Книжная полка Сохранить
Размер шрифта:
А
А
А
|  Шрифт:
Arial
Times
|  Интервал:
Стандартный
Средний
Большой
|  Цвет сайта:
Ц
Ц
Ц
Ц
Ц

Российский ветеринарный журнал. Мелкие домашние и дикие животные, 2016, № 2

Бесплатно
Основная коллекция
Артикул: 706602.0001.99
Российский ветеринарный журнал. Мелкие домашние и дикие животные [Электронный ресурс] - М. : Логос Пресс, 2016. - № 2. - 46 с. - ISSN 1815-1450. - Текст : электронный. - URL: https://znanium.com/catalog/product/1017536 (дата обращения: 18.05.2024)
Фрагмент текстового слоя документа размещен для индексирующих роботов. Для полноценной работы с документом, пожалуйста, перейдите в ридер.
2016

ISSN 5181514508

мелкие домашние 
и дикие животные

ÐÎÑÑÈÉÑÊÈÉ
ÂÅÒÅÐÈÍÀÐÍÛÉ
ÆÓÐÍÀË

Офтальмология

Визуальная диагностика

Иммунология

Современные фармакои биопрепараты

Диетология

Содержание/Contents

Ðîññèéñêèé 
Âåòåðèíàðíûé 
Æóðíàë
Russian Veterinary Journal
2/2016

РВЖ • МДЖ • № 2/2016
3

АКТУАЛЬНАЯ ТЕМА

Шилкин А.Г., Артюшина Ю.Ю., Павлова Т.Н., 
Ротанов Д.А., Лужецкий С.А. 
Интравитреальные инъекции — новый метод лечения тяжелых
воспалительных внутриглазных патологий у собак и кошек . . . . 6

КЛИНИЧЕСКИЙ СЛУЧАЙ

Кемельман Е.Л., Санникова В.А.
Отолитиаз у ньюфаундленда, 
выявленный с помощью компьютерной томографии . . . . . . . . . 11

СОВРЕМЕННЫЕ ФАРМАКО- И БИОПРЕПАРАТЫ

Фишер. М., Бек В., Хаткинсон М. 
Эффективность и безопасность Селамектина (Стронгхолд®) 
при использовании у экзотических животных . . . . . . . . . . 13

Порядок выдачи, учета, проведения инъекций наркотических 
средств и психотропных веществ в ветеринарии и уничтожения 
остатков наркотических средств и психотропных веществ, 
не пригодных к дальнейшему применению, 
а также использованной упаковки от них . . . . . . . . . . . . . . . . . . 18

Лаппин М.Р., Дэвис У.Л., Хоули Дж.Р., Брюер М., 
Моррис А., Штаннек Д.
Ошейник Форесто® против блох и клещей, содержащий
имидаклоприд (10 %) и флуметрин (4,5 %), предотвращает
передачу блохами бактерии Bartonella henselae у кошек . . . . . . . 19

«БРАВЕКТО»: только факты . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 22

«БРАВЕКТО»: второй год в России . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 24

Данилевская Н.В., Дельцов А.А.
Эффективность препарата «Vermicon line-on» 
при блошиной инвазии собак и кошек . . . . . . . . . . . . . . . . . . 27

Репеллентная и инсектицидная эффективность новой комбинации
фипронила и перметрина против трех видов комаров 
(Aedes albopictus, Aedes aegypti, Culex pipiens) у собак . . . . . . . . 32

ДИЕТОЛОГИЯ

Шевелов В.А. 
Роль диеты при заболеваниях печени . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 34

Мильштейн И. 
Клинические преимущества применения PRO PLAN® JUNIOR 
DELICATE котятам с особыми пищевыми потребностями . . . . . . 35

ЛЕКЦИИ

Бояринов С.А. 
Глаукомная оптическая нейропатия у собак: 
современные аспекты патогенеза, диагностики и лечения . . . . . 36

ОБЗОРЫ

Орлова С.Т., Сидорчук А.А.
Новый взгляд на поствакцинальный иммунитет у собак и кошек. 
Часть 3. Анализ данных, полученных в экспериментах 
по определению длительности иммунитета у кошек . . . . . . . . . 43

VITAL TOPIC

Shilkin A.G., Artiushina J.J., Pavlova T.N.,
Rotanov D.A., Luzhetskiy S.A.
Intravitreal Injections is a New Method of Therapy of Severe 
Inflammatory Intra-Ocular Pathology in Dogs and Cats . . . . . . . . . . 6

CLINICAL CASE

Kemelman Е.L., Sannikova V.A. 
Otolithiasis in Newfoundland Detected 
by Computed Tomography . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 11

MODERN PHARMACOLOGICAL DRUGS & BIOPREPARATIONS

Fisher M., Beck W., Hutchinson M.J.
Efficacy and Safety of Selamectin (Stronghold®) 
Used Off-Label in Exotic Pets . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 13

Order of Delivery, Stock-Taking, Conducting of the Injections 
of Narcotic Drugs and Psychotropic Substances in the Veterinary
Science and the Destruction of the Remainders of Narcotic Drugs 
and Psychotropic Substances, not Suitable to Further Application, 
or the Used Packing from Them . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 18

