Российский ветеринарный журнал. Мелкие домашние и дикие животные, 2005, № 2

Учредитель ООО «Издательство «КолосС»

Ежеквартальный научно-практический журнал,
основан в 2005 году

ГГГГГлавный р
лавный р
лавный р
лавный р
лавный редакт
едакт
едакт
едакт
едактор
ор
ор
ор
ор
Б.Ф. ШУЛЯК канд. вет. наук
РРРРРедакт
едакт
едакт
едакт
едактор
ор
ор
ор
ор
В.В. РАКИТСКАЯ

ГГГГГлавный на
лавный на
лавный на
лавный на
лавный наууууучный к
чный к
чный к
чный к
чный конс
онс
онс
онс
онсуууууль
ль
ль
ль
льтттттант
ант
ант
ант
ант
В.Н. МИТИН д-р биол. наук, канд. вет. наук, акад. РАЕН

РРРРРедакционная к
едакционная к
едакционная к
едакционная к
едакционная коооооллегия:
ллегия:
ллегия:
ллегия:
ллегия:
АКБАЕВ М.Ш., д-р вет. наук, заслуженный деятель науки
РФ (МГАВМиБ);
БЕЛОВА А.М., д-р биол. наук (СПбГАВМ);
ВЛАСОВ Н.А., д-р биол. наук, лауреат премии Ленинского
комсомола и Правительства РФ, зам. руководителя
Управления ветеринарного надзора Федеральной службы
по ветеринарному и фитосанитарному надзору РФ;
ЖАРОВ А.В., д-р вет. наук, заслуженный деятель науки РФ,
член правления Международного союза ассоциаций
патологоанатомов (МГАВМ и Б);
ЗОРИНА А.И., канд. мед. наук;
ЗУЕВА Н.М., канд. биол. наук (клиника «Центр», Москва);
КОЗЛОВСКАЯ Н.Г., канд. биол. наук (клиника экспериментальной терапии РОНЦ им. Н.Н. Блохина РАМН);
КОМОЛОВ А.Г., Президент ветеринарного кардиологического общества;
ЛЕЖАНДР А.М., д-р вет. наук, профессор (Ветеринарный
колледж университета Теннеси, США);
МЕНДОСА-ИСТРАТОВ С. Л., Президент Хирургического
ветеринарного общества;
САМОШКИН А.Б., д-р вет. наук, член-корр. МАИ;
САНИН А.В., д-р биол. наук (НИИЭМ им. Гамалеи);
СЕРЕДА С.В., Президент Ассоциации практикующих
ветеринарных врачей, заслуженный ветеринарный врач РФ;
ТКАЧЕВ-КУЗЬМИН А.В, Президент Российской
ветеринарной ассоциации;
ФИЛИППОВ Ю.И., канд. вет. наук (МГАВМ и Б);
ШУСТРОВА М.В., д-р вет. наук (СПб ГАВМ);
ЯГНИКОВ С.А., канд. биол. наук (клиника экспериментальной терапии РОНЦ им. Н.Н. Блохина РАМН)

Допеча
Допеча
Допеча
Допеча
Допечатная по
тная по
тная по
тная по
тная подг
дг
дг
дг
дгооооотттттовк
овк
овк
овк
овкааааа — Н.А. Зубкова, В.И. Хромихина
КККККорр
орр
орр
орр
оррект
ект
ект
ект
ектор
ор
ор
ор
ор — О.М. Стерлядникова

Адр
Адр
Адр
Адр
Адрес р
ес р
ес р
ес р
ес редакции:
едакции:
едакции:
едакции:
едакции:
129090, Москва, Астраханский пер., д. 8, стр. 1.
Телефон (многоканальный)/факс: (095) 680—14—63
E-mail: rvg2005@rambler.ru

ТТТТТррррребования к м
ебования к м
ебования к м
ебования к м
ебования к мак
ак
ак
ак
акету р
ету р
ету р
ету р
ету рекламы:
екламы:
екламы:
екламы:
екламы:
Формат страницы до обреза 210 × 300
Формат страницы после обреза 205 × 290
Формат 1/2 полосы:
горизонтальная 179 × 120
вертикальная 87 × 2240
Программы Photoshop (tif, 300 dpi)

Регистрационный номер ПИ № ФС77-19581 от 16.03.05
Подписано в печать 30.03.05
Формат 60 × 901/8
Печать офсетная
Усл. печ. л. 6,0
Тираж 3000 экз.
Отпечатано в ОАО «Чебоксарская типография №1»
© Издательство «КолосС», 2005

Редакция не несет ответственности за содержание реклам и
объявлений.
Мнение редакции на всегда совпадает с мнением авторов статей.
Журнал зарегистрирован Федеральной службой по надзору за
соблюдением законодательства в сфере массовых коммуникаций
и охране культурного наследия

ÍÀØÈ ÈÍÔÎÐÌÀÖÈÎÍÍÛÅ ÏÀÐÒÍÅÐÛ

Информ
Информ
Информ
Информ
Информация для авт
ация для авт
ация для авт
ация для авт
ация для авторов
оров
оров
оров
оров
Редакция РВЖ принимает для публикаций материалы в электронном
виде и на твердом носителе: текст — в Microsoft Word (RTF), иллюстрации —
в Phitoshop (TIF или JPEG 300...500 dpi)
Под заголовком статьи каждый автор указывает свои ФИО, место работы, должность, ученую степень, ученое звание. В конце статьи помещают заключение, список библиографических источников и резюме на английском языке (не более 500 знаков).
В Приложении авторам необходимо привести контактную информацию (номера телефонов, почтовые адреса и E-mail), а также подкрепленное подписями письменное подтверждение того, что переданные в РВЖ
материалы (включая иллюстрации) ранее нигде не публиковались.
Кроме того, отдельно следует указать, согласны ли авторы на перепечатку своей статьи информационными партнерами РВЖ без выплаты дополнительного гонорара.
РВЖ выплачивает гонорар через 1 мес после публикации материалов.

