть
опубликованы основные научные результаты диссертации
на соискание ученой степени доктора и кандидата наук
(по зоотехническим и ветеринарным специальностям,
по биологическим наукам)

Учредитель: ООО «Издательство "Логос Пресс"»
Директор М.В. Быльков 
Руководитель проекта И.М. Шугурова, к.б.н.
Руководитель отдела маркетинга Е.В. Лебедева
Менеджер по маркетингу М.А. Шугуров
Компьютерный дизайн Я.В. Быстрова

Адрес редакции: 127055, Москва, а/я 9
Email: rakitskaya.vera@yandex.ru, rvj@logospress.ru, info@logospress.ru
Сайт: http://logospress.ru
Тел.: +7/495/2204816, факс: +7/495/6898516

Свидетельство о регистрации СМИ:
ПИ № ФС7757776 от 18.04.2014

Оформление подписки
Каталог «Почта россии» — 12594 (на год)

Воспроизведение материалов в любом виде, включая электронный, возможно только по письменному согласованию с издательством. Редакция
не несет ответственности за содержание рекламных материалов.
Мнение редакции не всегда совпадает с мнением авторов статей 

Рукописи, принятые на рассмотрение, редакция не возвращает.

Согласно рекомендациям Роскомнадзора выпуск и распространение издания допускается без размещения знака информационной продукции.

Главный редактор
Ф.И. Василевич, докт. вет. наук, академик РАН, проф., ректор ФГБОУ МГАВМиБ

Выпускающий редактор
В.В. Ракитская (rakitskaya.vera@yandex.ru)

Редакционная коллегия
Р.М. Акбаев, канд. вет наук, эксперт в области паразитологии (ФГБОУ МГАВМиБ)
Н.А. Балакирев, докт. с.х. наук, академик РАН, проф., проректор по научной работе ФГБОУ МГАВМиБ
Н.П. Буряков, докт. биол. наук, проф. декан факультета ВЗО и ДО РГАУ–МСХА им. К.А. Тимирязева
О.А. Верховский, докт. биол. наук, проф., президент АНО «НИИ ДПБ»
Н.А. Власов, докт. биол. наук, проф. (Федеральная служба по ветеринарному и фитосанитарному
надзору)
Л.И. Грищенко, докт. вет. наук, эксперт в области ихтиопатологии, ФГБОУ МГАВМиБ
Н.В. Данилевская, докт. биол. наук, профессор, зав. кафедрой фармакологии и токсикологии ФГБОУ
МГАВМиБ
Г.П. Дюльгер, докт. вет наук, зав. кафедрой морфологии и ветеринарии факультета зоотехнии и
биологии (ФГБОУ ВП РГАУ–МСХА им. К.А. Тимирязева)
А.В.Жаров, докт. вет. наук, эксперт в области патологической анатомии (ФГБОУ МГАВМиБ)
С.Ю. Зайцев, докт. биол. наук, докт. хим. наук, проф., зав. кафедрой химии имени профессоров
С.И. Афонского, А.Г. Малахова (ФГБОУ МГАВМиБ)
В.И. Максимов, докт. биол. наук, проф. проректор Учебнометодического объединения вузов РФ
по образованию в области зоотехнии и ветеринарии, эксперт в области физиологии (ФГБОУ МГАВМиБ)
А.В. Пронин, докт. биол. наук, проф. (Минздрав РФ)
В.В. Пронин, докт. биол. наук, проф., зав. кафедрой морфологии, физиологии и ветсанэкспертизы
(Ивановская ГСХА имени академика Д.К. Беляева)
А.В. Санин, докт. биол. наук, проф., руководитель лаборатории клеточного иммунитета НИИЭМ
им. Н.Ф. Гамалеи
А.А. Сидорчук, докт. вет. наук, проф., зав. кафедрой эпизоотологии и инфекционных болезней ФГБОУ
МГАВМиБ
Г.В. Сноз, докт. вет. наук, проф., эксперт в области диагностики болезней и терапии животных (ФГБОУ
МГАВМиБ)
Л.Ф. Сотникова, докт. вет. наук, проф., эксперт в области офтальмологии, зав. кафедрой биологии
и патологии мелких домашних, лабораторных и экзотических животных ФГБОУ МГАВМиБ
Ю.Н. Федоров, докт. биол. наук, эксперт в области иммунологии (ВАК Минобразования и науки
РФ, член бюро Отделения ветеринарной медицины РАН) 
К.П. Юров, доктор ветеринарных наук, заслуженный деятель науки РФ, профессор, заведующий
лабораторией вирусологии (ВИЭВ)

Журнал выпускается при участии:
Учебнометодического объединения 
высших учебных заведений 
Российской Федерации по образованию 
в области зоотехники и ветеринарии

Федеральной службы по ветеринарному 
и фитосанитарному надзору 
(Россельхознадзор)

Департамента ветеринарии 
Министерства сельского хозяйства РФ

ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ

РВЖ • СХЖ • № 2/2015
5

Ключевые слова: биохимия крови и молока, высокопродуктивные коровы, генетический потенциал, кормовые рационы, сезоны года, фазы лактации

Введение
В результате целенаправленной племенной работы и использования ценного мирового племенного генофонда
голштинской породы в Российской Федерации создан
ряд стад крупного рогатого скота с высоким генетическим потенциалом молочной продуктивности [5].
Его реализация во многом зависит от полноценности кормления животных, особенно сбалансированности рационов по энергии. Из-за нарушения баланса энергии не только снижается молочная продуктивность, но
и изменяется обмен веществ: возникают кетозы и другие заболевания. Есть сведения, что генетический фактор имеет определяющее значение в патогенетическом
начале развития кетоза [16]. Некоторые авторы в своих исследованиях указывают на необходимость ведения племенного отбора по признаку предрасположенности к ацетонемии [7]. Следует отметить, что особенности энергетического обмена и степень устойчивости к дисбалансу энергии у высокопродуктивных
племенных коров голштинского происхождения недостаточно изучены, особенно в такой важный период, как
в первую фазу лактации (период раздоя) [2, 4].
На сегодняшний день имеется незначительное число фактов, свидетельствующих о влиянии генетических и паратипичесих факторов на энергетический обмен и как следствие — на реализацию генетического
потенциала молочной продуктивности. По вопросу энергетического питания высокопродуктивных племенных
коров в первую фазу лактации и его влияния на последующую молочную продуктивность, состояние обменных процессов и на показатели воспроизводства существуют различные мнения [3, 6, 10, 14].

