Российский ветеринарный журнал. Мелкие домашние и дикие животные, 2016, № 1

2016

ISSN 5181514508

мелкие домашние 
и дикие животные

ÐÎÑÑÈÉÑÊÈÉ
ÂÅÒÅÐÈÍÀÐÍÛÉ
ÆÓÐÍÀË

Офтальмология

Онкология

Визуальные методы

Диетология

Новости науки и практики

Иммунология

Современные фармакои
биопрепараты

Содержание/Contents

Ðîññèéñêèé 
Âåòåðèíàðíûé 
Æóðíàë
Russian Veterinary Journal
1/2016

РВЖ • МДЖ • № 1/2016
3

ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ

Офтальмология

Шилкин А.Г., Ротанов Д.А., Павлова Т.Н., 
Артюшина Ю.Ю., Новикова К.А. 
Высокочастотный задний капсулорексис при ультразвуковой
микрохирургии врожденных катаракт у животных . . . . . . . . . . . . 6

Онкология

Кравцова В.С.
Распространенность мастоцитом у собак и кошек 
в Северо-Западном регионе России . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 10

Визуальные методы

Кемельман Е.Л., Волкова Е.М., Санникова В.А., 
Дюжева Ю.Д., Клименкова А.В., Навнычко Ю.Л. 
Использование компьютерной томографии 
для диагностики интракраниальных новообразований 
и оценка эффективности их консервативного лечения . . . . . . . . 13

ДИЕТОЛОГИЯ

Шевченко И.А. 
Сочетание влажного и сухого рациона — отличный вариант 
для кошек, которых не удержишь дома . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 16

Применение ветеринарной диеты Purina® Pro Plan®

Veterinary Diets HA canine . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 17

ОБЗОРЫ

Орлова С.Т., Сидорчук А.А. 
Новый взгляд на поствакцинальный иммунитет у собак и кошек.
Часть 2. Анализ данных, Анализ данных, полученных в экспериментах
по определению длительности иммунитета у собак . . . . . . . . . . 18

НОВОСТИ НАУКИ И ПРАКТИКИ

Итоги III Национальной Ветеринарной Конференции
(NVC 2015) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 24

Отчет о Первом Симпозиуме ветеринарных онкологов . . . . . . . . 26

СОВРЕМЕННЫЕ ФАРМАКО- И БИОПРЕПАРАТЫ

Taenzler J., Liebenberg J., Roepke R.K.A., Heckeroth A.R.
Профилактика передачи Babesia canis клещами 
Dermacentor reticulatus собакам, получавшим внутрь
жевательные таблетки флураланера (Бравекто™) . . . . . . . . . . . 29

Гусева Н.В. 
Лептоспироз собак — 
скрытая угроза современного мегаполиса . . . . . . . . . . . . . . . . . . 33

ПАМЯТНЫЕ ДАТЫ

Данилевская Н.В., Денисенко В.Н. 
К 90-летию со дня рождения В.М. Данилевского . . . . . . . . . . . . 36

ORIGINAL ARTICLES

Ophthalomology

Shilkin A.G., Rotanov D.A., Pavlova T.N., 
Artiushina J.J., Novikova K.A. 
High Frequency Posterior Capsulorhexis for Ultrasonic Microsurgery 
in Dogs and Cats with Congenital Cataracts . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6

Oncology

Kravtсova V.S. 
Incidence of Mast Cell Tumors in Dogs and Cats 
in the North-West Region of Russia . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 10

Visual methods

Kemelman Е.L., Volkova E.M., Sannikova V.A., 
Dyjeva Y.D., Klimenkova A.V., Navnichko Y.L. 
Use of CT for the Diagnosis of Intracranial 
Tumors and Assessment of the Effectiveness 
of Conservative Treatment . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 13

DIETOLOGY

Shevchenko I.A. 
Сombination of Moist and Dry Ration — Outstanding Version for 
the Cats, which You Will not Hold the House . . . . . . . . . . . . . . . . . . 16

Veterinary diet with Purina® Pro Plan®

Veterinary Diets HA Canine . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 17

REVIEWS

Orlova S.T., Sidorchuk A.A. 
A New Point of View on Vaccine-induced Immunity 
in Dogs and Cats. Part 2. A Review of Experimental Data 
on the Duration of Immunity of Canine Vaccines . . . . . . . . . . . . . . . 18

NEWS OF SCIENCE & PRACTICE

Results of III National Veterinary Conference 
(NVC 2015) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 24

First Symposium of the Veterinary Oncologists: Report. . . . . . . . 26

MODERN PHARMACOLOGICAL DRUGS & BIOPREPARATIONS

Taenzler J., Liebenberg J., Roepke R.K.A., Heckeroth A.R. 
Prevention of Transmission of Babesia canis
by Dermacentor reticulatus Ticks to Dogs Treated Orally 
with Fluralaner Chewable Tablets (Bravecto™) . . . . . . . . . . . . . . . . . 29

Guseva N.V. 
Leptospirosis in Dogs – 
the Hidden Danger of Modern Cities . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 33

MEMORABLE DATES

Danilevskaya N.V., Denisenko V.N. 
To the 90th anniversary of V.M. Danilevsky . . . . . . . . . . . . . . . . . . 36

Научно-практический журнал 
Издается с марта 2005 г.

Учредитель: Издательство «Логос Пресс»
Директор М.В. Гейне 
Издатель ИП Солодилов Е.В.
Руководитель проекта И.М. Шугурова, к.б.н.
Руководитель отдела маркетинга Е.В. Лебедева
Менеджер по маркетингу М.А. Шугуров
Компьютерный дизайн Я.В. Быстрова

Адрес редакции: 127018, Москва, ул. 2-я Ямская, 2
E-mail: info@logospress.ru, http://logospress-vet.ru
Тел.: +7/495/689-8516, +7/495/220-4816

Свидетельство о регистрации СМИ:
ПИ № ФС 77-57777 от 18.04.2014
Оформление подписки каталог «Почта России» 12604 (на год)

Журнал выпускается при участии
Учебно-методического объединения высших учебных заведений Российской
Федерации по образованию в области зоотехники и ветеринарии
Согласно рекомендациям Роскомнадзора выпуск и распространение 
издания допускается без размещения знака информационной продукции.
Воспроизведение материалов в любом виде, включая электронный, возможно только по письменному согласованию с издательством. Редакция не
несет ответственности за содержание рекламных материалов. Мнение
редакции не всегда совпадает с мнением авторов статей.
Рукописи, принятые на рассмотрение, редакция не возвращает.