Дорогие читатели!
«Российский ветеринарный журнал» — самый молодой среди периодических изданий для ветеринарных
врачей, занимающихся проблемами мелких домашних
и диких животных. Прошло всего 3 мес со дня его рождения, но он уже стал узнаваем и любим многими читателями. Ими не остались незамеченными актуальность
тем публикаций, их практическая значимость, высокое
качество перевода зарубежных статей, редакторской
обработки текстов, дизайна и полиграфии.
В этом номере Вы узнаете о губчатых энцефалопатиях собак и кошек, распространении наиболее опасных
гельминтозоонозов в Российской Федерации, методах
трансплантации искусственной роговицы и декомпрессионного лечения межпозвонковой грыжи, необычном
способе лечения остеосарком, интересном случае гемангиосаркомы мочевого пузыря, наследственной дисплазии почек бульмастифа, ранней диагностике мочекаменной болезни, диагностике, лечении и профилактике сахарного диабета и сердечной недостаточности собак,
клапанной предсердножелудочковой недостаточности
питона, герпесвирусном гематопоэтическом некрозе золотых рыбок.
Желаем Вам успехов в профессиональной деятельности.
Шуляк Б.Ф.,
главный редактор «Российского ветеринарного журнала»

НОВИНКИ ИЗДАТЕЛЬСТВА «КОЛОСС»

Ультразвуковая диагностика
внутренних болезней
мелких домашних животных.
А.М. Шабанов, А.И. Зорина,
А.А. ТкачевКузьмин, Н.М. Зуева, Н.А.
Кайдановская
Для студентов вузов по специальности
«Ветеринария», ветеринарных специалистов.

Доврачебная помощь
мелким домашним животным.
В.Н. Митин
Для любителей животных,
специалистовкинологов,
фелинологов, орнитологов.

Вирусные болезни кошек.
А.А. Сулимов
Для ветеринарных врачей
и научных работниковвирусологов.

РОССИЙСКИЙ
ВЕТЕРИНАРНЫЙ
ЖУРНАЛ
N¹ 2/2005

мелкие домашние и дикие животные

ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ

ОФТАЛЬМОЛОГИЯ
Шилкин А.Г., Олейник В.В. Пересадка искусственной
роговицы — перспективный метод лечения тяжелых
поражений глаз у собак и кошек
2

ОНКОЛОГИЯ
Митин В.Н., Хохлов В.Ф., Кулаков В.Н., Зайцев В.К.,
Портнов А.А., Швед В.С., Козловская Н.Г.,
Ягников С.А., Шейно И.Н. Реплантация пораженной остеосаркомой кости, подвергнутой нейтронозахватной терапии
5
Липтак Дж.M., Дернел В.С., Витроу С.Дж.
Гемангиосаркома мочевого пузыря у собаки
9

ОРТОПЕДИЯ
Гаранин Д.В., Карелин М.С., МендосаИстратов С.Л.
Наш опыт хирургического лечения грыжи
межпозвоночного диска у собак
12

НЕФРОЛОГИЯ
Громова О.В., Челночников Д.Ю. Ранняя диагностика
мочекаменной болезни у кошек и собак
15
Абрахам Л.A., Бекк К., Слокомбе Р.Ф. Дисплазия почек
и инфекция мочевыводящих путей у щенка бульмастифа
17

КАРДИОЛОГИЯ
МартинезАлкайн M.A., Инарайя Е., Корбера Дж.А.,
Монтойя Дж.А. Кратковременное лечение собак
с сердечной недостаточностью буметанидом,
квинаприлом и кормом с низкой концентрацией натрия
20
Ришниф M., Кармел Б.П. Клапанная
предсердножелудочковая и застойная сердечная
недостаточность у коврового питона
23

ГЕЛЬМИНТОЛОГИЯ
Архипов И.А.,Зейналов О.А., Кокорина Л.М.,
Авданина Д.А., Лихотина С.В. Распространение
гельминтозов собак и кошек в России и применение
Празитела для борьбы с ними
26

ВИРУСОЛОГИЯ
Стефенс Ф.Дж.,  Рейдал С.Р., Джонс Б. Гематопоэтический некроз золотых рыбок (Carassius auratus), ассоциированный с агентом, имеющим морфологию герпесвируса
32

ПРИОНОЛОГИЯ
Эгер К.E., Хакстейбл К.Р.Р., Честер З.К., Саммерс Б.А.
Случай заболевания молодого ротвейлера, сопровождавшийся прогрессирующим тетрапарезом, параличом гортани,
вакуолизацией нейронов и дегенерацией аксонов
34

СОВРЕМЕННЫЕ  МЕТОДЫ  ДИАГНОСТИКИ
Арнопольская А.М., Ягников С.А. Выявление
нейроспецифических белков в сыворотке крови
и ликворе у собак при оценке проницаемости ГЭБ
38
Обухов И.Л., Яралова Е.А. Молекулярная диагностика
инфекционных заболеваний кошек и собак
40

ОБЗОРЫ

Шуляк Б.Ф.  Губчатая энцефалопатия кошек
42
Зорина А.И. Сахарный диабет у собак и кошек
44

ORIGINAL ARTICLES

OPHTHALMOLOGY
Shilkin A.G., Oleinik V.V. Grafting the artificial
cornea is perspective method of therapy of severe eye’s
lesions of dogs & cats
2

ONCOLOGY
Mitin V.N., Hohlov V.F., Kulakov V.N., Zaicev V.K.,
Portnov A.A., Shved V.S., Kozlovskaia N.G., Iagnikov S.A.,
Sheino I.N. Replantation of the bone affected
by osteosarcoma and BNCT
5
Liptak J. M., Dernell  W.S., Withrow S.J.
Haemangiosarcoma of the urinary bladder in a dog
9