Цель исследования
Изучить влияние генетических и паратипических
факторов на обмен веществ племенных коров голштинского происхождения с целью разработки системы управления процессами реализации генотипа по
молочной продуктивности и воспроизводительной способности.

Материалы и методы
Для проведения опыта было отобрано 75 дочерей от
5 быков различных линий (Вис Айдиал, Рефлекшн
Соверинг, Монтвик Чифтейн). Их удой за предыдущие 305 дней лактации колебался по группам от 6147
до 7539 кг молока с процентом жира 3,72…3,80.
По 75 дочерям этих быков учитывали молочную продуктивность путем ежедекадных контрольных доек.
Были изучены условия кормления коров, находящихся в различном физиологическом состоянии. При выполнении работ по анализу кормов пользовались методическими руководствами и пособиями [1, 7…13].
Сухое вещество кормов определяли посредством весового метода, азот — по Къельдалю, сырой жир —
по С.В. Рушковскому, сырую клетчатку — по методу
Кюршнера—Ганека в модификации Коган, сахар — 
посредством ортотолуидинового метода, сырую
золу — посредством озоления, кальций — комплексометрически, фосфор — колометрически, медь 
и цинк — по Ю.К. Оллю, кобальт — по М.Л. Цапу,
йод — посредством церий-арсенитного метода, каротин — по И.К. Мурри.
О состоянии обменных процессов и полноценности кормления судили по биохимическим показателям
крови и молока. В крови определяли показатели, характеризующие состояние белкового обмена (общий белок, фракции белка — альбумин, глобулин; белковый
индекс и мочевину); энергетического и углеводно-жирового (глюкоза, кетоновые тела); минерального и витаминного (кальций, неорганический фосфор и их соотношение, общий йод и резервная щелочность, каротин).
Биохимические исследования крови и молока, зоотехнический анализ кормов выполняли в лаборатории
кормления высокопродуктивных племенных животных
согласно общепринятым методикам. Кровь и молоко
на исследование брали у молочных коров-дочерей 5 быков-производителей голштинской породы (по 6 голов от
каждого быка), всего 30 голов.

Результаты и обсуждение
Подопытные коровы находились в одинаковых условиях кормления и содержания. Рационы приведены
в таблицах 1 и 2.

УДК 636.20./28.087

Влияние генетических и паратипических
факторов на метаболизм черно-пестрых
голштинских коров

Л.В. Романенко, доктор сельскохозяйственных наук, В.И. Волгин, доктор сельскохозяйственных наук, 
З.Л. Федорова, кандидат сельскохозяйственных наук, Е.А. Корочкина, кандидат ветеринарных наук (e.kora@mail.ru)
Федеральное государственное бюджетное учреждение «Всероссийский научноисследовательский институт генетики и разведения
сельскохозяйственных животных» (СанктПетербург).

Целью настоящих исследований явилось изучение влияния кормления и генетических факторов на реализацию
генетического потенциала высокопродуктивных голштинских черно-пестрых коров. Результаты проведенных
исследований указывают на влияние генетических факторов на энергетический, углеводный и жировой обмены
веществ.

Физиология Л.В. Романенко, В.И. Волгин, З.Л. Федорова, Е.А. Корочкина

6
РВЖ • СХЖ • № 2/2015

Несмотря на принятые меры, рационы подопытных
коров в первую половину лактации были дефицитны по
протеину, сахару и каротину.
Исследования показали, что коэффициент изменчивости содержания глюкозы в крови подопытных коров
составил в среднем в зимне-весенний период 21,7 %
(20,7…23,9), летом — 20,1 % (18,4…23,9), осенью —
12,3% (7,2…22,4). Изменчивость содержания кетоновых тел была значительно ниже. Коэффициенты изменчивости по отдельным периодам года были,
соответственно: 7,5 % (5,9…10,0), 4,7 % (4,5…7,7) и
8,7 % (6,0…12,9).
По уровню глюкозы в крови дочери отдельных быков-производителей различались по периодам лактации
(табл. 3). В период раздоя (зимне-весенний период) наибольшее количество глюкозы отмечено у дочерей
быка 377243. Они превосходили дочерей быка 58 по значению этого показателя на 26,8 % (р <0,01) и быка 17
на 20,2 % (р<0,05).
В осенний период (вторая половина лактации), как
и в зимне-весенний, дочери быка-производителя 377243
отличались от дочерей других быков-производителей

более высоким содержанием в крови глюкозы (на
25,4…37,8 %). Следует отметить, что наименьшее содержание глюкозы в крови у подопытных коров наблюдали в начале (I фаза) и середине лактации. Во второй
половине лактации оно заметно возросло. В целом концентрация глюкозы в крови у подопытных животных
по периодам года и фазам лактации была ниже референтных физиологических значений (40…60 мг%).
Это было вызвано дефицитом сахара в рационах
(60,1…80,8 % нормы) и снижением усвоения энергии
из рационов, состоящих из объемистых кормов (сена,
силоса и сенажа) среднего качества.