Журнал выходит 
при поддержке

ООО «Биоконтроль», 
ИРСО, 
ВИТАР

Главный редактор

С.А. Ягников, докт. вет. наук, проф. (РУДН, Центр вет. хирургии «ВетПрофАльянс», Москва)

Выпускающий редактор

В.В. Ракитская (rakitskaya.vera@yandex.ru) 

Редакционная коллегия

Бажибина Е.Б., канд. вет. наук, эксперт в области лаб. диагностики (Сеть вет. клиник «Свой доктор», Москва)
Бардюкова Т.В., канд. биол. наук, эксперт в области кардиологии (Вет. клиника «Центр», Москва)
Василевич Ф.И., докт. вет. наук, академик РАН, проф., ректор ФГБОУ ВПО МГАВМиБ
Васильев Д.Б., докт. вет. наук, ведущий герпетолог Московского зоопарка 
Власов Н.А., докт. биол. наук, проф. (Федеральная служба по ветеринарному и фитосанитарному надзору)
Голубева В.А., канд. биол. наук, эксперт в области патоморфологии (Клиника экспериментальной терапии РОНЦ им. Н.Н. Блохина РАМН, Москва)
Данилевская Н.В., докт. биол. наук, проф., зав. кафедрой фармакологии и токсикологии ФГБОУ ВПО МГАВМиБ
Ермаков А.М., докт. биол. наук, проф., президент Донской ассоциации ветеринарных врачей (СКЗНИВИ, вет. клиника «Центр», Ростов-на-Дону)
Жаров А.В., докт. вет. наук, проф., эксперт в области патологической анатомии (ФГБОУ ВПО МГАВМиБ)
Зуева Н.М., канд. биол. наук, эксперт в области ультразвуковой диагностики болезней животных, президент Ветеринарного общества 
по методам визуальной диагностики (Вет. клиника «Центр», Москва)
Илларионова В.К., канд. биол. наук, эксперт в области кардиологии (Вет. клиника «Биоконтроль», Москва)
Козловская Н.Г., канд. биол. наук, помощник гл. редактора «РВЖ.МДЖ»
Корнюшенков Е.А., канд. биол. наук, эксперт в области анестезиологии, реаниматологии, интенсивной терапии (Клиника экспериментальной 
терапии РОНЦ им. Н.Н. Блохина РАМН, вет. клиника «Биоконтроль», Москва)
Кузнецова А.Л., канд. биол. наук, эксперт в области онкологии-химиотерапии (Клиника экспериментальной терапии РОНЦ им. Н.Н. Блохина
РАМН, вет.клиника «Биоконтроль»)
Кулешова Я.А., канд. вет. наук, эксперт в области хирургии и травматологии (Центр вет. хирургии «ВетПрофАльянс», Москва)
Лежандр А.М. DVM, MS, DACVIM, Professor of Internal Medicine & Oncology at the College of Veterinary Medicine, University of Tennessee
Максимов В.И., докт. биол. наук, проф., проректор УМО вузов РФ по образованию в области зоотехнии и ветеринарии, эксперт в области 
физиологии (ФГБОУ ВПО МГАВМиБ)
Митрохина Н.В., канд. вет. наук, эксперт в области патоморфологии (Москва)
Перепечаев К.А., канд. биол. наук, эксперт в области офтальмологии (Центр доктора Перепечаева. Москва)
Самошкин И.Б., докт. вет. наук, проф. (ФГБОУ ВПО МГАВМиБ, Центр травматологии животных ГУ «Мосветобъединение»)
Санин А.В., докт. биол. наук, проф., руководитель лаборатории клеточного иммунитета НИИЭМ им. Н.Ф. Гамалеи Минздравсоцразвития РФ (Москва)
Середа С.В., канд. вет. наук, президент Российской ассоциации практикующих ветеринарных врачей, действительный член WSAVA и FECAVA (Москва)
Сережина Л.А., эксперт в области терапии (вет. клиника «Биоконтроль», Москва)
Слесаренко Н.А., докт. биол. наук, проф., зав. кафедрой анатомии, гистологии и морфологии ФГБОУ ВПО МГАВМиБ.
Фролов В.В., докт. биол. наук, проф., эксперт в области стоматологии, ортодонтии, амбидекстрологии, челюстно-лицевой хирургии 
(СГСЭУ, вет. клиника «Центральная на Московской», Саратов)
Чернов А.В., канд. вет. наук, эксперт в области эндоскопических и малоинвазивных методов диагностики и лечения патологий животных 
(вет.клиника «Эндовет», г. Курган; «ВетЭндоШкола», г. Москва)
Шилкин А.Г., канд. мед. наук, эксперт в области офтальмологии (Центр ветеринарной офтальмологии доктора Шилкина А.Г., Москва),
лауреат премии «Золотой скальпель» (2014) и медали им. В.Н. Митина «За вклад в клиническую ветеринарную медицину» (2013)
Якунина М.Н., докт. вет. наук, эксперт в области общей онкологии (вет. клиника «Биоконтроль», Москва)

РВЖ • МДЖ • № 1/2016
5

Ключевые слова: врожденная катаракта, вторичная
катаракта, задний ультразвуковой высокочастотный капсулорексис, кошки, собаки
Сокращения: ВГД — внутриглазное давление, ЭРГ —
электроретинография, YAG — Yttrium aluminium
granat laser (лазер на алюмоиттриевом гранате)