ORTHOPEDY
Garanin D.V., Karelin M.S., MendozaIstratov S.L.
Our experience of surgical treatment of intervertebral
disk herniation in dogs
12

NEPHROLOGY
Gromova O.V., Chelnochnikov D.U. The early diagnostic
of urolythiasis in dogs & cats
15
Abraham L.A., Beck C., Slocombe R.F. Renal dysplasia
and urinary tract infection in a Bull Mastiff puppy
17

CARDIOLOGY
MartinezAlcaine M.A., Ynaraja E., Corbera J.A.,
Montoya J.A. Effect of shortterm treatment with
bumetanide, quinapril and lowsodium diet on dogs
with moderate congestive heart failure
20
Rishniv M., Carmel B.P. Atrioventricular valvular
insufficiency and congestive heart failure in
a carpet python
23

HELMINTHOLOGY
Archipov I.А.,Zeinalov О.А., Kokorina L.М.,
Avdanina D.А., Lichotina S.V. Spreading of the dog
and cat helminthes in Russia and usage of Prazitel
to its control
26

VIROLOGY
Stephens F.J., Raidal S.R., Jones B. Haematopoietic
necrosis in a goldfish (Carassius auratus) associated
with an agent morphologically similar to herpesvirus
32

PRIONOLOGY
Eger C.E., Huxtable C.R.R., Chester Z.C., Summers B.A.
Progressive tetraparesis and laryngeal paralysis
in a young Rottweiler with neuronal vacuolation
and axonal degeneration: an Australian case
34

СONTEMPORARY  DIAGNOSTIC  METHODS
Arnopolskaya A.M.,Yagnikov S.A. Determination of
neurospecifical proteins in the blood and cerebrospinal fluid
of dogs to value the penetrability of the bloodbrain barrier
38
Obouhov I.L., Yaralova  E.A. Molecular diagnostic
of infection diseases of cats & dogs
40

REVIEWS

Schuliak B.F. Feline spongiform encephalopathy
42
Zorina A.I. Diabetes mellitus in dogs & cats
44

ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ      ОФТАЛЬМОЛОГИЯ

Ключевые слова: офтальмология, трансплантация органов и тканей, язва роговицы

Сокращения: ЯР — язва(ы) роговицы

Введение

Септические ЯР у мелких домашних животных (рис. 1)
относят к числу наиболее тяжелых офтальмологических заболеваний.
Опасность гнойных ЯР (рис. 2) обусловлена острым, а зачастую и молниеносным течением патологического процесса, развитием множества осложнений, приводящих к слепоте
или потере глаза, а также возможностью перехода инфекции
с пораженного глаза на здоровый вследствие симпатической
офтальмии.
Основные факторы риска развития септических язвенных
кератитов — острые и хронические бактериальные конъюнктивиты [2], инфицированные травмы [4] и повреждения роговицы, инородные тела роговицы или третьего века, длительное местное применение кортикостероидных препаратов, синдром сухого глаза, ампутация или частичная резекция третьего
века при операциях по удалению аденомы третьего века, завороты век и дистрихиазис, вирусные заболевания глаз [10].
Породная предрасположенность также имеет важное значение в возникновении ЯР. По нашим наблюдениям, более 70 %
случаев гнойных ЯР возникает у собак брахицефалических
пород (пекинес, мопс, шитцу, французский бульдог). Среди
кошек наиболее часто ЯР развиваются у персидской породы
(около 20 % всех случаев).
Пик заболеваемости приходится на лето и осень, т.к. в этот
период у собак и кошек возрастает частота травмирования
роговицы инородными телами, контаминированными патогенной микрофлорой. Среди возбудителей инфекций глаз

преобладают бактериальные агенты. Наиболее агрессивно по
отношению к тканям роговицы ведут себя синегнойная и кишечная палочки [3]. Септические ЯР, вызванные этими бактериями, как правило, протекают молниеносно и приводят к
перфорации глазного яблока в течение 2…3 дней. Подобную
динамику патологического процесса отмечают медицинские
офтальмологи [2].
Лечение тяжелых глубоких ЯР и десцеметоцеле на сегодняшний день остается одной из актуальных проблем ветеринарной офтальмологии. Несмотря на внедрение большого
числа новых антибактериальных и стимулирующих регенерацию роговицы препаратов, эти заболевания встречаются у
животных все чаще. Необоснованная местная антибиотикотерапия при дегенеративных и ксеротических ЯР, назначаемая без учета особенностей их этиопатогенеза, длительное
применение стероидов (особенно производных дексаи бетаметазона) при бактериальных кератоконъюнктивитах приводит к образованию нейротрофических ЯР. Для них характерны тяжесть клинического течения и склонность к перфорации роговой оболочки [11]. Медикаментозное лечение таких
ЯР длительно и не всегда удачно изза рецидивов патологического процесса (особенно у брахицефалических пород).
Операция послойной кератопластики — это единственный эффективный метод лечения обширных ЯР у собак и кошек. Ее успех напрямую зависит от трансплантируемого материала [5]. До недавнего времени мы применяли с этой целью аутоткани в виде конъюнктивального лоскута и
аллоткани — донорскую роговицу животных. Эти способы
имеют существенные недостатки. Используемый для послойной кератопластики конъюнктивальный лоскут часто отторгается, а в случае приживления образуется грубое бельмо роговицы. При использовании аллоткани донор и реципиент
должны быть одной породы [9]. Но даже при соблюдении данного требования мы в ряде случаев наблюдали иммунологический конфликт между тканями донора и реципиента. Серьезную трудность представляет собой поиск свежего донорского материала, поскольку оперировать в большинстве
случаев приходится в экстренном порядке. Часть животных,
взятых в качестве доноров роговицы из приемников для усыпления, была заражена вирусом герпеса. Это вызывало серьезные осложнения в послеоперационном периоде в виде развития герпетической инфекции глаз, кератоувеитов, отторжения или помутнения трансплантата. Использование
донорской роговицы — эффективный метод, но он требует серьезной материальной и исследовательской базы.
Вышеперечисленные сложности вынудили нас искать другие материалы для трансплантации. Таким новым перспективным материалом оказались искусственные рассасывающиеся биотрансплантаты роговицы австралийской фирмы Сook
(рис. 3). Искусственная роговица обладает слабой антигенностью, хорошо приживается у животных любой породы, практически не вызывает реакции отторжения трансплантата. ОсПересадка искусственной
роговицы — перспективный метод
лечения тяжелых поражений
глаз у собак и кошек