Lappin M.R., Davis W.L., Hawley J.R., Brewer M., 
Morris A., Stanneck D.
A flea and tick collar containing 10% imidacloprid 
and 4.5% flumethrin prevents flea transmission 
of Bartonella henselae in cats . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 19

«BRAVECTO»: Оnly Facts . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 22

«BRAVECTO»: Second Year in Russia . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 24

Danilevskaya N.V., Deltsov A.A.
Effects of «Vermicon Line-on» on Flea Infestations 
of Dogs and Cats . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 27

Repellent and Insecticidal Efficacy of a New Combination
of Fipronil and Permethrin against Three Mosquito Species 
(Aedes albopictus, Aedes aegypti and Culex pipiens) on Dogs . . . . . 32

DIETOLOGY

Shevelov V.A. 
Role of Diet in Canine Hepatic Disease . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 34

Milshtein I. 
Clinical Advantages with the Use of PRO PLAN® JUNIOR DELICATE
for Kitten with Special Nutritional Needs . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 35

LECTURES

Boyarinov S.A.
Glaucomatous Optic Neuropathy in Dogs: 
Modern Aspects of Pathogenesis, Diagnosis and Treatment . . . . . 36

REVIEWS

Orlova S.T., Sidorchuk A.A.
A New Point of View on Vaccine-induced Immunity in Dogs and Cats.
Part 3. A Review of Experimental Data on the Duration 
of Immunity of Feline Vaccines . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 43

Научно-практический журнал 
Издается с марта 2005 г.

Издательство «Логос Пресс»
Директор М.В. Гейне 
Издатель ИП Солодилов Е.В.
Руководитель проекта И.М. Шугурова, к.б.н.
Руководитель отдела маркетинга Е.В. Лебедева
Менеджер по маркетингу М.А. Шугуров
Компьютерный дизайн Я.В. Быстрова

Адрес редакции: 127018, Москва, ул. 2-я Ямская, 2
E-mail: info@logospress.ru, http://logospress-vet.ru
Тел.: +7/495/689-8516, +7/495/220-4816

Свидетельство о регистрации СМИ:
ПИ № ФС 77-57777 от 18.04.2014
Оформление подписки каталог «Почта России» 12604 (на год)

Журнал выпускается при участии
Учебно-методического объединения высших учебных заведений Российской
Федерации по образованию в области зоотехники и ветеринарии
Согласно рекомендациям Роскомнадзора выпуск и распространение 
издания допускается без размещения знака информационной продукции.
Воспроизведение материалов в любом виде, включая электронный, возможно только по письменному согласованию с издательством. Редакция не
несет ответственности за содержание рекламных материалов. Мнение
редакции не всегда совпадает с мнением авторов статей.
Рукописи, принятые на рассмотрение, редакция не возвращает.

Журнал выходит 
при поддержке

ООО «Биоконтроль», 
ИРСО, 
ВИТАР

Главный редактор

С.А. Ягников, докт. вет. наук, проф. (РУДН, Центр вет. хирургии «ВетПрофАльянс», Москва)

Выпускающий редактор

В.В. Ракитская (rakitskaya.vera@yandex.ru) 