Введение
Вторичная катаракта представляет собой помутнение задней капсулы хрусталика после его хирургического удаления. Частота формирования данной патологии после удаления врожденных помутнений хрусталика у домашних
животных очень высока; как правило, ее регистрируют
у молодых кошек и у собак с врожденной катарактой.
Вторичная катаракта развивается вследствие пролиферации оставшихся клеток эпителия и их миграции из экваториальной зоны в центральную оптическую [23]. Так
как рост указанных клеток ничем не ограничен, то чаще
всего они формируют непрозрачное утолщение задней
капсулы. У некоторых животных эпителиоциты постепенно приобретают шарообразную форму, образуя так
называемые «шары» Эльшнига при афакии или формируя капсулофиброз при артифакии. При осмотре переднего отрезка вторичная катаракта наблюдается в виде интенсивных беловато-серых помутнений разной формы
(звездчатых, очаговых, полосчатых и др.), неоднородной плотности, складок капсулы или, гораздо реже, —
округлых вакуолей, занимающих всю поверхность задней капсулы хрусталика [21]. По данным гистологических исследований, вторичные катаракты наиболее часто

состоят из волокнистой соединительной ткани различной степени зрелости, остатков хрусталикового вещества и капсулы, пигментных включений [20].
У животных, в отличие от человека, вторичные катаракты более выраженные, часто сопровождаются задними синехиями и формированием зрачковой пролиферативной мембраны. У собак и кошек с врожденными
заднекапсулярными катарактами задняя капсула прогрессирующе мутнеет и становится фиброзно измененной в процессе взросления организма (рис. 1). Подобные
изменения хрусталика могут наблюдаться при осложненных катарактах травматического и увеального генеза, особенно в молодом возрасте [16].
В нашей клинической практике установлено, что у
животных вторичная катаракта зачастую служит предрасполагающим фактором развития послеоперационного иридоциклита вследствие высокой реактивности иммунной системы и формирования зрачковой мембраны,
особенно на афакичных глазах у молодых животных [16].
В итоге, помутнение задней капсулы и воспалительные
процессы резко снижают зрение на оперированном глазу, как у человека, так и у животных, что нивелирует достигнутый эффект от операции [6, 8]. Существующие
методы профилактики помутнения задней капсулы —
интраоперационная механическая или вакуумная полировка задней капсулы и медикаментозная терапия —
оказались недостаточно эффективными [18, 19]. Лазерное лечение вторичной катаракты с применением YAGлазерной дисцизии (Yttrium aluminium granat laser) [17,
20]), широко используемое в медицине человека, в ветеринарии практического применения не получило. Учитывая частоту
возникновения вторичных катаракт,
проблема их хирургического лечения
у животных стоит очень остро.

УДК 619: 617.7: 616-08

Высокочастотный задний капсулорексис
при ультразвуковой микрохирургии
врожденных катаракт у собак и кошек

РВЖ • МДЖ • № 1/2016

ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ Офтальмология А.Г. Шилкин (eyevet@yandex.ru), Д.А. Ротанов, Т.Н. Павлова, Ю.Ю. Артюшина, К.А. Новикова.
«Центр ветеринарной офтальмологии доктора Шилкина А.Г.» (Москва).

Задний капсулорексис — эффективный и надежный метод хирургического лечения и профилактики образования
фиброзов задней капсулы. Сформированное отверстие в задней капсуле после операции остается оптически
чистым, рецидивы вторичной катаракты отсутствуют. При наличии достаточного микрохирургического
опыта врача данная методика проста, безопасна и сопряжена с малым числом осложнений.

Рис. 1. Врожденная катаракта у кота (возраст 9 мес)
с первичным выраженными помутнениями задней
капсулы хрусталика (отмечено стрелками), которые необходимо рассекать интраоперационно

Рис. 2. Факоэмульсификация катаракт и задний
высокочастотный капсулорексис выполняли с
применением операционного микроскопа со
светодиодной оптикой
Рис. 3. Наконечник для выполнения высокочастотного капсулорексиса

Высокочастотный задний капсулорексис при ультразвуковой микрохирургии врожденных катаракт у собак и кошек

В микрохирургии катаракты у человека существует
множество методов механического капсулорексиса —
интраоперационного рассечения задней капсулы хрусталика [1…3, 9…15]. Однако в ветеринарной офтальмологии эта манипуляция выполняется редко, особенно начинающими хирургами, из-за риска развития ряда
осложнений: выпадения стекловидного тела, линейного разрыва капсулы хрусталика, повышения ВГД.
Для лечения вторичной катаракты у мелких домашних
животных нами была разработана и с успехом внедрена в
клиническую практику методика ультразвукового аппаратного заднего капсулорексиса. Ее суть заключается в формировании отверстия в непрозрачной задней капсуле хрусталика путем радиочастотной капсулотомии, осуществляемой аппаратом портативной факоэмульсификационной
микрохирургической системы [16]. Однако результаты и возможные осложнения этой высокоэффективной методики при врожденной катаракте практически не описаны.

Цель исследования
Цель — анализ результатов и осложнений заднего высокочастотного капсулорексиса у животных с врожденной катарактой при ультразвуковой факоэмульсификации или
аспирации хрусталика.

Материалы и методы
В нашем центре за последние 3,5 года было прооперировано 27 глаз собак и кошек с врожденными катарактами,
возраст животных составлял от 2,5 мес до 1,5 лет. У 15
животных диагностированы заднекапсулярные катаракты
с наличием центрального фиброза задней капсулы или выраженных помутнений, требующих рассечения. Этим пациентам выполняли задний высокочастотный капсулорексис. В данной группе искусственный хрусталик имплантировали трем животным, у остальных имплантация была
невозможна из-за маленького размера глаза. У 12 животных прозрачную заднюю капсулу хрусталика не рассекали.
Факоэмульсификация катаракт и задний высокочастотный капсулорексис выполняли с использованием операционного микроскопа со светодиодной оптикой и коаксиальным освещением («Oertli», Швейцария). Во время операций увеличение микроскопа на разных этапах варьировалось от 6- до 16-кратного. осуществлялись системой (рис. 2).
Методика ультразвукового высокочастотного капсулорексиса по Клоти очень интересна и долгое время с успехом
применяется офтальмологами у людей. Суть ее состоит в
следующем: при касании капсулы хрусталика очень тонким
специальным наконечником (рис. 3) происходит локальное