А.Г. Шилкин, В.В. Олейник, Центр ветеринарной офтальмологии
и микрохирургии глаза «Эскулап» (г. Москва)

Рис. 1. Септическая ЯР и кератомаляция у 5летнего пекинеса, при которых необходима немедленная пересадка роговицы.
Окраска флюоресцином

Рис. 2. Септический панофтальмит у кошки 3 лет, вызванный прободной ЯР. Необходима немедленная энуклеация

УДК 617.713-089.843:619

РВЖ    МДЖ  №22005

новой для изготовления биотрансплантатов служит подслизистый слой тонкого отдела кишечника свиньи. В течение трех лет нами было
выполнено более 250 операций по трансплантации искусственной роговицы. Показаниями к операции служили:
1) ЯР и рецидивирующие секвестры. В этих случаях, чтобы предотвратить перфорацию роговицы и сохранить глаз, необходима экстренная трансплантация;
2) нейротрофические ЯР, тяжелые формы вирусных кератитов в случаях неэффективности медикаментозного лечения и рецидивов этих заболеваний;
3) глубокие дермоиды роговицы и кератоконъюнктивальные новообразования.

Техническое оснащение

Кератопластику выполняем под операционным микроскопом с коаксиальным и боковым освещением (рис. 4). Увеличение на разных этапах операции меняем от 6до 15кратного. Роговицу иссекаем трепанами диаметром 6…12 мм с дозируемой глубиной режущей кромки и шагом в 10 микрон.

боких ЯР глубина режущей кромки трепана может достигать
450 микрон. Глубину и равномерность насечки контролируют, подняв трепан. Затем при большом увеличении микроскопа доводят трепанацию до необходимой глубины, которую
следует ограничивать десцеметовой оболочкой, чтобы избежать вскрытия передней камеры.
Начало расслаивания патологически измененных тканей —
важный этап операции. Его начинают в верхнемедиальном сегменте (11…12 ч). Край роговичного диска, образовавшегося после
трепанации, захватывают пинцетом «колибри» кверху и от себя.
Не оказывая избыточного давления, круглым лейкосапфировым
ножом расслаивают роговицу в верхнем сегменте (рис. 7).
Осторожными маятникообразными боковыми движениями расщепляют наружные слои роговицы. Рабочую плоскость ножа необходимо направлять параллельно кривизне
роговицы, чтобы избежать перфорации передней камеры. Расслаивание ведут закрытым тоннельным способом под большим увеличением микроскопа.
В описываемом случае после удаления поверхностного слоя
пораженной роговицы установили, что секвестрация проникает
глубоко в ее строму. В глубоких слоях роговицы по периферии секвестра выявили диффузную пигментацию, которая не
исчезла после удаления поверхностных слоев роговицы
(рис. 8).
Секвестрированные слои роговицы удаляют послойно
(рис. 9). При глубоких секвестрах удаляют до 7…8 слоев.
Каждый последующий слой должен быть тоньше предыдущего. Вблизи от десцеметовой оболочки толщина снимаемого слоя не превышает 50 микрон (рис. 10).
В данном случае глубина и диаметр операционной зоны
весьма обширны. Строма роговицы удалена на глубину более
3/4, практически до десцеметовой оболочки. Регенерация
столь обширного дефекта крайне затруднена. В этой ситуации необходима пересадка искусственной роговицы (рис. 11).
Поверхность роговичного ложа для трансплантата должна быть идеально ровная, что обеспечивает плотный контакт
и снижает риск осложнений. Для выкраивания трансплантаРис. 3. Искусственный биотрансплантат роговицы

Рис. 4. Операционный микроскоп

Рис. 5. Рецидивирующий
обширный секвестр у кошки
5 лет

Ткани роговицы расслаиваем лейкосапфировыми округлыми микроножами. В качестве шовного материала используем нити (8/0…10/0) из нейлона или виргинского шелка с
атравматическими глазными иглами.
Переднюю послойную кератопластику проводим по медицинской методике Дронова в нашей модификации. В данной статье мы описываем технику операции с использованием искусственной роговицы у 5летней кошки с рецидивирующим обширным и глубоким секвестром роговицы (рис. 5).
Ранее этой кошке удалили секвестр стандартным методом
суперфициальной кератэктомии. Через 8 мес у нее возник рецидив секвестра. Наличие на его периферии обширной зоны
диффузной пигментации указывало на распространение патологического процесса на периферическую зону роговицы,
что требовало удаления не только секвестра, но и прилегающих пораженных тканей.