1. Среднесуточные рационы подопытных коров 
в зимневесенний период

Корма и подкормки, кг
Рацион для коров с удоем, кг

20…24
25…29

Сено разнотравное
6,5
6,5

Силос злаковых трав
15,0
15,0

Свекла кормовая
5,0
7,0

Жом сухой
0,7
1,0

Комбикорм
8,0
10,5

Премикс по рецепту ФГБНУ ВНИИГРЖ
0,075
0,075

Поваренная соль
0,12
0,12

В рационе содержится

ЭКЕ
19,8
23,4

Обменной энергии, МДж
197,7
233,9

Сухого вещества, кг
20,1
23,2

Сырого протеина, г
2110
2494

Переваримого протеина, г
1488
1782

Сырой клетчатки, г
4813
5151

Крахмала, г
2705
3589

Сахара, г
1030
1256

Сырого жира, г
435
492

Кальция, г
144
177

Фосфора, г
76
93

Магния, г
46
51

Калия, г
288
309

Серы, г
44
50

Железа, мг
3175
3524

Цинка, мг
975
1105

Меди, мг
188
219

Кобальта, мг
11,5
13,4

Марганца, мг
1087
1246

Йода, мг
14,3
15,9

Каротина, мг
419
435

Витамин Д, тыс. МЕ
17,1
20,1

Витамина Е, мг
1401
1507

2. Рацион подопытных коров в пастбищный период

Корма и подкормки, кг
Удой 22…26 кг

Трава пастбищная
30,0

Зеленая подкормка (овес+горох, разнотравные)
10,0

Комбикорм
10,0

Поваренная соль
0,12

В рационе содержится

ЭКЕ
20,9

Обменной энергии, МДж
208,7

Сухого вещества, кг
18,2

Сырого протеина, г
2706

Переваримого протеина, г
1970

Сырой клетчатки, г
3006

Крахмала, г
3452

Сахара, г
1452

Сырого жира, г
688

Кальция, г
138

Фосфора, г
104

Магния, г
35

Калия, г
172

Серы, г
38

Железа, мг
2425

Меди, мг
183

Цинка, мг
496

Кобальта, мг
15,7

Марганца, мг
980

Йода, мг
11,2

Каротина, мг
1315

Витамина Е, мг
2245

3. Содержание глюкозы в крови лактирующих подопытных коров в различные периоды года

Дочери
быков
n
Статистические
показатели

Зимневесенний
Летний
Осенний
За весь период года

Суточный удой, кг
Глюкоза, мг%
Суточный удой, кг
Глюкоза, мг%
Суточный удой, кг
Глюкоза, мг%
Суточный удой, кг
Глюкоза, мг%

243
6
М±m
23,5±1,0
29,7±2,5
23,0±0,8
26,2±2,6
18,7±1,0
36,6±1,5
21,5±1,4
30,8±3,1

Сv,%
–
20,70
–
23,90
–
8,70
–
17,76

377243
6
М±m
31,8±1,6
35,0±3,3
26,8±1,1
30,0±4,0
20,1±1,1
45,9±4,1
23,6±2,6
36,9±4,7

Сv,% 
–
23,19
– 
18,50
–
22,40
–
21,30

58
6
М±m
29,0±1,9
27,6±2,9
21,3±2,0
28,8±2,2
19,3±1,8
36,1±1,1
23,9±2,6
30,9±2,6

Сv,% 
–
23,60
– 
18,40
–
7,16
–
16,38

17
6
М±m
27,4±1,8
29,1±1,6
22,3±1,9
29,7±2,2
18,0±1,2
33,7±0,4
23,0±1,9
30,8±1,4

Сv,% 
–
23,90
– 
22,10
–
15,90
–
20,60

172
6
М±m
29,3±1,0
31,9±2,9
24,5±2,1
30,6±3,6
21,9±1,1
33,3±1,8
24,8±2,9
31,9±0,8

Сv,% 
–
21,70
– 
20,14
–
12,30
–
17,90

4. Содержание кетоновых тел в крови лактирующих коров, 
мг%, по периодам года

Дочери 
быков
n
Статистические
показатели

Зимневесенний
Летний
Осенний

За весь
период 
года

243
6
М±m
5,43±0,22* 3,59±0,08**
6,27±0,31
5,10±0,79

Сv,%
10,00
5,59
12,20
9,26

377243
6
М±m
5,47±1,40*
3,99±0,06
6,59±0,16
5,35±0,75

Сv,% 
6,62
4,51
6,00
5,71

58
6
М±m
5,62±0,22
3,74±0,11
6,55±0,37
5,30±0,82

Сv,% 
9,95
7,74
12,90
9,89

17
6
М±m
5,72±0,13
3,96±0,07
6,57±0,16
5,42±0,61

Сv,% 
5,92
4,90
6,01
5,61

172
6
М±m
6,03±0,14*
4,0±0,07**
6,61±0,20
5,54±0,79

Сv,% 
6,16
4,63
7,45
6,08

В целом по
всем быкам

М±m
5,67±0,08
3,85±0,05
6,52±0,10
5,34±0,78

Сv,% 
7,53
4,74
8,70
7,00

Примечание. * р<0,95; ** р<0,99.

Влияние генетических и паратипических факторов на метаболизм черно-пестрых голштинских коров

РВЖ • СХЖ • № 2/2015
7

По содержанию кетоновых тел в крови дочери быкапроизводителя 172 достоверно превосходили дочерей
других быков-производителей в период раздоя (зимне-весенний период) на 5,4…11,0 % (р<0,05) и в середине лактации (летний период) — на 6,9…11,4 %
(р<0,01…0,001). Во второй половине лактации (осенний
период) у них также наблюдали тенденцию к более 
высокому уровню кетоновых тел в крови, но она была статистически недостоверна (табл. 4). Концентрация
кетоновых тел в крови подопытных коров заметно изменялась по периодам года и фазам лактации. Она
уменьшалась летом (середина лактации) и возрастала в
осенний период (вторая половина) лактации (выше верхней границы физиологической нормы от 1,0 до 6,0 мг%).
Содержание общего белка в сыворотке крови дочерей отдельных быков-производителей различалось незначительно (табл. 5).
Так, дочери быка 243 в зимне-весенний период статистически достоверно превосходили по этому показателю дочерей быка 377243 на 9,0 % (р<0,001), быка 58 — на 5,2 % (р<0,05) и быка 17 — на 10,0 % (р<0,01).
Осенью наименьшее количество общего белка в сыворотке крови отмечено у дочерей быка 17. По этому
показателю они статистически достоверно отличались
от дочерей быков 58 и 172.
В целом в крови подопытных коров во все периоды
года было пониженное содержание общего белка, по

сравнению с физиологической нормой (7…9 г%), вызванное систематическим дефицитом сырого протеина в рационах, особенно в зимне-весенний период
(77,6…83,3% нормы) (табл. 6).
В концентрации каротина в сыворотке крови у дочерей разных быков-производителей статистически достоверных различий не отмечено (табл. 6).
В зимне-весенний период у дочерей быков 58 и 172
этот показатель был ниже физиологической нормы (норма для стойлового периода — не ниже 0,4 мг%), что связано с недостатком его в рационах (42,6…51,4% нормы)
(табл. 7).
Летом, несмотря на достаточное содержание каротина в рационах, концентрация его в крови была
ниже физиологической нормы для пастбищного периода (норма не ниже 0,9 мг%) (табл. 8). Вероятно,
это обусловлено пониженным его усвоением из зеленых кормов из-за дефицита сахара в рационах (80,8 %
нормы).
В осенний период уровень каротина в сыворотке крови у подопытных коров был на нижней границе физиологической нормы (табл. 9).
Соотношение белковых фракций — альбумина и глобулина, содержание кальция и неорганического фосфора в сыворотке крови коров не отклонялось от референтных физиологических значений.