Редакционная коллегия

Бажибина Е.Б., канд. вет. наук, эксперт в области лаб. диагностики (Сеть вет. клиник «Свой доктор», Москва)
Бардюкова Т.В., канд. биол. наук, эксперт в области кардиологии (Вет. клиника «Центр», Москва)
Василевич Ф.И., докт. вет. наук, академик РАН, проф., ректор ФГБОУ ВПО МГАВМиБ
Васильев Д.Б., докт. вет. наук, ведущий герпетолог Московского зоопарка 
Власов Н.А., докт. биол. наук, проф. (Федеральная служба по ветеринарному и фитосанитарному надзору)
Голубева В.А., канд. биол. наук, эксперт в области патоморфологии (Клиника экспериментальной терапии РОНЦ им. Н.Н. Блохина РАМН, Москва)
Данилевская Н.В., докт. биол. наук, проф., зав. кафедрой фармакологии и токсикологии ФГБОУ ВПО МГАВМиБ
Ермаков А.М., докт. биол. наук, проф., президент Донской ассоциации ветеринарных врачей (СКЗНИВИ, вет. клиника «Центр», Ростов-на-Дону)
Жаров А.В., докт. вет. наук, проф., эксперт в области патологической анатомии (ФГБОУ ВПО МГАВМиБ)
Зуева Н.М., канд. биол. наук, эксперт в области ультразвуковой диагностики болезней животных, президент Ветеринарного общества 
по методам визуальной диагностики (Вет. клиника «Центр», Москва)
Илларионова В.К., канд. биол. наук, эксперт в области кардиологии (Вет. клиника «Биоконтроль», Москва)
Козловская Н.Г., канд. биол. наук, помощник гл. редактора «РВЖ.МДЖ» (вет. центр «А.М.Вет», Москва)
Корнюшенков Е.А., канд. биол. наук, эксперт в области анестезиологии, реаниматологии, интенсивной терапии (Клиника экспериментальной 
терапии РОНЦ им. Н.Н. Блохина РАМН, вет. клиника «Биоконтроль», Москва)
Кузнецова А.Л., канд. биол. наук, эксперт в области онкологии-химиотерапии (Клиника экспериментальной терапии РОНЦ им. Н.Н. Блохина
РАМН, вет.клиника «Биоконтроль»)
Кулешова Я.А., канд. вет. наук, эксперт в области хирургии и травматологии (Центр вет. хирургии «ВетПрофАльянс», Москва)
Лежандр А.М. DVM, MS, DACVIM, Professor of Internal Medicine & Oncology at the College of Veterinary Medicine, University of Tennessee
Максимов В.И., докт. биол. наук, проф., проректор УМО вузов РФ по образованию в области зоотехнии и ветеринарии, эксперт в области 
физиологии (ФГБОУ ВПО МГАВМиБ)
Митрохина Н.В., канд. вет. наук, эксперт в области патоморфологии (Москва)
Перепечаев К.А., канд. биол. наук, эксперт в области офтальмологии (Центр доктора Перепечаева. Москва)
Самошкин И.Б., докт. вет. наук, проф. (ФГБОУ ВПО МГАВМиБ, Центр травматологии животных ГУ «Мосветобъединение»)
Санин А.В., докт. биол. наук, проф., руководитель лаборатории клеточного иммунитета НИИЭМ им. Н.Ф. Гамалеи Минздравсоцразвития РФ (Москва)
Середа С.В., канд. вет. наук, президент Российской ассоциации практикующих ветеринарных врачей, действительный член WSAVA и FECAVA (Москва)
Сережина Л.А., эксперт в области терапии (вет. клиника «Биоконтроль», Москва)
Слесаренко Н.А., докт. биол. наук, проф., зав. кафедрой анатомии, гистологии и морфологии ФГБОУ ВПО МГАВМиБ.
Фролов В.В., докт. биол. наук, проф., эксперт в области стоматологии, ортодонтии, амбидекстрологии, челюстно-лицевой хирургии 
(СГСЭУ, вет. клиника «Центральная на Московской», Саратов)
Чернов А.В., канд. вет. наук, эксперт в области эндоскопических и малоинвазивных методов диагностики и лечения патологий животных 
(вет.клиника «Эндовет», г. Курган; «ВетЭндоШкола», г. Москва)
Шилкин А.Г., канд. мед. наук, эксперт в области офтальмологии (Центр ветеринарной офтальмологии доктора Шилкина А.Г., Москва),
лауреат премии «Золотой скальпель» (2014) и медали им. В.Н. Митина «За вклад в клиническую ветеринарную медицину» (2013)
Якунина М.Н., докт. вет. наук, эксперт в области общей онкологии (вет. клиника «Биоконтроль», Москва)

РВЖ • МДЖ • № 2/2016
5

Ключевые слова: интравитреальная инъекция, стекловидное тело, гематоофтальмический барьер, тяжелые
воспалительные внутриглазные патологии, пролонгированная концентрация препарата, кошки, собаки
Сокращения: ВГД — внутриглазное давление, ВГЖ —
внутриглазная жидкость, ИОЛ — интраокулярная
линза (искуственный хрусталик), ЛП — лекарственный/е препарат/ы, TPA — tissue plasminogen activator
(тканевой активатор плазминогена), VEGF — vascular endothelial growth factor (сосудистый эндотелиальный фактор роста)

Введение
В клинической практике ветеринарного врача-офтальмолога значительное внимание уделяется терапии интраокулярной воспалительной патологии у мелких домашних
животных. Комплексная терапия иридоциклитов, хориоретинитов, панувеитов и гемофтальмов осложняется трудностями «прицельной доставки» ЛП к пораженной ткани.
Гематоофтальмический барьер служит естественным
физиологическим препятствием для проникновения ЛП
к воспаленной ткани сетчатки, сосудистой оболочке и
цилиарному телу при инстилляциях, субконъюнктивальных или парабульбарных инъекциях. Гематоофтальмический барьер схож с гемато-энцефалическим, представлен эндотелием капилляров сосудистой оболочки глаза и служит физиологической преградой между кровеносными сосудами и интраокулярными тканями. Его
функциональное назначение — ограничить проникновение внутрь глаза токсинов, бактерий и других патологических элементов, но одновременно это препятствует проникновению ЛП. По данной причине большая
часть ЛП не поступает в очаг воспаления. Указанная
проблема послужила предпосылкой к разработке техники интравитреального введения ЛП.
Интравитреальная инъекция — метод введения ЛП
непосредственно в полость стекловидного тела через прокол склеры. Основное преимущество метода — прямая
и быстрая доставка препарата к пораженным тканяммишеням, минуя гематоофтальмический барьер (рис. 1).
При интравитреальной методике ЛП доставляется к ретроцилиарным цистернам стекловидного тела. При воспалительных патологиях с сохранением анатомической структуры стекловидного тела ЛП достигает задних его отделов
через 8…48 ч, а затем сосудистой оболочки и сетчатки. Это