Этапы операции

При минимальном увеличении микроскопа трепан соответствующего диаметра устанавливают отвесно к поверхности роговицы. Легко надавливая на эпителий, маркируют зону
планируемой трепанации. Вращающими движениями проводят несквозное трепанирование роговицы (рис. 6). При глуРис. 6. Несквозная трепанация
роговицы
Рис. 7. Начало расслаивания секвестрированных тканей роговицы
лейкосапфировым микроножом

Рис. 8. Поверхностные слои роговицы удалены, четко видна
секвестрация ее глубоких слоев

Рис. 9. Удаленный секвестр. В
его краевой зоне видна диффузная пигментация

ОФТАЛЬМОЛОГИЯ

ОФТАЛЬМОЛОГИЯ

та в данном случае использовали трепан (если ложе не округлое, его выкраивают микроножницами соответственно форме раневой поверхности). На сформированное ложе помещают трансплантат и фиксируют его 4 направляющими швами
в дорсальном, латеральном, вентральном и медиальном сегментах роговицы (рис. 12).
Затем на роговицу дополнительно накладывают фиксирующие одиночные узловатые швы. Швы должны быть равномерно натянуты, иначе трансплантат может сместиться.
Для фиксации искусственной роговицы предпочтительнее накладывать одиночные узловатые швы. Если использовать непрерывный обвивной шов, то его прорезание даже в одном
месте может привести к отрыву трансплантата. На завершающем этапе операции на роговицу наложили 17 узловатых
швов (рис. 13). После фиксации трансплантата субконъюнктивально вводят амикацин или гентамицин.

Осложнения при операции

Передняя послойная кератопластика с использованием
трансплантата сопровождается незначительной травматизацией тканей глаза. В целом количество осложнений при данной операции не превышает 12 %. Учитывая чрезвычайно
сложный и тяжелый характер патологий, такой процент осложнений, на наш взгляд, не следует считать высоким.

Послеоперационный период

В этот период назначаем глазные капли ципровет (по одной капле 4…8 раз в день в зависимости от тяжести процесса)
[6, 7], стимуляторы регенерации роговицы — офтагель или
актовегин гель (по 1 капле 6 раз в день) [1]. При кератоувеитах дополнительно местно применяем мидриатики — цикломед, атромед [4]. Системно вводим антибиотики цефалоспоринового ряда (цефазолин, кетоцеф) и фторхинолоны (ломфлокс, таваник) [4].
В послеоперационный период у большинства животных
трансплантат адаптируется к роговичному ложу, глубина передней камеры сохраняется в пределах физиологической нормы. Трансплантат приживляется к роговице реципиента в
среднем за 10 дней. В сроки от 12 до 20 дней, в зависимости от
толщины и диаметра трансплантата, происходит его активная васкуляризация, улучшающая трофику тканей роговицы
и способствующая активной биоинтеграции трансплантата.
Швы с роговицы снимают в среднем через 1 мес после операции, а процесс полной биодеструкции трансплантата занимает от 18 дней до 2 мес.

Рис. 12. Фиксация трансплантата к роговице с помощью направляющих швов

Рис. 13. Завершающий этап операции — трансплантат полностью фиксирован к роговице реципиента

Восстановление прозрачности роговицы у прооперированных животных во многом зависит от двух факторов: ее предоперационного состояния и диаметра используемого трансплантата. Отсутствие глубоких поражений роговицы в сочетании с небольшим диаметром искусственного трансплантата (менее 5 мм)
у большинства животных ведет к полному восстановлению прозрачности роговицы и зрения (рис. 14). Чтобы повысить прозрачность роговицы, после снятия швов назначаем животным
курс глюкокортикоидов и иммунодепрессантов [8].
Кератомаляция и интенсивные воспалительные изменения глаза, тотальный отек роговицы в сочетании с большим
диаметром поражения ведут к более длительному и тяжелому восстановительному периоду. Как следствие возникает
глубокое помутнение роговицы, снижающее зрительные

Рис. 14. Приживление искусственного трансплантата с восстановлением прозрачности роговицы и зрения

Рис. 10. Послойное удаление
глубоких секвестрированных
слоев роговицы

Рис. 11. Образование значительного по глубине и диаметру дефекта роговицы на месте удаленного секвестра

функции.
Передняя послойная
кератопластика с использованием трансплантатов
позволяет восстановить
(частично или полностью)
зрительные функции у 95 %
животных с тяжелыми и обширными поражениями роговицы. У 30 % прооперированных собак и кошек
восстанавливается оптически прозрачная роговица
или в зоне оперативного
вмешательства остается
легкое облачко (рис. 15).

В послеоперационный
период возможны следующие осложнения

Прорезание нескольких роговичных швов

Отторжение части трансплантата

Преждевременная резорбция
центральной части искусственной роговицы до замещения собственными тканями
роговицы

Панофтальмит

Для устранения
которых
необходимо

Данное осложнение не влияет на приживление трансплантата

Хирургическое вмешательство

Интенсивная медикаментозная терапия и иногда дополнительное хирургическое вмешательство

Энуклеация глазного яблока

Во время операции
возможны следующие
тяжелые осложнения

Опорожнение передней
камеры при трепанации

Разрыв десцеметоцеле и
перфорация роговицы

Процедуры, необходимые
для устранения
осложнений

Наложение швов и введение воздуха в переднюю камеру глаза для
восстановления офтальмотонуса

В единственном случае такого осложнения, с которым нам пришлось
столкнуться, расплавленную десцеметову оболочку сшить не удалось.
Поэтому провели сквозную пересадку роговицы в условиях гипотонии

РВЖ    МДЖ  №22005

В 45 % случаев роговица после кератопластики, проведенной по данной методике, имеет небольшие очаги помутнения, существенно не влияющие на зрение. Только у 25 % прооперированных животных образуются глубокие помутнения
роговицы, значительно снижающие остроту зрения (рис. 16).

Заключение

В настоящее время кератопластика с использованием искусственной роговицы, по нашему мнению,— наиболее эффективный хирургический метод лечения обширных ЯР и десцеметоцеле у мелких домашних животных. Данный метод
позволяет сохранить глаз как орган и восстановить (частично или полностью) зрительные функции, что ранее не представлялось возможным. Он характеризуется стабильностью
результатов и отсутствием таких осложнений, как реакция
отторжения трансплантата, неизбежно возникающих при использовании донорской роговицы.