5. Биохимические показатели крови и молока подопытных коров (пастбищный период)

Инвентарный
номер быка

Общий
белок,
г%

Альбумин, 
%

Глобулин, 
%
А/Г
Глюкоза,
мг/%

Кальций,
мг%

Неорганический
фосфор, 
мг%

Са/Р
Каротин,
мг%

Кетоновые тела, 
мг%

В крови
молоке

377243
5,57±0,29
2,22±0,13
3,28±0,36
0,71±0,11
36,94±4,70
12,59±0,35
5,87±0,42
2,12±0,12
0,621±0,15
5,35±0,75
3,68±0,87

172
5,92±0,28
2,44±0,02
3,48±0,28
0,72±0,06
31,94±0,76
12,15±0,20
5,34±0,40
1,95±0,14
0,604±0,14
5,54±0,79
3,56±0,78

58
5,98±0,10
2,43±0,16
3,30±0,32
0,75±0,09
30,90±2,60
12,20±0,33
5,97±0,32
2,04±0,12
0,548±0,08
5,30±0,82
3,50±0,86

17
5,33±0,36
2,44±0,03
2,89±0,34
0,83±0,11
30,80±1,42
12,30±0,34
5,53±0,30
2,20±0,07
0,626±0,13
5,42±0,61
3,57±0,84

243
5,92±0,31
2,34±0,20
3,58±0,35
0,68±0,46
30,83±3,05
12,24±0,06
6,19±0,33
1,95±0,07
0,643±0,06
5,10±0,79
3,680,50

В среднем
5,89±0,27
2,32±0,10
3,56±0,32
0,68±0,08
32,67±2,82
12,18±0,19
6,02±0,28
1,85±0,23
0,558±0,11
5,34±0,78
3,53±0,81

6. Биохимические показатели крови подопытных коров (стойловый период)

Инвентарный
номер быка

Общий белок,
г%
Альбумин, %
Глобулин, %
А/Г
Глюкоза, мг/%
Кальций,
мг%

Неорганический
фосфор, мг%
Са/Р
Каротин,
мг%

377243
5,97±0,05
1,98±0,12
3,99±0,12
0,49±0,04
34,96±3,31
12,46±0,26
6,62±0,19
1,88±0,09
0,43±0,03

172
6,46±0,26
2,44±0,18
4,03±0,39
0,60±0,09
31,87±2,89
11,90±0,66
6,55±0,07
1,81±0,09
0,37±0,04

58
6,19±0,08
2,24±0,03
3,94±0,35
0,56±0,11
27,64±2,91
11,83±0,43
6,60±0,04
1,79±0,05
0,39±0,05

17
5,92±0,10
2,50±0,08
3,42±0,17
0,73±0,06
29,13±1,64
12,63±0,71
6,11±0,02
2,06±0,11
0,43±0,02

243
6,51±0,13
2,25±0,34
4,26±0,25
0,52±0,05
29,70±2,51
12,36±0,28
6,76±0,07
1,82±0,07
0,51±0,09

n=30
6,21±0,01
2,28±0,09
3,92±0,13
0,58±0,04
30,67±1,21
12,24±0,21
6,44±0,07
1,89±0,04
0,43±0,02

7. Биохимические показатели крови лактирующих подопытных коров (пастбищный период)

Инвентарный
номер быка

Общий белок,
г%
Альбумин, %
Глобулин, %
А/Г
Глюкоза, мг/%
Кальций,
мг%

Неорганический
фосфор, мг%
Са/Р
Каротин,
мг%

377243
5,75±0,28
2,64±0,10
3,11±0,38
0,76±0,16
29,96±4,04
13,26±0,03
5,85±0,12
2,20±0,04
0,921±0,08

172
5,77±0,29
2,41±0,08
3,35±0,28
0,72±0,06
30,65±3,65
12,56±0,23
5,34±0,23
2,35±0,06
0,865±0,08

58
5,84±0,10
2,75±0,17
3,09±0,20
0,88±0,11
28,80±2,18
12,87±0,12
5,78±0,23
2,22±0,12
0,700±0,07

17
5,39±0,15
2,39±0,06
3,00±0,09
0,79±0,03
29,68±2,25
12,65±0,65
5,38±0,02
2,30±0,13
0,878±0,09

243
5,81±0,21
2,73±0,16
3,08±0,37
0,90±0,18
26,20±2,56
12,20±0,20
6,20±0,15
1,96±0,06
0,796±0,11

N=30
5,74±0,10
2,61±0,09
3,13±0,11
0,84±0,05
29,09±0,06
12,72±0,33
5,73±0,12
2,22±0,05
0,872±0,40

8. Биохимические показатели крови подопытных коров (стойловый период, осень)

Инвентарный
номер быка

Общий белок,
г%
Альбумин, %
Глобулин, %
А/Г
Глюкоза, мг/%
Кальций,
мг%

Неорганический
фосфор, мг%
Са/Р
Каротин,
мг%

377243
5,00±0,35
2,24±0,02
2,76±0,33
0,89±0,12
45,90±4,10
12,06±0,65
5,15±0,34
2,29±0,20
0,509±0,03

172
5,52±0,06
2,47±0,35
3,05±0,32
0,84±0,22
33,30±1,80
12,00±0,24
5,32±0,32
2,25±0,11
0,574±0,07

58
5,90±0,19
2,30±0,01
2,88±0,19
0,80±0,05
36,10±1,10
11,90±0,11
5,54±0,06
2,10±0,04
0,550±0,01

17
4,67±0,07
2,43±0,15
2,24±0,23
1,10±0,18
33,70±0,40
11,60±0,40
5,10±0,14
2,26±0,02
0,569±0,07