позволяет поддерживать необходимую концентрацию ЛП
в тканях глаза и снижает возможность развития побочных
системных эффектов. В медицине человека интравитреальные инъекции широко применяют при терапии заболеваний заднего отрезка глаза: возрастной макулодистрофии (влажная форма), диабетическом макулярном отеке, гемофтальме, эндофтальмите, хориоретините, тромбозе центральной вены сетчатки и т. д. [2, 3, 5, 18, 19]. 
В ветеринарной офтальмологии некоторые специалисты
(А.Г. Шилкин, С.А. Лужецкий, Д.В. Гончаров) также используют данную процедуру в своей клинической практике.
Однако в российской ветеринарной литературе практически не встречается описаний методики интравитреальных
инъекций у животных. Отсутствие данных о клинической
эффективности метода, непосредственных и отдаленных
клинических результатах лечения, осложнениях, показаниях и противопоказаниях к его применению побудили нас
к проведению специального исследования.

Цель исследования
Внедрить в клиническую практику методику интравитреальных инъекций для лечения заболеваний заднего
отрезка глаза; проанализировать эффективность данной методики; сравнить непосредственные и отдаленные результаты терапии; определить показания и противопоказания к интравитреальным инъекциям.

УДК 619: 617.7: 615

Интравитреальные инъекции — новый метод
лечения тяжелых воспалительных
внутриглазных патологий у собак и кошек

РВЖ • МДЖ • № 2/2016

АКТУАЛЬНАЯ ТЕМА

Рис. 1. Схема интравитреального введения ЛП непосредственно в полость
стекловидного тела, минуя гематоофтальмический барьер. Черная линия
показывает распределение ЛП в стекловидном теле в виде единого четко
контурируемого сгустка

А.Г. Шилкин1 (eyevet@yandex.ru), Ю.Ю. Артюшина1, Т.Н. Павлова1, Д.А. Ротанов1, С.А. Лужецкий2

1 Центр ветеринарной офтальмологии доктора Шилкина А.Г. (Москва).

2 Ветеринарная клиника «Неврологии, травматологии и интенсивной терапии доктора Сотникова В.В.» (СанктПетербург).

Интравитреальная инъекция — это метод введения ЛП непосредственно в полость стекловидного тела. Преимущество
метода — прямая и быстрая доставка препарата к пораженным тканям, минуя гематоофтальмический барьер, что
позволяет поддерживать пролонгированную концентрацию препарата в тканях глаза при иридоциклитах,
хориоретинитах, панувеитах и снижает возможность развития системных побочных эффектов. Метод демонстрирует
положительные и долгосрочные клинические результаты в терапии патологий глаз у собак и кошек.

Интравитреальные инъекции — новый метод лечения тяжелых воспалительных внутриглазных патологий у собак и кошек

Материалы и методы
Характеристика группы пациентов. Метод интравитреального введения ЛП использовали при лечении офтальмопатий у собак и кошек в возрасте от 1 года до 10 лет
(всего 13 глаз). При этом девять случаев можно было охарактеризовать как бесперспективные, так как офтальмопатии сопровождались тяжелой и крайне тяжелой степенью нарушений. Традиционные методы терапии не дали положительного результата, и предложенные интравитреальные инъекции были единственной альтернативой
энуклеации или эвисцерации. Семь клинических случаев представляли собой тяжелый рецидивирующий иридоциклит. Унилатеральные иридоциклиты отмечены у
5 животных (3 кошки, 2 собаки). У двух кошек наблюдали билатеральный панувеит, сопровождавший течение
вирусного иммунодефицита и вирусного лейкоза (рис. 2).
Характеристика используемых препаратов и показания к их применению. Всем наблюдаемым животным
для купирования интраокулярного воспаления интравитреально вводили триамцинолон (кеналог 40) в дозе
0,2 мл по методике, предложенной медицинским врачом-офтальмологом Т.Р. Гильманшиным [6]. Инсулиновый шприц с 1,0 мл ЛП располагали вертикально иглой
вверх примерно на 20 мин. Кристаллы триамцинолона оседали, образуя густой осадок (0,2…0,3 мл) и жидкую часть, или супернатант (0,7…0,8 мл). Сурпернатант
и консервант максимально удаляли, в стекловидное тело вводили только кристаллы триамцинолона. Триамцинолон был препаратом первого выбора для интравитреальных инъекций. Преимущества данного ЛП — снижает экспрессию VEGF при одновременной редукции
отека, уменьшает воспаление интраокулярных структур и повышает проницаемость сосудов [2, 13, 14, 16].
Кроме того, триамцинолон полностью безопасен при
интравитреальном введении и не вызывает токсических реакций со стороны сетчатки. При интравитреальном введении указанного ЛП удается добиться высокой
интраокулярной концентрации стероидов и нивелировать системные побочные эффекты [11, 12].
У двух пациентов унилатеральный рецидивирующий
гемофтальм сочетался с гифемой, возникшей более 7
суток назад (рис. 3). Для резорбции внутриглазных кровоизлияний пациентам в стекловидное тело вводили
TPA (актилизе) в дозе 0,4 мл с разведенным в ней препаратом гемаза [4].
С целью профилактики резкого повышения ВГД осуществляли парацентез передней камеры и выпускали
шпателем или иглой несколько капель ВГЖ, тем самым