испарение капсулы в месте контакта вследствие микроточечного высокочастотного нагрева. Капсулорексис осуществляется простым круговым движением вдоль капсулы
хрусталика на запланированном диаметре буквально в течение 30…40 с. При этом процедура безопасна, окружающие ткани не нагреваются и остаются интактными [16].
Операции ультразвукового высокочастотного капсулорексиса выполнялись под ингаляционной общей анестезией, с имплантацией и без имплантации искусственного
хрусталика (в зависимости от возраста животных и размера глаза). У 19 животных катаракту удаляли методом ультразвуковой факоэмульсификации через малый разрез 
(2,5 мм) по стандартной методике, у 9 животных — с помощью аспирации гелеобразного хрусталика [25].
На первом этапе операции, после выполнения двух парацентезов вводили в переднюю камеру мидриатики и вискоэластики. Передний капсулорексис осуществляли вручную или с помощью высокочастотного коагулятора. Плотное ядро хрусталика эмульсифицировали через разрез длиной 2,5 мм. Мягкий гелеобразный хрусталик аспирировали
с помощью бимануальной аспирационно-ирригационной
системы. Задний капсулорексис выполняли высокочастотным капсулотомом по Клоти следующим образом: в переднюю камеру вводили когезивный и адгезивный вискоэластик («Acrivet» или «Healon»). Под действием вискоэластика задняя капсула расправлялась, и на ней четко визуализировались зоны помутнения или звездчатого фиброза,
а также шварты между капсулой и стекловидным телом.
Наконечник высокочастотного капсулотома факоэмульсификатора вводили в заднюю камеру до непосредственного
контакта с мутной капсулой. Затем в позиции «Regular»
или «High» круговым движением в один этап проводили
капсулорексис запланированного диаметра (от 4 до 7 мм).
Максимальный диаметр капсулорексиса составлял при
афакии 6…7 мм, при артифакии — 4 мм. Меньший диаметр отверстия не позволяет полностью восстановить
зрительные функции и у молодых животных может приводить к фимозу капсулы с заращением отверстия. Капсулорексис выше 6 мм затрудняет имплантацию искусственного хрусталика, способствует его децентрации и
нестабильному положению. Помимо этого, рексис большого диаметра на афакичных глазах может провоцировать смещение стекловидного тела вперед и развитие вторичной глаукомы вследствие витреального блока.
Заднюю капсулу хрусталика удаляли предельно деликатно цанговым пинцетом. У кошек и, в особенности, у собак очень развита связка Вигера между капсулой и передней гиалоидной мембраной стекловидного тела, которая

РВЖ • МДЖ • № 1/2016
7

Рис. 4. Пациент — собака породы джек рассел терьер, возраст 9 мес. Врожденная осложненная катаракта в сочетании с альбинизмом, гетерохромией,
сублюксацией хрусталика и грыжей стекловидного тела в передней камере. По результату ЭРГ —
грубые нарушения функций сетчатки

Рис. 5. Проведение парацентеза микроножом
«копье Ангела». Видно резкое сужение зрачка
в ответ на парацентез

Рис. 6. Удаление передней капсулы с помощью высокочастотного переднего капсулорексиса. Пузырьки воздуха показывают окружность испарения передней капсулы в месте контакта с наконечником

А.Г. Шилкин, Д.А. Ротанов, Т.Н. Павлова, Ю.Ю. Артюшина, К.А. Новикова

при тракции может способствовать выпадению стекловидного тела в переднюю камеру. При имплантации искусственного хрусталика вначале осуществляли рексис. Далее
осторожно, чтобы избежать линейного разрыва капсулы,
имплантировали хрусталик. В определенной мере каждая такая манипуляция была сопряжена с некоторым риском, несмотря на эластичность и крепость капсулы у молодых животных. Искусственный хрусталик имплантировали в пространство между передним и задним капсулорексисом, вискоэластик полностью вымывали из передней
камеры. Разрез герметизировали прерывистыми узловыми
швами (нейлон 9/0). Существует ряд работ, описывающих
большую безопасность проведения рексиса после имплантации хрусталика под линзой [24]. Нам такая технология кажется более громоздкой и неудобной, несмотря на
такое преимущество, как безопасность манипуляции.
Этапы операции ультразвуковой факоэмульсификации катаракты с задним высочастотным капсулорексисом приведены на рисунках 4…11.

Результаты и обсуждение
При использовании аппаратного высокочастотного капсулорексиса отверстие в задней капсуле запланированного диаметра удалось достичь у 80 % пациентов (12 глаз).
У двух кошек и одной собаки с наличием зведчатого грубого фиброза при высокочастотном удалении задней капсулы сохранялись «мостики» — соединительнотканные

тяжи на задней капсуле хрусталика. Их рассекали интравитреальными ножницами. При этом у одной кошки произошло выпадение стекловидного тела в переднюю камеру, что потребовало передней витрэктомии с
отсечением волокон стекловидного тела. Другие интраоперационные осложнения отсутствовали.
У большинства оперированных животных состояние глаза стабилизировалось через один-два дня после операции.
Роговица была прозрачной, с наличием незначительного
отека в зоне разреза. У котят младше 6 мес первые несколько суток визуализировались мелкие единичные кровоизлияния на радужной оболочке. Легкое помутнение влаги и
присутствие нитей фибрина в передней камере отмечалось
на глазах пациентов преимущественно с сохранной задней
капсулой. Следует отметить, что у животных, которым
не проводили задний капсулорексис, послеоперационный
период протекал с более выраженноым выпотом фибрина в передней камере и образованием частичных задних сенехий. Это свидетельствует об определенном влиянии задней капсулы хрусталика на процессы внутриглазного фибринозного воспаления у молодых животных.
На глазах с выполненным капсулорексисом восстановление занимало меньше времени, и послеоперационный
период проходил спокойнее. Отмечали меньшее количество фибринозных тяжей и спаек. Сформированное
отверстие в задней капсуле сохраняло свою оптическую прозрачность, края оставались интактными. Перед
8
РВЖ • МДЖ • № 1/2016