243
5,43±0,28
2,04±0,16
3,39±0,44
0,61±0,12
36,60±1,50
12,25±0,55
5,61±0,04
2,09±0,01
0,607±0,03

N=30
5,19±0,10
2,28±0,07
2,90±0,13
0,83±0,06
38,25±2,08
11,87±0,14
5,37±0,09
2,17±0,04
0,558±0,01

Уровень кетоновых тел в молоке также служит показателем состояния углеводно-жирового обмена у коров. Исследования показали, что в зимне-весенний период у дочерей разных быков-производителей не наблюдали различий в значениях этого показателя. Летом дочери быка 243 статистически достоверно
превосходили дочерей остальных быков по содержанию кетоновых тел в молоке на 31,3…44,2 %
(р<0,05…0,001). Между дочерьми других быков не отмечено различий в значениях этого показателя.
Некоторая разница в концентрации кетоновых тел
в молоке выявлена у дочерей отдельных быков-производителей в осенний период, во второй период лактации. Например, их содержалось у дочерей быка 377243
на 14,7 % (р<0,001) больше, чем у дочерей быка 243. Уровень кетоновых тел в молоке подопытных коров повысился в осенний период по сравнению с летом больше, чем в 2 раза.

Выводы
Исследования показали, что низкая концентрация глюкозы в крови коров (меньше физиологической нормы) обусловлена дефицитом сахара в рационах и уменьшением усвоения энергии из рационов, состоящих из
объемистых кормов среднего качества и комбикормов
с низким содержанием сырого протеина (11…12 %).
Невысокое содержание общего белка и каротина в сыворотке крови у подопытных коров вызвано недостатком сырого протеина и каротина в кормовых рационах.
Дефицит сахара и особенно каротина в рационах
молочных коров в стойловый период наблюдается
часто из-за их недостаточного содержания в кормах.
Это отражается на содержании указанных компонентов в крови. Поэтому необходимо улучшать качество травяных кормов и комбикормов по этим показателям.
На биохимические показатели крови высокопродуктивных коров оказывают заметное влияние не только средовые, но и генетические факторы. Нами установлено, что генетический фактор, судя по концентрации глюкозы и кетоновых тел, оказывает заметное
влияние на энергетический и углеводно-жировой обмен. Дисперсионный анализ показал, что степень влияния быка-производителя на концентрацию глюкозы в крови дочерей в период раздоя составил 
10 % и кетоновых тел — 16,3 %. Установлена сравнительно высокая изменчивость содержания глюко
зы в крови высокопродуктивных коров по периодам
года и фазам лактации (Сv от 12,3 до 21,7 %) и низкая
по концентрации кетоновых тел (Сv от 4,7 до 8,7 %).

Б и б л и о г р а ф и я  
1. Антонов В. Я. Лабораторные исследования в ветеринарии / В.Я.Антонов,
П. Н. Блинов. — М.: Колос, 1971. — 648 с.
2. Волгин, В.И. Изменчивость и наследуемость биохимических показателей
крови у коров и их использование в практике / В.И. Волгин, Л.В. Романенко, А.С. Бибикова, З.Л. Федорова // Успехи современного естествознания. —
2008. — № 5. — С. 52–52.
3. Волгин, В.И. О методах контроля полноценности кормления высокопродуктивных
коров / В.И. Волгин, Л.В. Романенко, З.Л. Федорова, О.С. Прохоренко // Международный журнал экспериментального образования. — 2010. — № 7. — С. 104–105.
4. Волгин, В.И. Оптимизация энергетического питания высокопродуктивных коров черно-пестрой породы. Сб. науч. труд.: Селекционно-генетические методы повышения продуктивности сельскохозяйственных животных / В.И. Волгин,
А.С. Бибикова, Л.В. Романенко, Н.Н. Морозов. — С.-Пб.: ГНУ ВНИИГРЖ Россельхозакадемии, 2004. — С. 88–92.
5. Волгин, В.И. Реализация генетического потенциала продуктивности в молочном скотоводстве на основе оптимизации системы кормления (рекомендации) // В.И. Волгин, П.Н. Прохоренко, Л.В. Романенко, А.С. Бибикова, З.Л. Федорова и др. — М.: МСХРФ ФГНУ «Росинформагротех», 2006. — 36 с.
6. Волгин, В.И. Реализация генетического потенциала продуктивности в молочном скотоводстве / В.И. Волгин, Л.В. Романенко, А.С. Бибикова, З.Л. Федорова // Фундаментальные исследования. — 2009. — № 7. — С. 28–28.
7. Журавлев Е.М. Руководство по зоотехническому анализу кормов / Е.М. Журавлев. — М., 1963. — 289с.
8. Зоотехнический анализ кормов /Е.А. Петухова, Р.Ф. Бессарабова, Л.Д. Халенева, О.А.Антонова — М.: Колос, 1981. — 256 с.
9. Изучение состава крови, молока и кормов: методические указания / Под редакцией В.И. Волгина, Л.С. Жебровского. — Л., 1974. — 173 с.
10. Корочкина, Е.А. Профилактика гипокальциемии у высокопродуктивных коров
в послеотельный период / Е.А. Корочкина, К.В. Племяшов, М.Л. Гордаш // Ветеринария. — 2014. — № 7. — С. 41–44.
11. Лебедев П.Т. Методы исследований кормов, органов и тканей животных / П.Т.
Лебедев, А.Т. Усович — М.: Россельхозиздат, 1969. — С. 476.
12. Луцкий, Д.Я. Факторы, обуславливающие заболевание кетозом. В кн. Патология обмена веществ у высокопродуктивного крупного рогатого скота /
Д.Я. Луцкий, А.В. Жаров, В.П. Шишков и др. — М.: Колос, 1978. — С. 34–35.
13. Олль, Ю.К. Обзор состояния минерального питания и методов его изучения
у сельскохозяйственных животных / Ю.К. Олль. — Тарту, 1962. — 162 с. 
14. Племяшов, К.В. Воспроизводительная функция у высокопродуктивных коров
при нарушении обмена веществ и её коррекция: автореф. дисс. д-ра вет. наук: защ.
10.11.2010, утв. 01.04.2011 /К.В. Племяшов — СПб.: СПбГАВМ, 2010. — С. 38.
15. Раецкая, Ю.И. Методические рекомендации по химическим и биохимическим
исследованиям в зоотехнии / Ю.И. Раецкая, Н.П., Дрозденко, С.И. Липман. —
Дубровицы, 1975. — 91 с.
16. Hennig, A. Futterung der kuhe mit hohen Leistungen / A. Hennig //Tierzucht. —
1972. — V. 26. — N. 2. — P. 51–53.