уменьшая ее объем, что позволяло ввести большое количество ЛП в стекловидное тело, не опасаясь повышения ВГД и истечения препарата из стекловидного тела.
Интравитреальные инъекции выполнялись нами и как
интраоперационное сопровождение факоэмульсификации (рис. 4) с имплантацией искусственного хрусталика, для купирования постоперационной фибринозной
воспалительной реакции в передней камере (4 собаки).
У этих пациентов на завершающем этапе операции, чтобы снизить послеоперационное фибринозное воспаление после имплантации ИОЛ через роговичный разрез
и отверстие в гаптической части ИОЛ, вводили в стекловидное тело триамцинолон в дозе 0,05…0,1 мл.
Техника интравитреальных инъекций. Манипуляции
у всех животных выполняли с использованием операционного микроскопа и ингляционной анестезии. До инъекции в конъюнктивальную полость инстиллировали
анестетик алкаин 0,5 % двукратно с интервалом 2 мин.
Затем 2…3 капли антимикробного офтальмопрепарата
ципровет или тобрекс.
В верхнее-наружном сегменте глаза на расстоянии
5 мм (для собак) и 6 мм (для кошек) от лимба при помощи одноразового шприца на 1 мл с размером иглы
в 30 G, выполняли сквозной прокол склеры. В месте прокола конъюнктиву несколько смещали в сторону для
профилактики эндофтальмита. Расстояние от лимба до
точки инъекции размечали специальным офтальмологическим циркулем (рис. 5).
Данная точка анатомически соответствует плоской
части цилиарного тела (pars plana) и наиболее безопасна для инъекции. При проколе склеры на расстоянии от лимба, превышающем 6 мм, возможно отслоение сетчатки. Иглу вводили на глубину до 0,3…0,5 см,
под косым углом, в направлении к центру стекловидного тела (рис. 6, 7). Правильный угол вкола иглы очень
важен. При введении иглы под прямым углом возможна перфорация хрусталика и развитие травматической катаракты, особенно у кошек, имеющих сферофакичный большой хрусталик.
Препарат в стекловидное тело вводили медленно.
После извлечения иглы конъюнктиву зажимали пинцетом в месте прокола на 1 мин, чтобы предотвратить
истечение препарата под конъюнктиву.

Результаты и обсуждение
В нашей клинической практике интравитреальные инъекции показали себя безопасной и достаточно простой
процедурой. Мы не регистрировали осложнений и ал
Рис. 2. Тяжелый билатеральный кератоувеит у кота 3х лет в сочетании с множественными эрозиями, васкуляризацией роговицы и хориоретинитом на фоне вирусного лейкоза. Инстилляции 
и субконъюнктивальные инъекции кортикостероидов невозможны вследствие эрозий роговицы
Рис. 3. Тотальная гифема в сочетании с гемофтальмом у собаки 6 лет

Рис.4. Ультразвуковая факоэмульсификация
набухающей катаракты у 5летней собаки

РВЖ • МДЖ • № 2/2016
7

А.Г. Шилкин, Ю.Ю. Артюшина, Т.Н. Павлова, Д.А. Ротанов, С.А. Лужецкий

лергических реакций. Не отмечено перфорации хрусталика, развития токсической катаракты или тракционного отслоения сетчатки. После интравитреальной
инъекции воспалительные процессы отсутствовали как
в передней камере глаза, так и в структурах глазного
дна. Прозрачность влаги передней камеры не изменялась, выраженной реакции ткани радужной оболочки
и цилиарного тела на введение препарата не наблюдали. Видимые токсические изменения на сетчатке и со
стороны зрительного нерва отсутствовали.
У двух животных появились единичные мелкие кровоизлияния на конъюнктиве в зоне инъекции, которые резорбировались самостоятельно в течение 2…5 суток. Другие изменения в тканях глаза нами не визуализировались. Умеренная офтальмогипертензия, регистрируемая постинъекционно, носила транзиторный
характер и спустя 3…4 суток стабилизировалась до референсных физиологических значений, что не всегда
сочетается с данными медицинских офтальмологов [1].
Развития интраокулярных инфекций вследствие интравитреальной инъекции не отмечено. После выполненной интравитреальной инъекции триамцинолон визуализировался в виде небольшого молочно-белого образования в средней трети стекловидного тела. Спустя
1…2 суток после введения при биомикроскопии с 16-ти
кратным увеличением кристаллы стероида определялись в виде подвижного белесого очага неправильной
формы с четкими контурами в нижнем сегменте стекловидного тела (вследствие большей силы тяжести и
собственной массы триамцинолона). Стероидный сгусток имел тенденцию к медленной резорбции в течение нескольких месяцев с момента введения. У двух жи
вотных полной резорбции препарата не произошло в течение 9 месяцев нашего динамического наблюдения.
Терапевтическая эффективность данной методики
составила чуть более 50 %. У 7 из 13 животных отмечено значительное клиническое улучшение. В случаях изначально тяжелых и бесперспективных патологий
глаз достигнутый терапевтический эффект мы считаем очень высоким. У трех из пяти животных с односторонними иридоциклитами воспалительный процесс
купировался полностью после однократной инъекции.
Наблюдали восстановление прозрачности ВГЖ, резорбцию преципитатов задней поверхности роговицы, экссудата и кровоизлияний в передней камере, а также устранение отека радужной оболочки.
Клиническое состояние глаз у животных, подвергшихся интравитреальной инъекции, стабильное, полученная эффективность не снижалась в течение 11 месяцев нашего наблюдения за пациентами (рис. 8, 9).
У двух кошек с двусторонними панувеитами на фоне
подтвержденного течения хронической вирусной инфекции вначале диагностировалась некоторая положительная динамика: частично резорбировался экссудат в передней камере, снизились дилятация и кровенаполненность
сосудов радужки. Однако полученный эффект сохранялся только первые 1,5 месяца после инъекции. В дальнейшем постепенно нарастала отрицательная динамика. Такой кратковременный эффект обусловлен прогрессирующим течением общего инфекционного заболевания.
Интравитреальные инъекции выполнены двум собакам с гифемой и гемофтальмом. У первого пациента постепенную резорбцию крови наблюдали в течение 10 дней.
Процесс полностью стабилизировался, рецидива гемор
8
РВЖ • МДЖ • № 2/2016