Рис. 7. Витрэктомия — удаление стекловидного
тела из передней камеры
Рис. 8. Ультразвуковая эмульсификация хрусталика

Рис. 9. Задний высокочастотный капсулорексис
фиброза капсулы хрусталика. Четко видны пузырьки воздуха, образующиеся при испарении участков
задней капсулы в месте контакта с наконечником

Рис. 10. Осторожное удаление мутной задней
капсулы хрусталика

Рис 13. Глаз того же пациента спустя 1,5 месяца после выполнения факоэмулсификации врожденной катаракты с имплантацией искусственного хрусталика и задним капсулорексисом. Видны остатки мутной задней капсулы (отмечено стрелкой)

Рис. 11. Заключительный этап операции. Стрелками
показаны зоны переднего и заднего капсулорексиса. Через сформированное отверстие в задней
капсуле хорошо видны все детали глазного дна и
диск зрительного нерва. По периферии отверстия
детали глазного дна видны значительно хуже

Рис. 12. Пациент — собака, метис, возраст 11
месяцев, с врожденной катарактой и плотными центральными и периферическими включениями на хрусталике

Высокочастотный задний капсулорексис при ультразвуковой микрохирургии врожденных катаракт у собак и кошек

няя гиалоидная мембрана несколько уплотнялась, и у
части собак это уплотнение гиалоида внешне даже походило на прозрачную заднюю капсулу. Таковы примечательные особенности регенерации тканей у животных.
На двух глазах в течение послеоперационных 1,5 месяцев наблюдали развитие полного фимоза задней капсулы. За весь срок клинических наблюдений ни у одного
животного не произошло децентрации искусственного
хрусталика, линза стабильно сохраняла правильное положение (рис. 12, 13). Следует сказать, что у молодых животных после выполненного заднего высокочастотного
капсулорексиса ни в одном случае не возникло отслоения сетчатки. Мы сравнили результаты высокочастотного и ручного интраоперационного капсулорексиса по активности течения воспалительных проявлений, а также по их повреждающим реакциям на ткани глаза. Клинически значимой разницы у мелких домашних
животных нами не выявлено. Это еще раз подтверждает безопасность данной методики.
У всех пациентов после операции значение ВГД оставалось в пределах нормы. У 50 % животных с прозрачной
задней капсулой, которым не выполняли капсулорексис,
образовывались спайки капсулы, и развивалось ее постепенное помутнение различной выраженности. Задняя капсула уплотнялась и снижала свою прозрачность
постепенно, сроки развития вторичной катаракты составляли от 3 недель до нескольких месяцев. Выраженный
центральный фиброз, значительно снизивший зрительные функции после операции, сформировался в трех глазах (25 %) несмотря на применение стероидов и введения
активатора тканевого плазминогена TPA (tissue plasminogen activator) в переднюю камеру глаза во время и
после операции. Спустя 4 месяца после удаления хрусталика, для улучшения зрительных функций в данных глазах был осуществлен высокочастотный задний капсулорексис. У всех пациентов манипуляция прошла без интраоперационных осложнений. У двух животных зрение
частично восстановилось. В одном случае наблюдали развитие тяжелого рецидивирующего увеита, который до
настоящего времени контролируется медикаментозно
с периодически возникающими рецидивами.
Возможной альтернативой высокочастотному капсулорексису при удалении врожденной катаракты при афакии может послужить имплантация внутрикапсулярных колец, растягивающих заднюю капсулу. Однако,
насколько эта методика окажется эффективной — тема дальнейших исследований.

Заключение
Помутнения задней капсулы хрусталика являются одной
из ведущих причин снижения зрения у животных после
удаления врожденной катаракты. Задний интраоперационный высокочастотный капсулорексис — действенный
метод хирургического лечения и профилактики образования фиброзов задней капсулы. При наличии достаточного микрохирургического опыта врача данная методика
проста, безопасна и сопряжена с малым числом осложнений. Сформированное отверстие в задней капсуле после
операции остается оптически чистым, рецидивы вторичной катаракты отсутствуют. Методика рассечения задней
капсулы высокочастотным коагулятором существенно сокращает время манипуляции и позволяет добиться капсулорексиса запланированного диаметра у 80 % пациентов
с наличием фиброза задней капсулы и при высокой интен
сивности ее помутнения. На глазах с проведенным капсулорексисом восстановление занимало меньше времени, и послеоперационный период проходил спокойнее, чем
у животных с сохранной задней капсулой хрусталика. Единственным недостатком данной методики, сдерживающим
ее широкое применение в клинической практике, является высокая стоимость используемой аппаратуры.