Л.В. Романенко, В.И. Волгин, З.Л. Федорова, Е.А. Корочкина

8
РВЖ • СХЖ • № 2/2015

SUMMARY
L.V.Romanenko, V.I.Volgin, Z.L.Fedorova, 
E.A. Korochkina
Russian Scientific and Research Institute of Genetic and Breeding
of FoodProducing Animals (StPetersburg).

Influence of the Genetic and Paratypic Factors on
the Metabolism of WhiteandBlack Holstein Cows.
The objective of this study was to research the influence
of feeding and genetic factors on the realization of genetic
potential of milk production of Holstein’ whiteandblack
breed’ cows. Results of this study indicate that the genetic
potential has the influence on the energetic and the carbohidrateadipose metabolism.

9. Содержание кетоновых тел в молоке подопытных коров 
(мг%) и изменчивость показателя по сезонам года

Дочери 
быков
n
Статистические
показатели

Периоды

зимневесенний
летний
осенний

243
6
М±m
3,12±0,09
3,23±0,06***
4,69±0,04***

Сv,%
32,70
11,59
8,70

377243
6
М±m
3,20±0,14
2,46±0,08***
5,38±0,08***

Сv,% 
37,60
13,50
5,84

58
6
М±m
3,10±0,14
2,24±0,11***
5,15±0,02**

Сv,% 
39,70
13,51
7,16

17
6
М±m
3,13±0,07
2,39±0,05***
5,20±0,07

Сv,% 
47,00
16,90
7,67

172
6
М±m
3,23±0,20
2,41±0,04***
5,05±0,07**

Сv,% 
42,90
9,50
9,88

В целом
по всем быкам

М±m
3,15±0,03
2,34±0,04***
5,09±0,11

Сv,% 
39,90
20,14
7,80

Примечание. ** р <0,99; *** р< 0,099.

Ключевые слова: ацетат свинца, глиальный фибриллярный кислый белок, ранний постнатальный период развития ЦНС
Сокращения: ГФКБ — глиальный фибриллярный кислый белок, ГЭБ — гематоэнцефалический барьер,
ПААГ — полиакриламидный гель, ПНД — день постнатального развития, ПФ — промежуточные филаменты, м-РНК — матричная рибонуклеиновая кислота, ЦНС — центральная нервная система, ЭДТА —
этилендиаминтетрауксусная кислота

Введение
Клетки нервной ткани отличаются уникальными белками цитоскелета, которые характеризуются определенной
субклеточной локализацией и особенностями экспрессии на разных этапах онтогенеза. Представителями таких гистоспецифических белков ПФ цитоскелета структурно-функциональных единиц ЦНС являются триплет
белков нейрофиламентов нейронов и ГФКБ глиоцитов
[1]. Показано, что именно эти белки определяют специфику функционирования цитоскелета, а уровень экспрессии ГФКБ рассматривается как чувствительный индикатор действия нейротоксичных факторов во взрослом
мозге.
Известно, что ГФКБ играет важную роль в модуляции подвижности астроцитов и обеспечении структурной стабильности их отростков, а также принимает
участие в процессе астроглиоза, который может индуцироваться различными повреждающими факторами
как химической, так и физической природы, травматизацией ЦНС, метаболическими расстройствами. Ответные реакции нервной ткани сопровождаются интенсивной пролиферацией и гипертрофией астроцитов, повышенным синтезом ГФКБ и реэкспрессией белка ПФ виментина, присутствие которого характерно лишь для
незрелых глиальных клеток. Такие модификации метаболизма и изменения белкового спектра играют фун
даментальную роль в астроглиальном ответе и обусловливают нейропротекторную и репаративную функции
глиоцитов.
Нейроны чрезвычайно чувствительны к изменениям
микроокружения и глиально-нейронального взаимодействия в период эмбрионального и раннего постнатального развития. Ранняя стадия онтогенеза ЦНС характеризуется миграцией нейронов, дендрито- и аксоногенезом, установлением синаптических контактов. Ключевая
роль в этих процессах принадлежит клеткам астроглии,
токсическое влияние на которые может вызывать необратимые морфофункциональные нарушения дифференциации клеток на ранних этапах развития ЦНС [2].
Одной из возможных причин ранней нейродегенерации
может служить свинцовая интоксикация, что подтверждают данные, указывающие на сдвиг сроков дифференциации и дозревания астроцитов, а также развитие глиоза под воздействием низких концентраций солей свинца.
Показано, что свинец индуцирует разрушение элементов цитоскелета нейронов и накопление фибриллярного материала в перикарионе [3]. Изменение архитектуры ПФ цитоскелета астроглии может быть важным
этапом в развитии патологических нарушений, сопровождающих свинцовую интоксикацию.
Соединения свинца относят к наиболее опасным загрязнителям, количество которых в окружающей среде неуклонно увеличивается ввиду широкого круга источников поступления (выбросы промышленных предприятий, выхлопные газы автотранспорта, сжигание угля
и т. п.) [4]. Ранее при использовании изменений экспрессии ГФКБ в качестве маркера эффектов нейротоксичности ограничивались, главным образом, исследованиями мозга взрослых животных. Однако постоянное
присутствие свинца в воздухе, питьевой воде и продуктах питания в количествах, приближающихся к подпороговым, обусловливает необходимость исследования
особенностей молекулярных механизмов патологичес
УДК 576.311.348.4; 546.817

Влияние низких доз ионов Pb2+

на состояние цитоскелета астроцитов 
мозга крыс в раннем постнатальном периоде

ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ Физиология 10
РВЖ • СХЖ • № 2/2015

Е.В. Сухаренко1, кандидат технических наук (helenasuhar@gmail.com), И.В. Прищепа2, аспирант (prishepka89@mail.ru),
В.С. Недзвецкий2, доктор биологических наук (nedzvetskyvictor@gmail.com), В.И. Максимов3, доктор биологических
наук (dr.maximov@gmail.com)

1 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «Керченский государственный морской

технологический университет» (Керчь).