БИБЛИОГРАФИЯ

1. Лоскутов И. А. Некоторые аспекты фармакотерапии в офтальмологии //
Российский медицинский журнал. — М., 1999, т. 1.1.
2. Майчук Ю. Ф. Глазные инфекции //Российский медицинский журнал . —
М., 1999, т. 7.1.
3. Шилкин А. Г. Клиническая эффективность ципрофлоксацина при глазных
инфекциях животных с учетом фармакодинамических особенностей // Материалы десятого международного ветеринарного конгресса. — М., 2002,
с. 198—199.
4. Шилкин А.Г., Олейник В.В. Тактика лечения травм глазного яблока, нанесенных кошачьими когтями // Материалы 12го международного московского конгресса по болезням мелких домашних животных, 2004, с.149.
5. Шилкин А.Г., Копенкин Е.П., Аверин М.А., Олейник В.В. Техника и результаты послойной пересадки роговицы с использованием искусственных
трансплантатов у собак и кошек // Материалы 12го международного московского конгресса по болезням мелких домашних животных, 2004, с.153.
6. Brogard J.M., Jehl F., Arnand J.P. et al. Ciprofloxacine: evaluation de son
elimination biliaire chez l’homme. Schweiz. Med., Wochenshr.,1985, 115, 448—
453.
7. Campbell C.B. Ophthalmic agents: Ointments or drops? VM SAC, 1979, 74,
971—974.
8. Maurice D: The structure and transparency of the cornea. J Physiol, 1957,
136, 263.
9. Dice P.F: The canine cornea, In: Gelatt K.N. (Åd): Textbook of Veterinary
Ophthalmology. Philadelphia, WB Saunders, 1981, 343—374.
10. Bistner S. Clinical diagnosis and treatment of infectious keratitis. Compend
Contin Educ Pract Vet., 1981, 3, 12, 1056—1063.
11. Startup F.G: Corneal ulceration in the dog. J Small Anim Pract, 1984, 25,
737—752.

SUMMARY
A.G. Shilkin, V.V. Oleinik. Grafting the artificial cornea
is perspective method of therapy of severe eye’s lesions
of dogs & cats. The authors described a surgical technique of
grafting the artificial cornea. This operation — is an effective
method of therapy of severe eye’s diseases that help to
rehabilitate a vision in dogs and cats.

Рис. 15. Полупрозрачное приживление ТИР, при котором зрительные функции несколько снижены

Рис. 16. Глубокое сегментарное
помутнение после пересадки роговицы у собаки с глубокой септической ЯР. Зрение частично
восстановлено

ОНКОЛОГИЯ

УДК 616.71-006.3.04:619

В.Н. Митин1,  В.Ф. Хохлов2, В.Н. Кулаков2,
В.К. Зайцев3, А.А. Портнов3, В.С. Швед1,
Н.Г. Козловская1, С.А. Ягников1,И.Н. Шейно3

1Клиника экспериментальной терапии РОНЦ им. Н.Н. Блохина
РАМН.
2Российский институт биофизики РАН.
3 Московский инженернофизический институт.

Введение

Терапия остеосаркомы  основана на комплексном подходе,  при котором хирургическая операция — лишь одно из звеньев  лечения. С появлением эффективных схем адьювантной и неоадьювантной химиотерапии как в медицине, так и в
ветеринарии сохранные операции стали вытеснять калечащие — ампутацию и экзартикуляцию.
В Клинике экспериментальной терапии РОНЦ РАМН в
1981 г.  впервые в мире при выполнении сохранной операции
(замещение дефекта кости) использовали облученный вне
организма гаммаквантами резецированный фрагмент – реплантат [5].  Основная цель такой органосберегающей хирургии– полностью уничтожить в  реплантате опухолевые клетки,   сохранив анатомическую структуру кости и ее способность к репарации в организме.
Данный метод пытались применить отечественные и зарубежные врачи. В 1982 г. в ЦИТО им. Н.Н. Приорова по этой
методике был неудачно оперирован 15летний подросток с
остеосаркомой голени. Uyttendaele D. et al. [16] сообщают о
15 случаях реплантации экстракорпорально облученных
фрагментов и результаты операций считают обнадеживающими, несмотря на  развившиеся осложнения и долгий период
восстановления опороспособности. В 1998 г. вышла работа
В.А. Бизера [1], где автор анализирует результаты 10  аналогичных операций у детей с остеосаркомой в области коленного сустава и  отмечает замедленный процесс перестройки
облученных реплантатов.  Chen W.M. еt al. [9] сообщают о 14
больных, перенесших реплантацию экстракорпорально облученной кости, где реплантат с материнской костью срастался
к 8му мес, а сроки наблюдения за пациентами колебались в
пределах от 28 до 72 мес.

Реплантация
пораженной
остеосаркомой кости,
подвергнутой
нейтронозахватной
терапии

Ключевые слова: нейтронозахватная терапия, остеосаркома, реплантат кости, собака

Сокращения: БНЗТ — борнейтронозахватная терапия;
БФАФ — борфениленаланин с Dфруктозой; в/в — внутривенный; Грэкв. — грэйэквивалент; РД — разовая доза

В Клинике экспериментальной терапии РОНЦ РАМН
этот метод применяют систематически и более чем  за двадцатилетний период накоплен опыт  наблюдений  за результатами  десятков  реплантаций облученной кости. В течение первых десяти лет врачи только  этой клиники выполняли данные операции, публиковали статьи [5] и делали
доклады  на международных конференциях [12]. Реплантация  экстракорпорально облученной кости стала в Клинике экспериментальной терапии РОНЦ «операцией выбора»: ей отдают предпочтение перед трансплантацией консервированной гомокости. Метод успешно применяют, но
при его использовании мы столкнулись с рядом проблем,
одной из которых является  замедленная  репарация облученного реплантата. Японские  исследователи [15] показали на лабораторных животных  перемены, происходящие в
облученном реплантате, и то, что скорость инкорпорации
одинаково замедляют обе  дозы — 50  и  200 Гр.  Подобный
эффект, вероятно, обусловлен особенностями обработки
реплантата гаммаквантами, при которой лучевое воздействие тотально влияет на  все клетки реплантируемого
фрагмента, что приводит к значительной денатурации белков и снижению  активности костных ферментов в нормальной ткани, замедляя период  инкорпорации реплантата.
В поисках избирательного лучевого воздействия на костную опухоль мы остановились на БНЗТ. Этот метод с использованием потока медленных нейтронов  влияет только на клетки опухоли, предварительно накопившие бор
(10В),  и характеризуется щадящим  воздействием на нормальную кость.