Б и б л и о г р а ф и я
1. Apple, D.J. Surgical prevention of posterior capsule opacification. Part 1 / D.J. Apple, Q. Peng, N. Visessok,
L. Wenner, et al. // J. Cataract Refract. Surg. — 2000. — Vol. 26. — P. 180–187.
2. Apple, D.J. Posterior capsule opacification / D.J. Apple, K.D. Solomon, M.R. Tetz, et al. // Surv. Ophthalmol. — 1992. — Vol. 37. — No. 2. — P. 73–116.
3. Frezzotti, R. Pathogenesis of posterior capsule opacification. Part I. Epidemiological and clinicostatistical
data / R. Frezzotti, A. Caporossi // J. Cataract Refract. Surg. — 1990. — Vol. 16. — No. 3. — P. 347–352.
4. Framme, C. Retinal Complications after Damaging the Vitreolenticular Barrier / C. Framme, S. Wolf //
Ophthalmologica. — 2012. — Vol. 227. — P. 20–33.
5. Galand, A. Posterior capsulorhexis in adult eyes with intact and clear capsules / A. Galand, F. van Cauwenberge, J. Moosavi // J. Cataract Refract. Surg. — 1996. — Vol. 22. — No. 4. — P. 458–461.
6. Gibran, S.K. Primary posterior continuous capsulorhexis; a new technique / S.K. Gibran, S. Jungkim,
B. Patil // Br. J. Ophthalmol. — 2006. — Vol. 90. — No. 5. — P. 655–656.
7. Gimbel, H. Development, advantages and methods of continuous circular capsulorhexis technique /
H. Gimbel, T. Neuhann // J Cataract Refract Surg. — 1990. — Vol. 16. — P. 31–37.
8. Yazici, A. Macular thickness changes after phacoemulsification combined with primary posterior
curvilinear capsulorhexis / A. Yazici, E. Bozkurt // Eur. J. Ophthalmol. — 2010. — Vol. 20. — P. 376–380.
9. Балашевич, Л.И. К вопросу о безопасности и эффективности заднего капсулорексиса в профилактике вторичных катаракт / Л.И. Балашевич, К.В. Пензева, Ю.В. Тахтаев // Вестн. СПб
мед. акад. последипломн. образ. — 2011. — № 2. — С.43–48.
10. Балашевич, Л.И. Задний капсулорексис в ходе факоэмульсификации при прозрачной задней
капсуле хрусталика / Л.И. Балашевич, Ю.В. Тахтаев, А.Г. Радченко // Офтальмохирургия. — 
2008. — № 1. — С. 36–41.
11. Белый, Ю.А. Профилактика помутнений задней капсулы хрусталика после хирургии катаракты: обзор / Ю.А. Белый, А.В. Терещенко, М.В. Федотова // Рефракционная хирургия и офтальмология. — 2009. — № 3. — С. 4–10.
12. Бикбов, М.М. К вопросу об оптимальной технике проведения первичного заднего капсулорексиса. В кн. Современные технологии катарактальной и рефракционной хирургии / М.М.
Бикбов, А.А. Бикбулатова. — М., 2008. — C. 21–26.
13. Бикбов, М.М. Методы профилактики и лечения послеоперационного помутнения задней
капсулы хрусталика (обзор литературы) / М.М. Бикбов, А.А. Акмирзаев // РМЖ. Клиническая Офтальмология. — 2011. — №2. — С. 81 
14. Егорова, Е.В. Первичный задний капсулорексис при факоэмульсификации у пациентов с псевдоэксфолиативным синдромом / Е.В. Егорова, А.В. Бетке // Практическая медицина. — 2012ю —
№.4. — С. 271–273.
15. Зубарева, Л.Н. Овчинникова А.В. Новиков С.В. Способ профилактики вторичной катаракты /
Л.Н. Зубарева, А.В. Овчинникова, С.В. Новиков // Патент № 2209615 от 10.08.2003.
16. Исакова, И.А. Сравнительный анализ результатов лечения вторичной катаракты хирургическим
и лазерным методами / И.А. Исакова, Б.Г. Джаши // Вестник Оренбургского государственного
университета. — 2011. — № 14 (133). — С. 154–156
17. Канюков, В.Н. ИАГ лазерная дисцизия вторичной катаракты у детей / В.Н. Канюков, Ю.В. Канюкова, О.В. Кадникова. — Оренбург: Оренбургский филиал ФГУ «МНТК «Микрохирургия
глаза» имени академика С.Н.Федорова Росмедтехнологии». Интернет-ресурс: www.vseozrenii.ru.
Дата последнего обращения 10.01.2016.
18. Першин, К.Б. Некоторые современные аспекты лечения катаракты у детей / К.Б. Першин,
Н.Ф. Пашинова, А.В. Черкашина // Вопросы педиатрии. — 2012. — № 2. — С. 68–70.
19. Соловьев, Г.М. Задний капсулорексис — решение проблемы вторичных катаракт? В кн. Современные технологии катарактальной и рефракционной хирургии / Г.М. Соловьев, К.Б. Першин,
Н.Ф. Пашинова — М., 2005. — C. 258–262.
20. Стебнев, В.С. Непосредственные и отдаленные результаты первичного заднего капсулорексиса при факоэмульсификации / В.С. Стебнев, В.М. Малов, С.Д. Стебнев // Вестн. Оренбург.
гос. ун-та. — 2011. — № 14 (133). — С. 352–355.
21. Торопыгин, С.Г. Капсулотомия / капсулэктомия в факохирургии: эволюция развития и современная техника (сообщение второе) / С.Г. Торопыгин, Л.К. Мошетова // Вест. офтальмол. —
2010. — № 3. — С. 49–52.
22. Шилкин, А.Г. Высокочастотный задний капсулорексис при ультразвуковой факоэмульсификации катаракты у собак и кошек / А.Г. Шилкин, Д.А. Ротанов, Т.Н. Павлова, Ю.Ю. Артюшина,
К.А. Новикова / Материалы XXIV Московского международного ветеринарного конгресса. —
26–28 апреля, Москва, 2014. — С. 148–151
23. Шилкин, А.Г. Аспирация хрусталика у молодых животных при врожденной катаракте / А.Г. Шилкин, Д.А. Ротанов, Т.Н. Павлова, Ю.Ю. Артюшина // Материалы Третьего московского международного ветеринарного конгресса по офтальмологии. — Москва, 2015. — С. 34–36.

РВЖ • МДЖ • № 1/2016
9

SUMMARY
A.G. Shilkin, D.A. Rotanov, T.N. Pavlova, J.J. Artiushina, K.A. Novikova
Ophthalmologic Veterinary Center of DVM Shilkin A.G (Moscow).

High Frequency Posterior Capsulorhexis for Ultrasonic Microsurgery in Dogs
and Cats with Congenital Cataracts. Posterior capsulorhexis is an effective and
sure method of prevention of secondary posterior lens capsule clouding after cataract
phacoemulsification in dogs and cats. The certain size hole formation in posterior
lens capsule allows to acheve optical clarity and locate artificial lens in central position. Intraoperative sensitive capsulorhexis considerably improves functional visual
postoperative results, reduce trauma and number of the complications.
Keywords: congenital cataracts, secondary cataracts, posterior ultrasonic high
frequency capsulorhexis, cats, dogs.