2 Днепропетровский национальный университет им. О. Гончара (Днепропетровск).

3 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «Московская государственная академия

ветеринарной медицины и биотехнологии имени К.И. Скрябина» (Москва).

Исследовали влияние ацетата свинца (25 мг/л в питьевой воде) на полипептидный состав и содержание белка
глиальных ПФ мозга крыс в раннем постнатальном периоде (1…21 дней). Установлено достоверное (р<0,01)
повышение экспрессии ГФКБ в мозжечке и больших полушариях во всех группах (1-й, 10-й, 21-й день)
постэмбрионального развития. В головном мозге животных в условиях пренатального воздействия ацетата
свинца отмечено появление иммунореактивных полипептидных фрагментов ГФКБ в диапазоне Мr 47…40
кДа. Полученные результаты свидетельствуют о развитии астроглиальной реакции в ответ на хроническое
воздействие ацетата свинца в эмбриональном периоде.

Влияние низких доз ионов Pb2+ на состояние цитоскелета астроцитов мозга крыс в раннем постнатальном периоде

кого влияния низких доз Pb2+ на ЦНС в период развития.
Принимая во внимание, что процессы раннего онтогенеза сопровождаются активной пролиферацией и дифференциацией определенных субпопуляций клеток
ЦНС, которые чрезвычайно чувствительны к действию
токсичных факторов, понимание ответных молекулярных и клеточных реакций может быть важным звеном
в изучении механизмов развития патологий ЦНС и стратегии нейропротекции.

Цель исследования
Выявить особенности содержания ГФКБ и изучить состав полипептидных фрагментов астроцитарного цитоскелета мозга крыс в раннем постнатальном периоде
развития в условиях действия ацетата свинца.

Материалы и методы
Беременные самки крыс линии Wistar были разделены
на контрольную и экспериментальную группы методом
рандомизации. Животные экспериментальной группы (n=7) получали ацетат свинца с питьевой водой с момента оплодотворения и в период лактации. Концентрация (СН3СОО)2Pb  составляла 25 мг/л. Животным контрольной группы (n=7) давали очищенную питьевую воду. Рожденных крыс обеих групп (n=60) декапитировали
на 1-й, 10-й и 21-й ПНД (ПНД-1, ПНД-10 и ПНД-21, соответственно). Головной мозг крыс ПНД-10 и ПНД-21
разделяли на отделы (мозжечок и большие полушария),
у крысят ПНД-1 для исследования брали мозг an mass.
Ткань мозга гомогенизировали в 50 мМ трис-HCl буфере (рН 7,4), который содержал 2 мМ ЭДТА, 1 мМ
2-меркаптоэтанол, 0,1 ммоль фенилметилсульфонилфторид, ингибиторы протеиназ («Roche Molecular Biochemicals», Германия). Все манипуляции проводили при
температуре 4 оС. Гомогенат центрифугировали при
30 000 g в течение 60 мин. Полученный супернатант (S1)
содержал растворимые белки мозга. После ресуспендирования осадок промывали в том же буфере и центрифугирования при 30 000 g в течение 45 мин. Затем
осадок ресуспендировали в трис-буфере, содержащем
дополнительно 4 М мочевину, и центрифугировали при

30000 g в течение 60 мин. Супернатант (S2) содержал
цитоскелетные филаментные белки. Концентрацию общего белка определяли по методу Брэдфорд [5]. Белки
фракций S1 и S2 фракционировали по молекулярной массе электрофоретически в градиенте ПААГ (5…20 %).
Количество общего белка в каждой пробе соответствовало 50 мкг. Окрашенные маркерные белки («Gibco-BRL
Inc.») использовали для определения молекулярной массы. После разделения в ПААГ белки переносили на нитроцеллюлозную мембрану («Schleicher & Schuel», США)
в течение 120 мин при токе 100 мА. После переноса
мембрану блокировали 3%-м обезжиренным сухим 
молоком с 1%-м альбумином в течение 120 мин при
комнатной температуре и инкубировали с анти-ГФКБ
специфической сывороткой («Santa Cruze Biotechnology Inc.», США) в течение 120 мин, затем со вторичными антителами, меченными пероксидазой хрена 
(«Sigma», США), в течение 60 мин. Полипептидные 
зоны окрашивали с помощью диаминобензидина. Полученные результаты сканировали и подсчитывали 
интенсивность окрашивания, используя программу
Image 2000 («Bio-Techne Corp.»). Относительное содержание ГФКБ выражали как отношение интенсивности иммуноокрашивания к содержанию общего 
белка в пробе.
Количественный анализ ГФКБ проводили путем сравнения интенсивностей окраски соответствующих 
полипептидных зон между экспериментальными и контрольными пробами, отнесенными к количеству общего белка во фракциях. Иммуноблоттинг ГФКБ позволяет оценить не только общую иммунореактивность,
но и относительное количество дериватов, то есть степень протеолиза глиальных филаментов.
Полученные данные обрабатывали с использованием математической статистики для малых выборок [6].
Относительное содержание ГФКБ выражали в виде средней величины ± стандартная ошибка средней, достоверную разницу между группами оценивали с применением t-критерия Стьюдента (р<0,05) после проверки гипотез о нормальности распределения и разницы между
генеральными дисперсии.

РВЖ • СХЖ • № 2/2015
11

Рис. 1. Содержание ГФКБ в мозжечке молодых крыс в условиях
воздействия ацетата свинца на 1й (мозг an mass), 10й и 21й день после
рождения по сравнению контрольными группами крыс того же возраста. 
К — контрольные группы животных, Рb — экспериментальные группы
животных; достоверность изменений * р <0,05; ** р <0,01.

1                              10                             21

Относительное содержание ГФКБ, у.е.

Рис. 2. Содержание ГФКБ в полушариях молодых крыс в условиях
воздействия ацетата свинца (мозг an mass) на 1й, 10й и 21й день после
рождения по сравнению контрольными группами крыс того же возраста. 
К — контрольные группы животных, Рb — экспериментальные группы
животных; достоверность изменений * р <0,05; ** з <0,01.

1                              10                             21

Относительное содержание ГФКБ, у.е.