Рис. 5. Определение и разметка безопасной зоны
для интравитреальной инъекции с помощью
офтальмологического циркуля
Рис. 6. Техника интравитреальной инъекции
у собаки

Рис. 7. Введение иглы под косым углом в направлении к центру стекловидного тела. При
неверном направлении иглы возможна перфорация хрусталика и возникновение травматической катаракты

Рис. 8. Глаз до интравитреальной инъекции. Рецидивирующий подострый односторонний увеит неуточненной этиологии. Кот породы сфинкс,
5 лет. Местные инстилляции кортикостероидов
в течение 14 дней провоцируют образование эрозий. Отмена стероидов ведет к немедленному образованию экссудата в передней камере. Интравитреальные инъекции — оптимальный вариант лечения животных с подобной патологией

Рис. 9. Глаз после однократной интравитреальной инъекции. Воспалительный процесс в передней камере купирован полностью. Стойкий
клинический эффект сохраняется полностью
при сроке наблюдения 11 месяцев

Рис. 10. Глаз собаки 4х лет спустя 1,5 месяца после факоэмульсификации катаракты с имплантацией хрусталика и интравитреальным введением
триамцинолона. Препарат четко визуализируется
в виде белого небольшого сгустка за искусственным хрусталиком в нижней части стекловидного
тела (отмечено стрелкой)

Интравитреальные инъекции — новый метод лечения тяжелых воспалительных внутриглазных патологий у собак и кошек

рагии не последовало. У второй собаки на следующий
день после инъекции произошло осложнение — свежее
кровоизлияние высотой 5 мм в переднюю камеру. Дальнейший курс инъекций на фоне возникшего свежего кровоизлияния был признан нецелесообразным.
После факоэмульсификации катаракты с имплантацией искусственного хрусталика интравитреальная инъекция выполнена четырем собакам. У одного пациента (овчарка, возраст 10 лет) спустя 21 день после операции факоэмульсификации с ИОЛ на фоне благополучного состояния глаза наблюдали острое возникновение вторичной
глаукомы. Насколько она связана с интравитреальной инъекцией, сказать сложно. У остальных трех животных с
интраоперационным введением триамциналона фибринозное воспаление в передней камере было незначительным. ЛП визуализировался за интраокулярной линзой в
передней трети стекловидного тела в виде небольшого локального сгустка. Резорбция препарата была достаточно медленной, при этом срок наблюдения за пациентами составлял до 8 месяцев. Хочется отметить, что введение ЛП в стекловидное тело при факоэмульсификации
катаракты у животных несколько уменьшает фибринозную увеальную реакцию, но, к сожалению, полностью данную проблему в послеоперационном периоде не решает.

Заключение
Интравитреальные инъекции — перспективный метод терапии таких заболеваний заднего отрезка глаза,
как иридоциклит, хориоретинит, панувеит и гемофтальм. Преимуществами интравитреальных инъекций
перед другими методами лечения вышеперечисленных
патологий глаза следует считать безопасность и «прицельную» доставку ЛП непосредственно в пораженную
ткань. Метод продемонстрировал положительные и долгосрочные клинические результаты в терапии сложных
и даже бесперспективных патологий глаз у животных.
Техника интравитреальных инъекций достаточно
проста, не сопряжена с использованием специальной
аппаратуры или длительной подготовкой врача. При
выполнении инъекций мы не наблюдали осложнений,
воспалительных процессов, продолжительного повышения ВГД и аллергических реакций.
Процедура экономически малозатратна для владельцев животных, что тоже немаловажно. Нами пока не
до конца изучены границы возможностей интравитреальных инъекций, но мы будем их исследовать в дальнейшей клинической практике.