Ключевые слова: кошки, мастоцитомы, собаки, степень дифференцировки

Введение
Мастоцитома — распространенное новообразование кожи
у собак и нередко встречается у кошек; относится к круглоклеточным новообразованиям и представляет собой опухоль из тучных клеток, располагающихся в дерме, подкожной жировой клетчатке, на слизистых оболочках ротовой и носовой полости, а также в других тканях.
По литературным данным, инцидентность мастоцитомы кожи составляет от 16 до 21 % [2, 3, 7]. Средний
возраст заболевших кошек и собак — 8…9 лет, однако,
для кошек выявлены два возрастных пика в зависимости от формы мастоцитомы [6]: 2,4 лет для гистиоцитарной формы и 10 лет для мастоцитарной формы.
Среди собак опухоль чаще отмечают у следующих пород: боксер, французский бульдог, бигль, бостон терьер, питбультерьер, шарпей, лабрадор ретривер, английский сеттер, а также у группы брахицефалических пород
собак и метисов. Хотя у боксеров повышенный риск возникновения мастоцитомы, обычно эти опухоли имеют
1-ю или 2-ю степень злокачественности и, соответственно, более благоприятный прогноз [1].
Опухоль также может поражать регионарные лимфоузлы, почки, печень, селезенку, костный мозг, легкие
вовлекаются редко. В этом случае возникает системный
мастоцитоз. По литературным данным, у собак при поражении внутренних органов более чем в 50 % случаев
вовлекается костный мозг [1], что сопровождается циркуляцией мастоцитов в периферической крови. Однако, висцеральный мастоцитоз в большей степени свойственен
кошкам, чем собакам. При этом, в отличие от собак, у кошек первично поражаются внутренние органы при отсутствии кожных форм. Часто обнаруживают поражение
селезенки (третье место после лимфомы и аденокарциномы). Соотношение частоты вовлечения внутренних органов у кошек, по литературным данным, %: печень — 90,
висцеральные лимфоузлы — 73, костный мозг — 40, легкие — 20, кишечник — 17. В 40 % случаев регистрируют наличие мастоцитов в периферической крови [7].
Локализация мастоцитом разнообразна. У кошек их
чаще всего обнаруживают на голове и шее, реже — на
туловище и конечностях; у собак — на туловище (50 %)

и конечностях (25…40 %), реже — на голове, шее (10 %),
слизистых оболочках [6].
Мастоцитомы могут выявляться как в виде единичного узла, так и в виде множественных очагов. Клиническое проявление опухоли зависит от степени злокачественности и локализации. Мастоцитому называют «великим
имитатором» за ее непредсказуемый внешний вид и биологическое поведение. Она может локализоваться в виде медленно растущей подвижной опухоли, четко отграниченной от здоровых тканей, а может стремительно
расти, быть с нечеткими краями, признаками воспаления,
или находиться подкожно или глубже. Чаще она представляет собой небольшое (до 3 см) новообразование, с воспалительной алопецией кожи. Иногда вокруг отмечают
гиперемию, отек и флюктуацию, а также болезненность
при пальпации. Мастоцитомы метастазируют лимфогенным и гематогенным путями. У собак при наличии кожных мастоцитом могут выявляться висцеральные мастоцитомы, сопровождающиеся соответствующей симптоматикой. У кошек при висцеральном поражении наличие кожных мастоцитом не характерно. Гистиоцитарная
форма мастоцитомы кошек способна спонтанно регрессировать, после чего животные считаются здоровыми.
Исходя из общепринятой гистологической классификации по Патнаик (1984), все мастоцитомы подразделяют на 3 типа, различающиеся своим биологическим поведением. Ниже представлена общая гистологическая
классификация мастоцитом собак по Bostock и Patnaik (табл. 1) [7]. В ряде случаев степень дифференцировки мастоцитомы можно предположить при цитологическом исследовании образцов.
У кошек большинство авторов [1, 6] различают две формы кожных мастоцитом: гистиоцитарную (атипичную)
и мастоцитарную. Гистиоцитарная встречается реже, в
основном, у более молодых животных, содержит только 20 % мастоцитов и способна спонтанно регрессировать в течение 4…24 месяцев. Мастоцитарная форма больше распространена, и у кошек в целом прогноз более благоприятный, по сравнению с собаками, метастатический
индекс составляет от 0 до 22 %. Мастоцитарные мастоцитомы большинство авторов подразделяют на два типа:

•
высоко дифференцированные: равномерные скопления групп слегка атипичных мастоцитов с круглым
базофильным ядром, слегка эозинофильной цито
УДК 619: 616-006

Распространенность мастоцитом у собак 
и кошек в Северо-Западном регионе России

РВЖ • МДЖ • № 1/2016

ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ Онкология В.С. Кравцова (lareinav@yandex.ru).
Ветеринарная клиника «Вега» (www.vcvega.ru) (СанктПетербург).

В статье представлена инцидентность мастоцитом у кошек и собак различных возрастных групп и пород в СевероЗападном регионе России, определено соотношение типов опухоли в исследуемых группах. Установлено, что чаще всего
мастоцитома встречается у животных в возрасте от 6 до 10 лет; наиболее распространенная локализация — на
голове у кошек и на туловище у собак. Наибольшая предрасположенность к заболеванию выявлена у французского бульдога.
Инцидентность высоко дифференцированных опухолей оказалась чуть выше, чем мастоцитом других типов. Отмечено,
что общее число гистологически исследованных случаев меньше, чем цитологически исследованных, в 2 раза, что можно
объяснить тремя причинами: на продвинутых стадиях болезни хирургическое лечение не используют и материал для
гистологического анализа не получают; врач не видит необходимости в гистологическом уточнении диагноза после
хирургического лечения; отказ владельца. Несмотря на относительную простоту установления диагноза, гистологическая
диагностика крайне важна для определения тактики лечения и прогноза заболевания.

Распространенность мастоцитом у собак и кошек в Северо-Западном регионе России

плазмой, четкими клеточными границами; эозинофилы встречаются только в половине случаев);

•
низко дифференцированные: менее четкая, инфильтрированная в подкожную клетчатку, клетки с большим
ядром (> 50 % диаметра клетки), 2…3 митоза в поле зрения, отмечены мононуклеарные и мультинуклеарный
гигантские клетки, эозинофилы встречаются чаще.
Некоторые авторы выделяют также и умеренно дифференцированные и плеоморфные мастоцитомы.