Е.В. Сухаренко, И.В. Прищепа, В.С. Недзвецкий, В.И. Максимов

Результаты и обсуждение
Уровень и полипептидный состав ГФКБ определяли как
в растворимой, так и в цитоскелетной белковых фракциях. Из полученных с помощью иммуноблоттинга данных следует, что хроническое действие ацетата свинца
ведет к повышению содержания белка глиальных ПФ
в мозге крысят всех экспериментальных групп — 1-го,
10-го и 21-го дней после рождения. Результаты количественного определения ГФКБ представлены на рис. 1, 2.
Наиболее значительные изменения экспрессии ГФКБ
наблюдали в мозге новорожденных крысят (ПНД-1)
по сравнению с контрольной группой того же возраста.
Необходимо обратить особое внимание на то, что в ранний постэмбриональный период незрелые астроциты
продуцируют ГФКБ в очень ограниченных количествах,
а их ПФ состоят преимущественно из виментина [7].
В норме пик экспрессии ГФКБ приходится на 9…15-й
день постнатального периода. На третьей неделе жизни
синтез этого белка глиального цитоскелета несколько
снижается. Такая динамика экспрессии ГФКБ полностью совпадает с процессами миграции, пролиферации и дифференциации незрелых астроцитов во взрослые формы популяций клеток всех отделов мозга, отражая фибриллогенез в астроцитах, их дифференциацию
и представительство в отдельных регионах мозга.
Выбранный для изучения период развития мозга крыс
соответствует времени формирования зрелых астроглиальных образований ЦНС в гиппокампе, субвентрикулярной зоне, коре больших полушарий. Глиальные
и нейрональные элементы тесно связаны с помощью
непосредственных межклеточных адгезивных контактов, гуморальных факторов роста, цитокинов, сигналов
внешней среды. Наряду с этим, в первый месяц развития формируются наиболее функционально значимые
синаптические контакты, и нейроны дифференцируются по типу используемого нейромедиатора [8]. Образование синапсов происходит при активном участии
астроцитов, которые синтезируют трофические и адгезивные факторы, обеспечивая прорастание нейритов и
фиксацию межклеточного взаимодействия в ранний
период постнатального развития. Формирование устойчивых синапсов обеспечивает жизненно важные физиологические функции организма — обучение, память,
рефлексы, приспособление к условиям окружающей
среды, и делает этот период чрезвычайно уязвимым
к действию токсических факторов разной природы.
Возрастание содержания интактного ГФКБ с молекулярной массой 49 кДа в цитоскелетной фракции белков
свидетельствует о наличии астроглиального ответа на
действие ионов Pb3+ в незрелом головном мозге крыс.
Немаловажно, что выявленные изменения концентрации ГФКБ происходят за счет синтеза de novo именно
интактного филаментного полипептида с молекулярной
массой 49 кДа. В соответствующих растворимых фракциях экспериментальных и контрольных групп крысят
достоверной разницы между содержанием ГФКБ не обнаружено. В настоящее время функциональное значение
растворимых дериватов ГФКБ остается не ясным. Впервые растворимая фракция ГФКБ была получена из нервной ткани животных post mortem. Ранее ее происхождение связывали с активацией Са2+-зависимой нейтральной
протеиназы [9]. В дальнейшем было установлено, что
неполимеризованные растворимые субъединицы ГФКБ

могут появляться в мозге in vivo, а значительная гетерогенность иммунореактивных полипептидов наблюдается при различного рода воздействиях, ассоциированных с Са2+-опосредованными механизмами фосфорилирования и протеолиза. Возможно, лимитированный
протеолиз белков филаментов является одним из путей
реконструкции фибриллярного аппарата астроцитов.
Это предположение подтверждают недавно полученные
результаты, свидетельствующие о реализации одного
из путей деградации ПФ глии с участием каспаз [10].
Как правило, астроцитарный ответ зрелой ЦНС характеризуется повышением содержания ГФКБ на фоне
четко выраженных изменений полипептидного состава глиальных филаментов. На основании данных иммуноблоттинга можно утверждать, что в условиях воздействия ионов Pb2+ в период пренатального развития
ЦНС увеличивается содержание и изменяется полипептидный состав ГФКБ (рис. 3, 4).
Рост экспрессии ГФКБ ведет к активации фибриллогенеза, что характерно как для гипертрофированных
астроцитов при повреждении, так и для астроцитов в
фазе активной пролиферации и созревания. Опираясь
на ранее полученные сведения об отсутствии влияния
малых доз Pb2+ на индукцию гипертрофии астроглиальных клеток в эмбриональном мозге [11], можно предположить, что повышение уровня ГФКБ связано с пролифирацией и созреванием астроцитов.
Следует отметить, что, по сравнению со зрелым мозгом, изменения экспрессии ГФКБ на ранних этапах постнатального периода более ярко выражены. Несмотря

12
РВЖ • СХЖ • № 2/2015

Рис. 3. Иммуноблоттинг цитоскелетных фракций головного мозга крыс
экспериментальных и контрольных групп: 1 — мозг крыс ПНД1
контрольной группы; 2 — мозг крыс ПНД1 в условиях воздействия
ацетата свинца; 3 — мозжечок крыс ПНД10 контрольной группы; 
4 — мозжечок крыс ПНД10 в условиях воздействия ацетата свинца; 
5 — мозжечок крыс ПНД21 контрольной группы; 6 — мозжечок крыс
ПНД21 в условиях воздействия ацетата свинца

Рис. 4. Иммуноблоттинг цитоскелетных фракций головного мозга крыс
экспериментальных и контрольных групп: 1 — мозг крыс ПНД1
контрольной группы; 2 — мозг крыс ПНД1 в условиях воздействия
ацетата свинца; 3 — большие полушария крыс ПНД10 контрольной
группы; 4 — большие полушария крыс ПНД10 в условиях воздействия
ацетата свинца; 5 — большие полушария крыс ПНД21 контрольной
группы; 6 — большие полушария крыс ПНД21 в условиях воздействия
ацетата свинца

49 kDa

45 kDa

K
1й
10й
21й
Pb

1
2

K
Pb

3
4

K
Pb

5
6

49 kDa

45 kDa

K
1й
10й
21й
Pb
K
Pb
K
Pb

1
2
3
4
5
6