Б и б л и о г р а ф и я
1. Аветисов, С.Э. Возрастная макулярная дегенерация и глаукома: мониторинг внутриглазного давления после интравитреальных инъекций / С.Э. Аветисов, В.П. Еричев, М.В. Будзинская, М.А. Карпилова, И.В. Гурова, И.В. Щеголева, Е.А. Чикун // Вестник офтальмологии. — 2012. — № 6. — С. 3–5.

2. Амир, Али Азим Заде Гоми. Интравитреальное введение кеналога в лечении макулярного отека при диабетической ретинопатии: автореф. дис.
… канд. мед. наук / Али Азим Заде Гоми Амир. — М., 2006. — 109 с.
3. Балашевич, Л.И. Эффективность интравитреального введения кеналога
при лечении рефрактерного диффузного диабетического макулярного отека осложненного наличием твердых экссудатов / Л.И. Балашевич, М.В.
Гацу, Я.В. Байбородов // Офтальмохирургия. — 2006. — № 2. — С. 25–29.
4. Беспалова, Т.О. Опыт применения фибринолитических ферментов в ветеринарной офтальмологии / Т.О. Беспалова, Ю.Ю. Артюшина, В.В. Олейник, Д.А. Ротанов, Т.Н. Пудовкина, А.Г. Шилкин // Материалы XVI Московского международного ветеринарного конгресса. — Москва, 2008. — С. 146–148.
5. Вартанян, А.Г. Наш опыт интравитреального применения авастина у больных с различными видами макулярного отека / А.Г. Вартанян, Л.В. Абгарян // Вопросы теоретической и клинической медицины. — 2008. — № 2.
6. Гильманшин, Т.Р. Интравитреальное введение Кеналога в витреоретинальной хирургии (экспериментально-клиническое обоснование): автореф. дис. … канд. мед. наук. Защищена 07.07. 2008 /
Т.Р. Гильманшин. — М., 2008. —138 с.
7. Егоров, Е.А. Применение Триамцинолона ацетонида (Кеналог-40)
для лечения заболеваний глаз / Е.А. Егоров, И.Ю. Лопухина // Офтальм. журн. — 1980. — № 4. — С. 212–221.
8. Захаров, В.Д. Витреоретинальная хирургия / В.Д. Захаров. — М.:
Москва, 2003. — С. 157–165.
9. Aaberg, Т.М. Late complications of pars plana vitreous surgery / Т.М.
Aaberg, D.L. van Horn // Ophthalmology. — 1978. — Vol. 85. — P. 126–140.
10. Albini, Т.A. Long-term retinal toxicity of intravitreal commercially available preserved triamcinolone acetonide (Kenalog) in rabbit eyes / Т.A.
Albini, M.M. Abd-El-Barr, P.E. Carvounis et al.// Invest. Ophthalmol.
Vis. Sci. — 2007. — Vol. 48. — No. 1. — P. 390–395.
11. Antoszyle, A.N. The effects of intravitreal triamsinalone acetonide on
experimental pre-retinal neovascularisation / A.N. Antoszyle, J.L. Gothlief // Graefes Arch Clin. Exp. Ophthalmol. — 1993. — No. 231. — P. 34–40.
12. Choi, Y.J. Intravitreal versus posterior subte-non injection of triamcinolone acetonide for diabetic macular edema / Y.J. Choi, I.K. Oh, J.R. Oh,
K. Huh // Korean J. Ophthalmology. — 2006. — Vol. 20. — P. 205–209.
13. Danis, R.P. Juhibition of preretinal and optic nerve head neovascularisation in pigs by intravitreal triamcinalone acetonide / R.P. Danis, D.P. Biugman,
Y. Yang, H. Hadd. // Ophthalmology. — 1996. — No. 103. — P. 2099–2104.
14. Hu, M. Verisome, a novel injecta-ble, sustained release, biodegradable,
intraocular drug delivery system and triamcinolone acetonide / M. Hu, G.
Huang, F. Karasina, V.G. Wong // Investigative Ophthalmology and Visual Science. — 2008. — Vol. 49. — P. 770–776.
15. Smith, T.J. Intravitreal sustained-release ganciclovir / T.J. Smith,
P.A. Pearson, D.L. Blandford, J.D. Brown et al. // Archives of Ophthalmology. — 1992. — Vol. 2 (110). — P. 255–258.
16. Tan, D.T.H. Randomized clinical trial of a new dexamethasone delivery system (Surodex) for treatment of post-cataract surgery inflammation
/ D.T.H. Tan, S.P. Chee, L. Lim, A.S.M. Lim, D.T.H. Tan, S.P. Chee, L.
Lim, A.S.M. Lim // Ophthalmology. — 1999. — No. 2(106). — P. 223–231.
17. Yamamoto, T. Simultaneous intravitreal injection of triamcinolone acetonide and tissue plasminogen activator for central retinal vein occlusion:
a pilot study / T. Yamamoto, M. Kamei, K. Sayanagi, et al. // Br. J. Ophthalmol. — 2011. — Vol. 95. — P. 69–73.