Цель исследования
Изучить распространенность мастоцитомы у кошек и
собак в Северо-Западном регионе России (Санкт-Петербург и Ленинградская область), охарактеризовать новообразования по эпизоотологическим и микроскопическим критериям и сравнить полученные результаты
с данными литературных источников.

Материалы и методы
Был проведен анализ заключений патоморфологического отделения клиники, при этом для оценки были отобраны все случаи мастоцитомы в период с 2012 по 2014 гг.
Изучены результаты цитологических исследований материала, полученного от 58 собак (возраст от 6 месяцев до
14,5 лет), 26 кошек (возраст от 8 месяцев до 20 лет), а также результаты гистологических исследований материала
от 25 собак (возраст 3...13 лет) и 12 кошек (возраст 1...15 лет).
Наиболее распространенные породы исследуемых собак: американский стафордширский терьер, боксер, лабрадор, ротвейлер, французский бульдог, шарпей.

Результаты и обсуждение
Возрастной критерий. Ниже приведены данные инцидентности мастоцитом у кошек и собак, согласно цитологическим и гистологическим исследованиям.
Цитологическая диагностика у кошек. Мастоцитомы наиболее часто регистрировали в возрасте 7 лет (11 %).
Однако, в возрастных группах до 5 лет, от 6 до 10 лет,
от 11 до 15 лет, от 16 лет, получены одинаковые результаты (около 25 % на группу). Самая молодая кошка была в возрасте 8 месяцев, самая старая — 20 лет.
Гистологическая диагностика у кошек. Из 12 животных 41, 66 % (n=5) приходилось на кошек старше 10 лет,
25 % (n=3) — на кошек моложе 3-х лет. Две кошки были
в возрасте 4 и 9 лет, по двум пациентам данных не было.
Цитологическая диагностика у собак. Диагноз
«мастоцитома» наиболее часто ставили у собак в возрасте 8 лет (n=9, около 1,5 %). По возрастным группам выявлены различия (табл. 2).
Гистологическая диагностика у собак. В целом, картина выглядит сходной с цитологической группой (табл. 3).
Таким образом, треть всех собак с мастоцитомой была в
возрасте от 7 до 9 лет, что соответствует литературным
данным. Самая молодая собака была в возрасте 6 месяцев, самая старая — 14,5 лет.
Половой критерий. Половых различий, как среди собак, так и среди кошек, обнаружено не было. Соотношение самцов и самок составило 1:1. Тем не менее, в одном

европейском исследовании сообщается о меньшей продолжительности жизни самцов собак по сравнению с
самками после химиотерапии [4].
Породный критерий. Проследить породную предрасположенность у кошек не представилось возможным
из-за отсутствия информации о породе в исследуемых
образцах. По сообщениям одних авторов, существует
предрасположенность сиамской породы к гистиоцитарной форме мастоцитомы, по другим — эта порода предрасположена к обеим формам [1].
В отношении собак также возникли трудности, так как
в четверти образцов не были указаны породные данные.
Предположительно, среди них были и метисы. Анализируя остальные 45 случаев, определили следующий порядок пород собак по инцидентности.
Сравнивая полученные нами данные с литературными, можно сказать, что в целом они совпадают, и отклонения (французский бульдог на первом месте) связаны,
вероятно, с большей распространенностью данной породы в исследуемой популяции (табл. 4).
Локализация.По этому критерию полученные данныеполностью совпадают с данными зарубежных авторов (табл. 5).
Следует отметить, что у кошек более половины опухолей, локализующихся на голове, были выявлены в облас
РВЖ • МДЖ • № 1/2016
11

1. Гистологическая классификация мастоцитом собак по Bostock и Patnaik

Мастоцитома
Градация
Морфология клеток
по Bostock
по Patnaik

Анапластическая/ низко дифференцированная
1
3
Частые митотические фигуры; плохо ограниченная цитоплазма, несимметричные ядра, редкие гранулы

Промежуточная/ средне дифференцированная
2
2
Редкие митозы; отношение ядро/цитоплазма меньше, чем у анапластического типа. 
Среднее количество гранул

Высоко дифференцированная
3
1
Редкие митотические фигуры; большие гранулы, овоидные или сферические ядра, ограниченная 
цитоплазма

2. Инцидентность мастоцитомы у собак по возрастным группам
(цитологическая диагностика)

Возрастная
группа

Число собак с мастоцитомой в группе / доля, %, 
по отношению к больным собакам всех возрастных групп

До 5 лет
11 / 18,97

От 6 до 10 лет
27 / 46,55

От 10 лет
14 / 24,14

От 7 до 9 лет
19 / 32,76

3. Инцидентность мастоцитомы у собак по возрастным группам 
(гистологическая диагностика)

Возрастная
группа

Число собак с мастоцитомой в группе / доля, %, 
по отношению к больным собакам всех возрастных групп

До 5 лет
5 / 20

От 6 до 10 лет
12 / 48

От 10 лет
2 / 12

Нет данных
5 / 20

4. Инцидентность мастоцитомы у собак по породам

Порода

Число собак с мастоцитомой / доля, %,
по отношению к больным собакам 
всех пород

Французский бульдог
7 / 15,56

Лабрадор
5 / 11,11

Американский стафордширский терьер
5 / 11,11

Шарпей
3 / 6,67

Ротвейлер
2 / 4,44

Боксер
2 / 4,44

Аргентинский дог
1 / 2,22

Вольфшпиц
1 / 2,22

Кавказская овчарка
1 / 2,22

Бордосский дог
1 / 2,22

Голден ретривер
1 / 2,22

Йоркширский терьер
1 / 2,22

Доберман
1 / 2,22

Мопс
1 / 2,22

Китайская хохлатая
1 / 2,22

Канекорсо
1 / 2,22

Шитцу
1 / 2,22

Питбультерьер
1 / 2,22

Спаниель
1 / 2,22

Шпиц
1 / 2,22

Такса
1 / 2,22

Бурбуль
1 / 2,22

Метис
5 / 11,11