Материалы и методы

25.03.2004  в клинику экспериментальной терапии поступил пациент — собака породы доберманпинчер, самец, 11 лет,
с подозрением на опухоль костей таза.
   При клиническом осмотре выявили новообразование в
области правого крыла подвздошной кости, размером 13 × 13 см,
костнохрящевой консистенции.  Кожа в области новообразования  была подвижна,  обнаружены признаки сопутствующего воспаления: повышенная местная температура, перифокальный отек окружающих тканей (рис. 1).
Посредством рентгенографии исследованы опухолевый
очаг и  органы грудной полости. На рентгенограммах костей
таза, выполненных в прямой и боковой стандартных проекциях,  в центре визуализировался крупный очаг остеодеструкции крыла подвздошной кости. Периостальная реакция
была выражена слабо (рис. 2). Рентгенографически размер
опухоли составлял: 5 × 3 × 4 см. В грудной полости видимых
метастазов не выявлено.
В биоптате  опухоли обнаружены гигантские многоядерные клетки, многочисленные полиморфные клетки типа остеобластов с выраженными признаками атипии, встречались
митозы. Цитологическая картина характерна для  остеосаркомы. Гистологически диагноз подтвержден 04.04.2004. Выявлены фрагменты опухолевой ткани со структурой остеосаркомы, мелкоклеточный вариант с прямым атипичным остеогенезом (рис. 3).
05.04.2004 проведена радионуклидная сцинтиграфия
(рис. 4). Обнаружен очаг повышенного накопления технеция99  (99Тс)  в области крыла правой подвздошной кости
(концентрация очага накопления 340 %) — специфическое
поражение; в других отделах скелета признаков очаговых
(специфических) нарушений не выявлено.  С учетом результатов всех  исследований поставлен окончательный диагноз:
остеосаркома правого крыла подвздошной кости, стадия Т2
G2 M0, IIb.
На начальном этапе была  назначена химиолучевая терапия в качестве индукционного предоперационного лечения. Противоопухолевый  химиопрепарат цисплатин вводили в/в за 30 мин до гаммаоблучения для радиосенсибилизации опухоли. Первая доза циcплатина  составляла 70 мг/м2,
затем препарат вводили 8 раз по 10 мг/м2  до накопления
общей дозы 150 мг/м2. Перед каждым введением цисплатина  выполняли требуемую гипергидратацию организма
(25 мл/кг/ч).
Через 30 мин после очередного введения цисплатина опухоль облучали на дистанционном гаммааппарате Агат Р в
следующем режиме: разовая  очаговая  доза 3,2 Гр, 3 фракции
в неделю через день  до накопления суммарной очаговой дозы
28,8 Гр.
На протяжении всего курса химиолучевой терапии в виде

ОНКОЛОГИЯ

Рис. 1. Пациент перед началом лечения.
Стрелками показана область, где выявлен
опухолевый очаг

Рис. 2. Рентгенограмма.
Опухоль крыла подвздошной кости

Рис. 3.  Гистопрепарат.
Мелкоклеточная остеосаркома. Окраска  гематоксилинэозином,  ×10

Рис. 4. Сцинтиграммы.
Накопление  99Тс в крыле
подвздошной кости и  мочевом пузыре (стрелкой
указано место локализации опухоли)

Рис. 5. Рентгенограмма.
Состояние очага перед
операцией после курса химиолучевой терапии

осложнений наблюдали тромбоцитопению, эритропению, повышение
активности щелочной  фосфатазы и
содержания  билирубина, что было
расценено  как  проявление II и III
степени токсичности цитостатика.
В конце предоперационного
курса химиолучевой терапии выполнено  контрольное рентгенологическое исследование, при этом
выявлено, что  размеры опухоли  составляют 8 × 6 × 5 см,  визуализируются обширные зоны минерализации ее  внекостного компонента,
образование и выравнивание границ опухолевого очага (рис. 5).

РВЖ    МДЖ  №22005

Накануне операции в соответствии с протоколом общего
плана лечения проведена трансфузия сепарированного и концентрированного аллогенного костного мозга  от здорового
донора в объеме 130 мл и с количеством  ядросодержащих клеток 6,8 × 109. По нашим наблюдениям, эта процедура эффективна, поэтому мы считаем ее  обязательной для воздействия
на состояние опухоли «in transit cell disease»1. Ее цель — биологическая  профилактика  гематогенных легочных метастазов [6].
На следующий день под общей анестезией  катетеризировали правую подвздошную артерию и в течение 2 ч ввели  в пораженную область раствор БФАФ  в дозе 300 мг/кг
(8 г), который избирательно накапливается в опухолевой
ткани. После этого выполнена  широкая сегментарная  резекция крыла правой подвздошной кости (рис. 6, а, б).
Фрагмент кости был изолирован, подвергнут скелетированию, стерильно упакован в шесть слоев алюминиевой фольги и охлажден до –10 °С  в парах жидкого азота в сосуде
Дьюара (рис. 6, в). Затем препарат незамедлительно доставили в МИФИ, где облучили медленными нейтронами в течение 45 мин при плотности потока нейтронов × 109 н/см2