РВЖ • МДЖ • № 2/2016
9

SUMMARY
A.G. Shilkin1, J.J. Artiushina1, T.N. Pavlova1, D.A. Rotanov1, S.A. Luzhetskiy2

1 Ophthalmologic Veterinary Center of DVM Shilkin A.G (Moscow).

2 Veterinary Clinic «Neurology, Traumatology and Intensive Therapy of Doctor Sotnikov V.V.» (SanctPetersburg).

Intravitreal Injections is a New Method of Therapy of Severe Inflammatory IntraOcular Pathology in Dogs and Cats. Intravitreal injection is a method
of drug delivery directly to the vitreous body. Immediate and rapid drug injection into affected tissue by passing the blood aqueous barrier is an advantage of
the method. It allows maintain the prolonged drug concentration inside the eye tissue in iridocyclitis, chorioretinitis or panuveit cases and reduces the possibility
of system side effects. This method demonstrates beneficial and longterm clinical results for complex eye pathology therapy in dogs and cats.
Keywords: intravitreal injection, vitreous body, blood aqueous barrier, severe inflammatory intraocular pathology, prolonged drug concentration, dog, cat.

Отолитиаз у ньюфаундленда, выявленный
с помощью компьютерной томографии

Ключевые слова: собака, наружный отит, отолит, отолитиаз, барабанный пузырь, компьютерная томография
Сокращения: КВ — контрастное вещество, КТ —
компьютерная томография, МТ — масса тела

Введение
Заболевания уха, в частности наружный отит, или воспаление наружного слухового прохода, относят к достаточно распространенным патологиям собак [13, 16].
Принято считать, что средний отит, или воспаление
среднего уха, распространен гораздо меньше, однако он встречается все же чаще, чем полагали прежде — у 16 % пациентов с острым наружным отитом
и у 50…80 % с хроническим наружным отитом [3, 11].
При визуальной диагностике патологий барабанного пузыря, как у людей [4], так и у животных [1, 2, 5,
6, 12, 15] методом выбора является КТ. Это обусловлено высокой чувствительностью КТ к костным и пневматизированным структурам, а также отсутствием эффекта суперпозиции тканей, что крайне актуально в исследовании такой сложной структуры, как череп. Оценка инвазии процесса в ткань головного мозга также
не вызывает затруднений при условии адекватного внутривенного контрастирования.
Формирование отолитов, или «ушных камней», — наиболее редко регистрируемая патология у собак. Авторам данной статьи удалось найти только 5 публикаций,
посвященных указанной проблеме. Впервые в литературе случай обнаружения отолитов у собаки описал 
C.S. Farrow в 1992 г. [8]: он поставил диагноз 8-летнему
самцу вестхайленд-вайт терьера по изменениям на рентгенограммах; три клинических случая были приведены в работе L.S. Ziemer, et. аl. [20], один случай описал
R. Drees в учебнике «Veterinary Computed Tomography»

[7] и еще один случай у 9-летней австралийской овчарки
был описан в пособии «Atlas of Small Animal CT and MRI»
[19]. Кроме этого, авторы статьи нашли только одну публикацию по образованию отолитов у кошек [18] и одну
публикацию, описывающую отолитиаз у львов [14].

Описание клинического случая
Данные анамнеза. Пациент — некастрированный самец
породы ньюфаундленд, возраст 5 лет, поступил на прием в клинику «Айболит» в августе 2015 г. Повод для обращения в клинику: сильный зуд и дискомфорт в области ушей, а также зловонный запах из ушей. По словам владельца, клинические признаки появились после купания собаки в заболоченном водоеме, примерно
месяц назад. Решение обратиться в клинику принято
после того, как у собаки, помимо вышеперечисленных
клинических признаков, появились «слуховые галлюцинации» — будучи в спокойном состоянии и находясь
в условиях тишины, она спонтанно подбегала к окну
и лаяла, словно слышала какой-то посторонний звук.
Диагностические исследования. Целостность барабанной перепонки была подтверждена результатами отоскопии; неврологический осмотр не выявил клинических признаков центрального или периферического вестибулярного синдрома, а также менингоэнцефалита.
Для визуальной диагностики структур среднего уха
была выполнена КТ (томограф «Picker PQ 6000», спиральное сканирование, толщина среза 1 мм, 150 kV, 
175 mAs) без введения КВ и с внутривенным контрастированием. В качестве контрастного агента выбран йогексол (омнипак, omnipaque, «Амершам Хелс, Корк»).
Йогексол в концентрации 350 мг/мл вводили в дозе 
700 мг/кг МТ, внутривенно болюсно. Для сравнительной оценки КТ изображений использовали данные ря
РВЖ • МДЖ • № 2/2016
11

УДК 619: 616.28-002: 616-072

КЛИНИЧЕСКИЙ СЛУЧАЙ

Е.Л. Кемельман (kemelman@yandex.ru), В.А. Санникова (viktorytory@mail.ru)
Клиника ветеринарной медицины «Айболит» (МО, г. Красногорск).

В статье описан клинический случай обнаружения с помощью КТ отолитов в барабанных пузырях у пятилетнего
ньюфаундленда с клиническими признаками наружного отита и нарушениями слуха.

Рис. Отолиты, визуализированные в барабанных пузырях, отмечены красными стрелками. Приведены два соседних среза, толщина 1,5 мм