(рис. 6, г). Дозиметрические исследования показали, что в процессе БНЗТ доза, полученная опухолевыми клетками, составила
около 50 Грэкв., что достаточно
для их полной гибели. Доза, полученная здоровыми костными клетками, не превышала 12 Грэкв., что
находится  в пределах их толерантности к ионизирующему излучению. По данным авторадиографического «трекового» исследования биопсийного
материала опухоли и
здоровой ткани, полученного перед реплантацией облученного
фрагмента,  содержание  10B было в 3 раза
выше в опухоли. Облученный реплантат кости  реимплантировали
и прочно зафиксировали металлоконструкциями (рис. 6, д, е; 7; 8).
В послеоперационном периоде в качестве
адьювантной терапии
планировали три курса химиотерапии в монорежиме цитостатиком  цисплатином.
Общее состояние животного после 1го курса химиотерапии (РД = 70 мг/м2) оставалось удовлетворительным. Во
время введения  цисплатина отметили возрастающее беспокойство животного, что отнесли  к проявлению нейротоксичности препарата. Через 4 нед попытались начать 2й
курс химиотерапии. При введении цисплатина, несмотря на
профилактические меры, развилась сильная нейротоксическая реакция, которая выражалась в  «манежных движениях»,
безудержном стремлении вперед, усилении
коленных рефлексов,
повышенной реакции
на внешние раздражители. Поэтому решили
прекратить использование   цисплатина  и
поменять цитостатик.
Через 4 нед приступили к  3му  курсу адьювантной химиотерапии,

ОНКОЛОГИЯ

1 «in transit cell disease» —  состояние опухолевого процесса,
при котором разрозненные опухолевые клетки находятся  в кровотоке.

à
á

â
ã

ä
å
Рис. 6.  Этапы операции: а и б — широкая сегментарная резекция крыла подвздошной кости: хирургический доступ (а) и изолированный
фрагмент (б); в — погружение костного фрагмента в сосуд Дьюара;
г — костный фрагмент в канале реактора;  д и е — реплантация облученной вне организма кости: сопоставление реплантата с материнской костью (д) и остеосинтез реплантата (е)

Рис. 7. Рентгенограмма. Положение
реплантата кости после операции

Рис. 10. Рентгенограмма. Состояние реплантата через 3 мес после операции. Анатомическое положение реплантата правильное, видны  начальные признаки консолидации его с материнской костью

Рис. 9. Гистопрепарат. Облученный
реплантат кости.  Участки костной ткани в состоянии некробиоза ( безъядерные клетки ), живые опухолевые клетки не выявлены.  Окраска гематоксилинэозином, × 10

Рис. 8. Пациент через 24 ч после операции. Опороспособность    конечности сохранена

ОНКОЛОГИЯ

На рентгенограммах спустя 3 мес после операции отчетливо
виден процесс консолидации реплантата с материнской костью,
без признаков патологического остеогенеза. Этот факт косвенно свидетельствовал о сохранении жизнеспособности здоровых
костных клеток и об отсутствии рецидива опухоли (рис. 10).
Состояние собаки удовлетворительное. Животное самостоятельно передвигается, рефлексы сохранены, признаков
опухолевого роста нет.  Продолжительность наблюдения —
1 год (рис. 11, 12, 13, 14).

Обсуждение и выводы

Поскольку это наблюдение касается совершенно нового,
не имеющего никаких аналогов способа реконструкции скелета, обсудить полученный результат в традиционной форме
представляется довольно трудным.
По данным лабораторных исследований образцов [3],
взятых из резецированного костного фрагмента (реплантата), концентрация накопленного  10B, введенного в регионарный кровоток в виде БФАФ,  в опухолевой ткани в
три раза превысила эту концентрацию в нормальных тканях.  Поэтому, если  мы подвели  к нормальной кости реплантата толерантную дозу 12 Грэкв., чтобы не нарушать
способность кости к перестройке, то опухоль получила одномоментно 50 Грэкв.,  т.е. дозу, губительную  для опухолевых клеток.
Критерием эффективности противоопухолевого действия  БНЗТ были последующие биопсии, подтвердившие
гибель опухолевых клеток в реплантате, а также сцинтиграфическое исследование, проведенное спустя 1 год после операции, при котором выявлено накопление радиофармпрепарата (219 %) только в тканях реплантата, что соответствует нормальной репарации костных тканей и
отсутствию рецидива (рис. 15). С другой стороны, необходимость подведения толерантных доз к нормальной ткани
оправдана двумя следующими клиническими наблюдениями: вопервых,  реплантат сросся с материнской костью
уже через 3 мес после операции; вовторых, у животного
сохранилась сопротивляемость инфекции, что позволило
избежать нагноения  в ране, имплантировать  контактный
дренаж, чего никогда не  удавалось  при облучении  реплантатов  гаммаквантами. Таким образом, можно заключить, что схема лечения остеосаркомы  с использованием
БНЗТ имеет ряд преимуществ  перед другими . Окончательный вывод о ее эффективности можно будет сделать,
изучив отдаленные результаты лечения.

Рис. 11. Пациент через  9 мес после операции

Рис. 12. Рентгенограмма. Состояние реплантата через 9 мес после операции:  а — анатомическое положение реплантата правильное; б — в
зоне остеотомии заметна четко сформированная костная мозоль

Рис. 15. Сцинтиграммы через 1 год после операции. Накопление  99Тс
в крыле подвздошной кости  219 %,  что соответствует физиологическому репаративному процессу костной ткани

Рис. 14. Пациент через  1 год после операции

на этот раз  адриамицином (РД = 30 мг/м2). Два  последующих курса химиотерапии тем же  препаратом  не сопровождались осложнениями. Через 2,5 мес в биопсийных пробах
из реплантата опухолевые клетки не выявлены (рис. 9).

Рис. 13. Рентгенограмма. Состояние реплантата через  1 год после операции

a
б